$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Conformément au protocole, un U-Net à cinq tranches a été formé sur un seul tomogramme (figure 2A) pour identifier cinq classes : membrane, microtubules, actine, marqueurs fiduciaires et arrière-plan. Le réseau a été entraîné de façon itérative trois fois au total, puis appliqué au tomogramme pour le segmenter et l’annoter complètement (Figure 2B,C). Un nettoyage minimal a été effectué à l’aide des étapes 7.1 et 7.2. Les trois tomogrammes suivants d’intérêt (Figure 2D,G,J) ont été chargés dans le logiciel pour le prétraitement. Avant l’importation de l’image, l’un des tomogrammes (Figure 2J) nécessitait un ajustement de la taille des pixels de 17,22 Å/px à 13,3 Å/px car il était collecté sur un microscope différent à un grossissement légèrement différent. Le programme IMOD squeezevol a été utilisé pour le redimensionnement avec la commande suivante :
'squeezevol -f 0.772 inputfile.mrc outputfile.mrc'
Dans cette commande, -f fait référence au facteur par lequel modifier la taille des pixels (dans ce cas : 13,3/17,22). Après l’importation, les trois cibles d’inférence ont été prétraitées conformément aux étapes 3.2 et 3.3, puis le U-Net à cinq tranches a été appliqué. Un nettoyage minimal a de nouveau été effectué. Les segmentations finales sont présentées à la figure 2.
Les segmentations de microtubules de chaque tomogramme ont été exportées sous forme de fichiers TIF binaires (étape 7.4), converties en MRC (programme IMOD tif2mrc ), puis utilisées pour la corrélation des cylindres et le traçage des filaments. Les segmentations binaires des filaments permettent un traçage de filaments beaucoup plus robuste que le traçage sur tomogrammes. Les cartes de coordonnées du traçage des filaments (figure 3) seront utilisées pour une analyse plus approfondie, comme les mesures du plus proche voisin (garnissement des filaments) et la moyenne hélicoïdale des sous-tomogrammes le long des filaments simples pour déterminer l’orientation des microtubules.
Les réseaux infructueux ou insuffisamment formés sont faciles à déterminer. Un réseau défaillant sera incapable de segmenter des structures, alors qu’un réseau mal entraîné segmentera généralement correctement certaines structures et aura un nombre important de faux positifs et de faux négatifs. Ces réseaux peuvent être corrigés et formés de manière itérative pour améliorer leurs performances. L’assistant de segmentation calcule automatiquement le coefficient de similarité Dice d’un modèle (appelé score dans le SegWiz) après son entraînement. Cette statistique donne une estimation de la similitude entre les données d’entraînement et la segmentation U-Net. Dragonfly 2022.1 dispose également d’un outil intégré pour évaluer les performances d’un modèle accessible dans l’onglet Intelligence artificielle en haut de l’interface (voir la documentation d’utilisation).

Figure 2 : Inférence. (A-C) Tomogramme d’entraînement original d’un neurone de rat hippocampique DIV 5, collecté en 2019 sur un Titan Krios. Il s’agit d’une reconstruction rétroprojetée avec correction CTF dans IMOD. (A) La case jaune représente la région où la segmentation des mains a été effectuée pour l’entrée de formation. (B) Segmentation 2D à partir du U-Net une fois la formation terminée. (C) Rendu 3D des régions segmentées montrant la membrane (bleu), les microtubules (vert) et l’actine (rouge). (D-F) Neurone de rat hippocampique DIV 5 de la même séance que le tomogramme d’entraînement. (E) Segmentation 2D à partir du U-Net sans formation supplémentaire et nettoyage rapide. Membrane (bleu), microtubules (vert), actine (rouge), fiduciaire (rose). (F) Rendu 3D des régions segmentées. (G-I) Neurone hippocampique de rat DIV 5 de la session 2019. (H) segmentation 2D à partir du U-Net avec nettoyage rapide et (I) rendu 3D. (J-L) Neurone de rat hippocampique DIV 5, collecté en 2021 sur un Titan Krios différent à un grossissement différent. La taille des pixels a été modifiée avec le programme IMOD squeezevol pour correspondre au tomogramme d’entraînement. (K) segmentation 2D à partir du U-Net avec nettoyage rapide, démontrant une inférence robuste à travers les ensembles de données avec un prétraitement approprié et (L) un rendu 3D de la segmentation. Barres d’échelle = 100 nm. Abréviations : DIV = jours in vitro; CTF = fonction de transfert de contraste. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3 : Amélioration du traçage filamentaire. (A) Tomogramme d’un neurone hippocampique de rat DIV 4, recueilli sur un Titan Krios. (B) Carte de corrélation générée à partir de la corrélation du cylindre sur les filaments d’actine. (C) Traçage filamentaire de l’actine en utilisant les intensités des filaments d’actine dans la carte de corrélation pour définir les paramètres. Le traçage capture la membrane et les microtubules, ainsi que le bruit, tout en essayant de tracer uniquement l’actine. (D) Segmentation U-Net du tomogramme. Membrane surlignée en bleu, microtubules en rouge, ribosomes en orange, triC en violet et actine en vert. (E) Segmentation de l’actine extraite comme masque binaire pour le traçage filamentaire. (F) Carte de corrélation générée à partir de la corrélation cylindrique avec les mêmes paramètres de (B). (G) Amélioration significative du traçage filamentaire des filaments d’actine à partir du tomogramme. Abréviation : DIV = jours in vitro. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Fichier supplémentaire 1 : Le tomogramme utilisé dans ce protocole et le multi-ROI généré en tant qu’entrée d’apprentissage sont inclus dans un ensemble de données groupé (Training.ORSObject). Voir https://datadryad.org/stash/dataset/doi:10.5061/dryad.rxwdbrvct.