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Article de méthode

Modélisation du carcinome épidermoïde bucco-œsophagien dans les organoïdes 3D

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DOI :

10.3791/64676

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23 décembre 2022

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit les étapes clés pour générer et caractériser les organoïdes 3D murins oraux-œsophagiens qui représentent les lésions de carcinome épidermoïde normal, prénéoplasique et épidermoïde induites par cancérogenèse chimique.

Résumé

Le carcinome épidermoïde de l’œsophage (ESCC) est répandu dans le monde entier, représentant 90% de tous les cas de cancer de l’œsophage chaque année, et est le plus mortel de tous les carcinomes épidermoïdes humains. Malgré les progrès récents dans la définition des changements moléculaires accompagnant l’initiation et le développement de l’ESCC, le pronostic du patient reste sombre. L’annotation fonctionnelle de ces changements moléculaires est la prochaine étape nécessaire et nécessite des modèles qui capturent les caractéristiques moléculaires de l’ESCC et peuvent être manipulés facilement et à peu de frais pour l’annotation fonctionnelle. Les souris traitées avec la fumée de tabac mimétique 4-nitroquinoléine 1-oxyde (4NQO) forment de manière prévisible un ESCC et une prénéoplasie œsophagienne. Il convient de noter que les lésions de 4NQO apparaissent également dans la cavité buccale, le plus souvent dans la langue, ainsi que dans le préestomac, qui partagent tous l’épithélium pavimenteux stratifié. Cependant, ces souris ne peuvent pas être simplement manipulées pour tester des hypothèses fonctionnelles, car la génération de modèles murins isogéniques nécessite beaucoup de temps et de ressources. Ici, nous surmontons cette limitation en générant des organoïdes tridimensionnels (3D) dérivés de cellules uniques à partir de souris traitées avec 4NQO pour caractériser les ESCC murins ou les cellules prénéoplasiques ex vivo. Ces organoïdes capturent les caractéristiques saillantes de l’ESCC et de la prénéoplasie œsophagienne, peuvent être exploités rapidement et à peu de frais pour former des modèles isogéniques et peuvent être utilisés pour des expériences de transplantation syngénique. Nous démontrons comment générer des organoïdes 3D à partir de tissu œsophagien murin normal, prénéoplasique et SCC et maintenir et cryopréserver ces organoïdes. Les applications de ces organoïdes polyvalents sont vastes et comprennent l’utilisation de souris génétiquement modifiées et une caractérisation plus poussée par cytométrie de flux ou immunohistochimie, la génération de lignées organoïdes isogéniques à l’aide des technologies CRISPR et le criblage de médicaments ou la transplantation syngénique. Nous pensons que l’adoption généralisée des techniques démontrées dans ce protocole accélérera les progrès dans ce domaine pour lutter contre le lourd fardeau de la CSC.

Introduction

Le carcinome épidermoïde œsophagien (ESCC) est le plus mortel des carcinomes épidermoïdes humains, en raison de son diagnostic tardif, de sa résistance au traitement et de ses métastases 1,2. L’ESCC provient de l’épithélium pavimenteux stratifié, qui tapisse la surface luminale de l’œsophage. L’épithélium pavimenteux est composé de cellules basales prolifératives et de cellules différenciées dans la couche de cellules suprabasales. Dans des conditions physiologiques, les cellules basales expriment des marqueurs tels que p63, Sox2 et la cytokératine K5 et K14, tandis que les cellules différenciées expriment K4,....

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Protocole

Les expériences sur les murins ont été planifiées et réalisées conformément à la réglementation et au protocole animal #AABB1502, examinés et approuvés par le comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de l’Université Columbia. Les souris ont été hébergées dans une installation de soins aux animaux appropriée qui assure le traitement sans cruauté des souris et fournit des soins vétérinaires appropriés aux souris et une formation en sécurité de laboratoire pour le personnel de laboratoire.

1. Traitement de souris avec 4NQO pour induire des lésions IEN et ESCC œsophagiennes (temps considéré: jusqu’à 28 semaines)....

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Résultats

Ce protocole décrit le processus de génération d’organoïdes œsophagiens murins (MEO) à partir de tissu œsophagien normal ou de tissu tumoral ESCC à partir de souris traitées par 4NQO selon un schéma thérapeutique spécifique consistant en 16 semaines de 4NQO administré dans l’eau potable, suivies d’une période d’observation de 10 semaines à 12 semaines (Figure 1). Les souris sont ensuite euthanasiées pour la dissection de la langue ou du tissu œsophagien (Figure 2

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Discussion

Il existe plusieurs étapes et considérations critiques pour la génération et l’analyse des opérateurs en économie de marché dans les protocoles décrits ici. Pour assurer la reproductibilité et la rigueur des expériences MEO, les réplications biologiques et techniques sont toutes deux importantes. Pour les réplications biologiques, deux à trois souris indépendantes portant de l’ESCC sont généralement suffisantes par condition expérimentale. Cependant, le nombre approprié de répétitions biologiques peut varier en fonction .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions les ressources partagées (cytométrie en flux, pathologie moléculaire et microscopie confocale et spécialisée) du Herbert Irving Comprehensive Cancer Center de l’Université Columbia pour leur soutien technique. Nous remercions les Drs Alan Diehl, Adam J. Bass et Kwok-Kin Wong (NCI P01 Mechanisms of Esophageal Carcinogenesis) et les membres des laboratoires Rustgi et Nakagawa pour leurs discussions utiles. Cette étude a été soutenue par les subventions NIH suivantes: P01CA098101 (H.N. et A.K.R.), R01DK114436 (H.N.), R01AA026297 (H.N.), L30CA264714 (S.F.), DE031112-01 (F.M.H.), KL2TR001874 (F.M.H.),3R01CA255298-01S1 (J.G.), 2L30DK126621-02

