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Article de méthode

Isolement et reprogrammation neuronale directe des astrocytes de souris

3.1K vues

DOI :

10.3791/64175

7 juillet 2022

Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici un protocole détaillé pour générer des cultures hautement enrichies d’astrocytes dérivés de différentes régions du système nerveux central de souris postnatales et leur conversion directe en neurones fonctionnels par l’expression forcée de facteurs de transcription.

Résumé

La reprogrammation neuronale directe est une approche puissante pour générer des neurones fonctionnels à partir de différentes populations de cellules de départ sans passer par des intermédiaires multipotents. Cette technique est non seulement très prometteuse dans le domaine de la modélisation des maladies, car elle permet de convertir, par exemple, les fibroblastes pour les patients souffrant de maladies neurodégénératives en neurones, mais représente également une alternative prometteuse pour les thérapies de remplacement cellulaires. Dans ce contexte, une percée scientifique majeure a été la démonstration que des cellules non neurales différenciées dans le système nerveux central, telles que les astrocytes, pouvaient être converties en neurones fonctionnels in vitro. Depuis lors, la reprogrammation directe in vitro des astrocytes en neurones a fourni des informations substantielles sur les mécanismes moléculaires sous-jacents à la conversion forcée de l’identité et les obstacles qui empêchent une reprogrammation efficace. Cependant, les résultats d’expériences in vitro réalisées dans différents laboratoires sont difficiles à comparer en raison des différences dans les méthodes utilisées pour isoler, cultiver et reprogrammer les astrocytes. Ici, nous décrivons un protocole détaillé pour isoler et cultiver de manière fiable des astrocytes de haute pureté provenant de différentes régions du système nerveux central de souris à des âges postnatals via le tri de cellules magnétiques. De plus, nous fournissons des protocoles pour reprogrammer les astrocytes cultivés en neurones par transduction virale ou transfection de l’ADN. Ce protocole rationalisé et standardisé peut être utilisé pour étudier les mécanismes moléculaires sous-jacents au maintien de l’identité cellulaire, à l’établissement d’une nouvelle identité neuronale, ainsi qu’à la génération de sous-types neuronaux spécifiques et à leurs propriétés fonctionnelles.

Introduction

Le système nerveux central (SNC) des mammifères est très complexe, composé de centaines de types cellulaires différents, y compris un grand nombre de sous-types neuronaux différents 1,2,3,4,5,6. Contrairement à d’autres organes ou tissus 7,8,9, le SNC des mammifères a une capacité de régénération très limitée; La perte neuronale à la suite d’un traumatisme crânien ou d’une neurodé....

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Protocole

La procédure suivante suit les directives de soins aux animaux du Helmholtz Zentrum Munich conformément à la directive 2010/63/UE sur la protection des animaux utilisés à des fins scientifiques. Veuillez vous assurer de vous conformer aux directives de soins aux animaux de l’établissement où la dissection est effectuée.

1. Préparation du matériel de dissection, de dissociation et de culture

REMARQUE: Préparez tous les réactifs de culture dans une armoire de sécurité biologique et travaillez en utilisant uniquement de l’équipement autoclavé ou stérile. Les réactifs de dissection et de dissociation p....

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Résultats

Les cultures primaires d’astrocytes atteignent généralement une confluence de 80 % à 90 % entre 7 et 10 jours après le tri et le placage de la MAC (figure 1B). Généralement, une seule fiole de culture T25 donne environ 1-1,5 x 106 cellules, ce qui est suffisant pour 20-30 couvertures lors de l’ensemencement de cellules à une densité de 5-5,5 x 104 cellules par puits. Le lendemain du placage, les cellules couvrent généralement 50 % à 60 % de la surface du couvercle (

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Discussion

Les cultures primaires d’astrocytes murins sont un système modèle in vitro remarquable pour étudier la reprogrammation neuronale directe. En fait, bien qu’isolées à un stade postnatal, les cellules expriment des marqueurs astrocytaires typiques29, conservent l’expression des gènes de motif 28,29 et maintiennent la capacité de proliférer, semblable aux astrocytes in vivo à un âge comparablede 38 ans.

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous tenons à remercier Ines Mühlhahn pour le clonage des constructions pour la reprogrammation, Paulina Chlebik pour la production virale, et Magdalena Götz et Judith Fischer-Sternjak pour les commentaires sur le manuscrit.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,05 % Trypsine/EDTALife Technologies25300054
4', 6-Diamidino-2-phényindole, dilactate (DAPI)Sigma-AldrichD9564
anti-souris IgG1 Alexa 647Thermo FisherA21240
anti-souris IgG1 BiotineSouthernbiotechCat# 1070-08 ; RRID : AB_2794413
anti-souris IgG2b Alexa 488Thermo FisherA21121
anti-lapin Alexa 546Thermo FisherA11010
Aqua Poly/MountPolysciencesCat# 18606-20
B27 SupplementLife Technologies17504044
BDNFPeprotech450-02
bFGFLife Technologies13256029
Albumine sérique bovine (BSA)Sigma-AldrichCat# A9418
cAMPSigma AldrichD0260
C-TubesMiltenyi Biotec130-093-237
DMEM/F12Life Technologies21331020
DorsomorphineSigma AldrichP5499
EGFLife TechnologiesPHG0311
Sérum de veau fœtalPAN BiotechP30-3302
ForskolinSigma AldrichF6886
GDNFPeprotech450-10
gentleMACS Octo DissociatorMiltenyi Biotec130-096-427
GFAPDakoCat# Z0334 ; RRID : AB_100013482
GlucoseSigma AldrichG8769
GlutaMaxLife Technologies35050038
HBSSLife Technologies14025050
HepesLife Technologies15630056
Lipofectamine 2000 (réactif de transfection)Thermo FisherCat# 11668019
MACS SmartStrainer 70µ ; mMiltenyi Biotec130-098-462
Séparateur MiniMACSMiltenyi Biotec130-042-102
Souris anti-ACSA-2 MicroBeat Kit  ;Miltenyi Biotec130-097-678
Souris IgG1 anti-Synaptophysine 1Systèmes SynaptiquesCat# 101 011 RRID :AB_887824)
Souris IgG2b anti-Tuj-1 (&beta ; III-tub)Sigma AldrichT8660
MS colonnesMiltenyi Biotec130-042-201
N2 SupplementLife Technologies17502048
Neural Tissue Dissociation Kit  ;Miltenyi Biotec130-092-628
NT3Peprotech450-03
Séparateur octoMACSMiltenyi Biotec130-042-109
OptiMEM &ndash ; GlutaMAX (milieu à sérum réduit)Thermo FisherCat# 51985-026
Pénicilline/StreptomycineLife Technologies15140122
Poly-D-LysineSigma AldrichP1149
Rabbit anti-RFPRocklandCat# 600-401-379 ; RRID :AB_2209751
Lapin anti-Sox9Sigma-AldrichCat# AB5535 ; RRID :AB_2239761
Streptavidin Alexa 405Thermo FisherCat# S32351
Triton X-100Sigma-AldrichCat# T9284

Références

  1. Johnson, T. S., et al. Spatial cell type composition in normal and Alzheimers human brains is revealed using integrated mouse and human single cell RNA sequencing. Scientific Reports. 10 (1), 18014(2020).
  2. Lake, B. B., et al.

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

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