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Article de méthode

Test d’immunothérapies anticancéreuses dans un modèle murin humanisé portant des tumeurs humaines

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DOI :

10.3791/64606

16 décembre 2022

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Dans cet article

Avis d’erratum

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Résumé

Ce protocole décrit la génération de souris du système immunitaire humain (SIH) pour les études d’immuno-oncologie. Les instructions et les considérations relatives à l’utilisation de ce modèle pour tester les immunothérapies humaines sur les tumeurs humaines implantées dans ce modèle sont présentées en mettant l’accent sur la caractérisation de la réponse du système immunitaire humain à la tumeur.

Résumé

L’inversion de la nature immunosuppressive du microenvironnement tumoral est essentielle au succès du traitement des cancers avec des médicaments d’immunothérapie. Les modèles de cancer murin sont extrêmement limités dans leur diversité et souffrent d’une mauvaise traduction à la clinique. Pour servir de modèle préclinique plus physiologique pour les études d’immunothérapie, ce protocole a été développé pour évaluer le traitement des tumeurs humaines chez une souris reconstituée avec un système immunitaire humain. Ce protocole unique démontre le développement de souris du système immunitaire humain (HIS, « humanisé »), suivi de l’implantation d’une tumeur humaine, soit une xénogreffe dérivée d’une lignée cellulaire (CDX), soit une xénogreffe dérivée du patient (PDX). Les souris HIS sont générées par l’injection de cellules souches hématopoïétiques humaines CD34+ isolées du sang de cordon ombilical dans des souris BRGS néonatales (BALB/c Rag2-/- IL2RγC-/- NODSIRPα) hautement immunodéficientes qui sont également capables d’accepter une tumeur xénogénique. L’importance de la cinétique et des caractéristiques du développement du système immunitaire humain et de l’implantation tumorale est soulignée. Enfin, une évaluation approfondie du microenvironnement tumoral à l’aide de la cytométrie en flux est décrite. Dans de nombreuses études utilisant ce protocole, il a été constaté que le microenvironnement tumoral des tumeurs individuelles est récapitulé chez les souris HIS-PDX; Les tumeurs « chaudes » présentent une infiltration immunitaire importante alors que les tumeurs « froides » ne le font pas. Ce modèle sert de terrain d’essai pour les immunothérapies combinées pour un large éventail de tumeurs humaines et représente un outil important dans la quête de la médecine personnalisée.

Introduction

Les modèles de cancer de la souris sont importants pour établir les mécanismes de base de la croissance tumorale et de l’évasion immunitaire. Cependant, les études sur le traitement du cancer sur des modèles murins ont donné une traduction finie à la clinique en raison des modèles syngéniques limités et des différences spécifiques à l’espèce 1,2. L’émergence des thérapies immunitaires en tant qu’approche dominante pour contrôler les tumeurs a réitéré la nécessité d’un modèle in vivo avec un système immunitaire humain fonctionnel. Les progrès réalisés chez les souris du système immunitaire humain (sour....

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Protocole

Tous les travaux sur les animaux ont été effectués conformément aux protocoles sur les animaux approuvés par le comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de l’Université du Colorado à Denver (protocoles IACUC #00593 et #00021). Tous les travaux sur les animaux ont été effectués conformément à l’Office of Laboratory Animal Resources (OLAR), un établissement accrédité par l’American Association for Laboratory Animal Care, au campus médical Anschutz de l’Université du Colorado à Denver. Tous les échantillons de sang de cordon humain ont été prélevés sous forme de dons de donneurs anonymisés et ne sont donc pas assujettis à l’approbation du comité d’éthiq....

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Résultats

Conformément au protocole de tumeur du flanc et à la chronologie expérimentale (Figure 1), la croissance tumorale et la réponse immunitaire à un traitement ciblé par inhibiteur de la tyrosine kinase (ITK) et à un traitement combiné par nivolumab ont été étudiées dans deux PDX distincts de cancer colorectal humain (CCR). Les médicaments TKI ont été étudiés chez des hôtes immunodéficients pour évaluer la croissance tumorale seulement29. Ce modèle a permis d’étudier les .......

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Discussion

Au cours des 6 dernières années, en utilisant notre expertise en immunologie et en souris humanisées, notre équipe de recherche a développé un modèle préclinique indispensable pour tester des immunothérapies sur une variété de tumeurs humaines 3,7,30,31. Ce protocole met l’accent sur la prise en compte de la variabilité du modèle, avec une attention particulière aux populations de lymphocytes T.......