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,05 % trypsine-EDTAThermo Fisher Scientific25-300-120
0,25 % trypsine-EDTAThermo Fisher Scientific25-200-114
0,4 % Trypan BlueThermo Fisher ScientificT10282
Seringue à tuberculine 1 mL sans aiguilleBD309659
1,5 mL microtube à centrifugerThermo Fisher Scientific05-408-129
100 & micro ; crépine à cellules mThermo Fisher Scientific22363549
tubes coniques 15 mLThermo Fisher Scientific14-959-53A
200 µ ; Pointes de micropipette à alésage large LThermo Fisher Scientific212361A
Aiguilles 21 GBD305167
plaque à 24 puitsThermo Fisher Scientific12-556-006
4-Nitroquinoléine-1-oxyde (4NQO)Tokyo Chemical IndustryNO250
50 mL tubes coniquesThermo Fisher Scientific12-565-270
6 puits plaqueThermo Fisher Scientific12556004
70 & micro ; Filtre à cellules mThermo Fisher Scientific22363548
99,9 % éthylène propylène glycolSK picglobal
Advanced DMEM/F12Thermo Fisher Scientific12634028
Amphotéricine BGibco, Thermo Fisher Scientific15290018Concentration de stock 250 µ ; g/mL, concentration finale 0,5 & micro ; g/mL
Antibiotique-AntimycosiqueThermo Fisher Scientific15240062Concentration de stock 100x, concentration finale 1x
supplément de B-27Thermo Fisher Scientific17504044Concentration de stock 50x, concentration finale 1x
Gélose BactoBD214010
CO2 incubateur, par exemple Heracell 150iThermo Fisher Scientific51026406ou équivalent
Countess II FL Automated Cell CounterThermo Fisher ScientificAMQAX1000ou équivalent
CryovialsThermo Fisher Scientific03-337-7D
DietGel 76AClear H2O72-07-5022
Dimethyl sulfoxide (DMSO)MilliporeSigmaD4540
DispaseCorning354235Concentration de la matière 50 U/mL, concentration finale 2,5 &ndash ; 5 U/mL
Ciseaux de dissectionVWR25870-002
Solution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (PBS)Thermo Fisher Scientific14190250Concentration de stock 1x
sérum fœtal de veau (FBS)HyCloneSH30071.03
ForcepsVWR82027-386
Conteneur de congélationCorning432002ou équivalent
GélatineThermo Fisher ScientificG7-500
GlutaMAXThermo Fisher Scientific35050061Concentration de stock 100x, concentration finale 1x
HEPESThermo Fisher Scientific15630080Concentration de stock 1 M, concentration finale 10 mM
Plaque chauffante/agitateurCorningPC-420Dou équivalent
Laboratoire Bain de billes d’armure (ou bain-marie)VWR89409-222ou équivalent
Balance de laboratoireOhaus71142841ou équivalent
Extrait de membrane basale Matrigel (BME)Corning354234
Microcentrifugeuse MinispinEppendorf22620100ou équivalent
Rack de tubes de microcentrifugationSouthern Labware0061
Supplément N-2Thermo Fisher Scientific17502048Concentration de stock 100x, concentration finale 1x
N-acétylcystéine (NAC)Sigma-AldrichA9165Concentration de stock 0,5 M, concentration finale 1 mM
Parafilm M wrapThermo Fisher ScientificS37440
Paraformaldéhyde (PFA)MilliporeSigma158127-500G
Cassette de pathologieThermo Fisher Scientific22-272416
Microscope à contraste de phaseNikonou équivalent Facteur de
croissance épidermique (mEGF) de souris recombinantePeprotech315-09-1mgConcentration de stock 500 ng/µ ; L, concentration finale 100 ng/mL
RN Milieu conditionné par cellules exprimant R-Spondin1 et Noggin (RN CM)N/AN/ADisponible sur demande par l’intermédiaire de la carotte de culture organoïde et cellulaire, concentration finale 2 %
Centrifugeuse Sorval ST 16RThermo Fisher Scientific75004380ou équivalent
Inhibiteur de trypsine de soja (IST)MilliporeSigmaT9128Concentration de stock 250 µ ; g/mL
ThermoMixer CThermo Fisher Scientific14-285-562 PMou équivalent
Y-27632Selleck ChemicalsS1049Concentration de stock 10 mM, concentration finale 10 µ ; L

Références

  1. Rustgi, A. K., El-Serag, H. B. Esophageal carcinoma. The New England Journal of Medicine. 371 (26), 2499-2509 (2014).
  2. Dotto, G. P., Rustgi, A. K. Squamous cell cancers: A unified perspective on biology and genetics. Cancer Cell. 29 (5), 622-637 (2016).
  3. Giroux, V., <....

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Réimpressions et autorisations

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