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Remerciements

Nous tenons à remercier à la fois l’Animal Research Facility (OLAR) pour les soins qu’ils ont prodigués à nos souris et la ressource partagée en cytométrie en flux soutenue par la subvention de soutien au Centre de cancérologie (P30CA046934) de notre institut pour leur immense aide dans tout notre travail. Nous remercions également Gail Eckhardt et Anna Capasso pour nos collaborations inaugurales sur l’étude des immunothérapies aux PDX humains dans notre modèle HIS-BRGS. Cette étude a été financée en partie par la subvention de soutien du centre de cancérologie P30CA06934 des National Institutes of Health avec l’utilisation de la ressource partagée PHISM (Pre-clinical....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Seringue de 1 mL avec aiguillesMcKesson1031815
tubes de 15 mLGrenier Bio-One188271
2-mercaptoéthanolSigmaM6250
Tubes de 50 mLGrenier Bio-One227261
Séparateur AutoMACS ProMiltenyi130-092-545
BD Golgi Stop Inhibiteur de transport de protéines avec monensinBD BioscienceBDB563792
BSAFisher ScientificBP1600100
Cell Stim CocktailLife Technologies509305
Chill 15 RackMiltenyi130-092-952
Pipettes en verre bouchées de cotonFisher Scientific13-678-8B
Cultrex Extrait de membrane basaleR&;D Systèmes363200502
Cytek AuroraCytek
DNaseSigma9003-98-9
eBioscience FoxP3/Transcription Factor Staining Buffer SetInvitrogen00-5523-00
Cellules souches embryonnaires FCSGibco10439001
Eppendorf Tubes ; volume de 1,5 mLGrenier Bio-One616201
ExcelMicrosoft
FBSBenchmark100-106 500mL
Ficoll HypaqueGE Healthcare45001752
FlowJo SoftwareBD Biosciences
Forceps - fineRoboz Surgical  ;RS5045
Pince normaleDumontRS4919
FormaldéhydeFisherF75P1GAL
Lames en verre dépoliCorning1255310
Gentlemacs C-TubesMiltenyi  ;   ;   ;130-096-334
GentleMACS DissociatorMiltenyi130-093-235
pipettes en verreDWK Life Sciences63A53
GlutamaxGibco11140050
HBSS avec Ca & MgSigma55037C
HEPESCorningMT25060CI
IgG standardSigmaI2511
IgM standardSigma401108
IMDMGibco12440053
Liberase DLRoche5466202001
LIVE/DEAD Fixable BleuThermoL23105
MDA-MB-231ATCCHTB-26
MEMGibco1140050
souris anti-humaines IgG-APSouthern BiotechJDC-10
souris anti-humaines IgG-unabeledSouthern BiotechH2
souris anti-humaines IgM-APSouthern BiotechUHB
souris anti-humaines IgM non étiquetéesSouthern BiotechSA-DA4
MultiRad 350Precision X-Ray
PBSCorning45000-446
Pen Strep Gibco15140122
Boîtes de PétriFisher ScientificFB0875713A
substrat p-nitrophényleThermo34045
PRISMGraphpad
Rec Hu FLT3LR& D systems308-FK-005/CF
Rec Hu IL6R& D systems206-IL-010/CF
Rec Hu SCFR& D systems255SC010
RPMI 1640Corning45000-39
SaponinSigma8047-15-2
CiseauxMcKesson862945
Pipettes sérologiques 25 mLFisher Scientific1367811
Filtre stérileNalgene567-0020
Eaumoléculaire stérileSigma7732-18-5
Yeti Analyseur de cellulesBio-Rad12004279
Zombie Greenbiolegend423112

Références

  1. Chulpanova, D. S., Kitaeva, K. V., Rutland, C. S., Rizvanov, A. A., Solovyeva, V. V. Mouse tumor models for advanced cancer immunotherapy. International Journal of Molecular Sciences. 21 (11), 4118(2020).
  2. Olson, B., Li, Y., Lin, Y., Liu, E. T., Patnaik, A. Mouse models for cancer imm....

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Réimpressions et autorisations

Erratum


Formal Correction: Erratum: Testing Cancer Immunotherapeutics in a Humanized Mouse Model Bearing Human Tumors
Posted by JoVE Editors on 5/25/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: Testing Cancer Immunotherapeutics in a Humanized Mouse Model Bearing Human Tumors. The Authors section was updated from:

Jordi M. Lanis1
Matthew S. Lewis1
Hannah Strassburger1
Stacey M. Bagby2
Adrian T. A. Dominguez2
Juan A. Marín-Jiménez3
Roberta Pelanda1
Todd M. Pitts2
Julie Lang1
1Department of Immunology and Microbiology, School of Medicine, University of Colorado Denver Anschutz Medical Campus
2Division of Oncology, School of Medicine, University of Colorado Denver Anschutz Medical Campus
3Department of Medical Oncology, Catalan Institute of Oncology (ICO-L’Hospitalet)

to:

Jordi M. Lanis1
Matthew S. Lewis1
Hannah Strassburger1
Kristina Larsen1
Stacey M. Bagby2
Adrian T. A. Dominguez2
Juan A. Marín-Jiménez3
Roberta Pelanda1
Todd M. Pitts2
Julie Lang1
1Department of Immunology and Microbiology, School of Medicine, University of Colorado Denver Anschutz Medical Campus
2Division of Oncology, School of Medicine, University of Colorado Denver Anschutz Medical Campus
3Department of Medical Oncology, Catalan Institute of Oncology (ICO-L’Hospitalet)

Mots-clés

Immunoth rapie du cancerMicroenvironnement tumoralSyst me immunitaire humainX nogreffe d riv e de patientCytom trie en fluxCellules souches CD34Activation des lymphocytes TLymphocytes infiltrant la tumeurSouris immunod ficientes