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Article de méthode

Système de pseudo-îlots humains pour l’évaluation synchrone de la dynamique des biocapteurs fluorescents et des profils de sécrétion hormonale

2.9K vues

DOI :

10.3791/65259

3 novembre 2023

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode d’acquisition synchrone et de co-enregistrement d’événements de signalisation intracellulaire et de sécrétion d’insuline et de glucagon par des pseudo-îlots humains primaires en utilisant l’administration adénovirale d’un biocapteur d’adénosine monophosphate cyclique (AMPc), d’un détecteur de différence d’AMPc in situ (cADDis) et d’un système de micropérifusion.

Résumé

Les îlots pancréatiques de Langerhans, qui sont de petites collections 3D de cellules endocriniennes et de soutien spécialisées disséminées dans tout le pancréas, jouent un rôle central dans le contrôle de l’homéostasie du glucose par la sécrétion d’insuline par les cellules bêta, ce qui abaisse la glycémie, et de glucagon par les cellules alpha, qui augmente la glycémie. Les voies de signalisation intracellulaires, y compris celles médiées par l’AMPc, sont essentielles à la sécrétion régulée d’hormones alpha et bêta des cellules. La structure 3D des îlots pancréatiques, bien qu’essentielle à la coordination de la fonction des îlots pancréatiques, présente des défis expérimentaux pour les études mécanistiques des voies de signalisation intracellulaires dans les cellules primaires des îlots pancréatiques humains. Pour surmonter ces défis et ces limitations, ce protocole décrit une plate-forme intégrée d’imagerie et de microfluidique de cellules vivantes utilisant des pseudo-îlots humains primaires générés à partir de donneurs non diabétiques qui ressemblent à des îlots natifs dans leur morphologie, leur composition et leur fonction. La taille de ces pseudo-îlots est contrôlée par le processus de dispersion et de réagrégation des cellules primaires des îlots pancréatiques humains. À l’état dispersé, l’expression des gènes des cellules des îlots pancréatiques peut être manipulée ; par exemple, des biocapteurs tels que le biocapteur d’AMPc génétiquement codé, cADDis, peuvent être introduits. Une fois formés, les pseudo-îlots exprimant un biocapteur génétiquement codé, en combinaison avec la microscopie confocale et une plateforme de micropérifusion, permettent l’évaluation synchrone de la dynamique des biocapteurs fluorescents et des profils de sécrétion des hormones alpha et bêta des cellules alpha et bêta afin de mieux comprendre les processus et la fonction cellulaires.

Introduction

Les îlots de Langerhans sont des mini-organes disséminés dans tout le pancréas dont la fonction est cruciale pour le maintien de l’homéostasie du glucose. L’insuline est sécrétée par les cellules bêta à la suite du métabolisme du glucose, d’une augmentation du rapport ATP/ADP, de la fermeture des canaux potassiques sensibles à l’ATP, d’une dépolarisation de la membrane plasmique et de l’afflux de calcium extracellulaire1. La sécrétion de glucagon par les cellules alpha est moins comprise, mais il a été postulé que les voies intracellulaires et paracrines contribuent à l’exocytose des granules de glucagon 2,3,4....

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Protocole

Les îlots humains (N = 4 préparations) ont été obtenus grâce à des partenariats avec le Programme de distribution intégrée des îlots pancréatiques, le Programme d’analyse du pancréas humain, Prodo Laboratories, Inc. et Imagine Pharma. Le comité d’examen institutionnel de l’Université Vanderbilt ne considère pas les spécimens pancréatiques humains anonymisés comme des recherches sur des sujets humains. Ce travail ne serait pas possible sans les donneurs d’organes, leurs familles et les organismes d’approvisionnement en organes. Voir le tableau 1 pour obtenir des renseignements démographiques sur les donateurs. Les îlots humains provenant de donneurs de....

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Résultats

Des pseudo-îlots humains exprimant des biocapteurs ont été créés par l’administration adénovirale de constructions codant pour le biocapteur d’AMPc, cADDis (Figure 1A). La figure 1B montre la réagrégation des cellules d’îlots humains transduites au fil du temps, avec des pseudo-îlots complètement formés observés après 6 jours de culture. Les cellules ont commencé à montrer une fluorescence visible de cADDis dans les 48 heures, et il y avait une forte ex.......

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Discussion

L’intégration d’un système de micropérifusion, de pseudo-îlots exprimant des biocapteurs et d’une microscopie confocale à balayage laser permet l’évaluation synchrone des événements de signalisation intracellulaire et des profils dynamiques de sécrétion hormonale. Le système de micropérifusion dynamique peut fournir une série de stimuli bien définis aux pseudo-îlots et permet la collecte de l’effluent, dans laquelle les concentrations d’insuline et de glucagon peuvent être mesurées par ELISA disponible dans le commerce. .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les donneurs d’organes et leurs familles sont appréciés pour leurs dons inestimables, et l’Institut international des organisations d’approvisionnement en organes, l’Advancement of Medicine (IIAM) et le National Disease Research Exchange (NDRI) sont reconnus pour leur partenariat visant à rendre le tissu pancréatique humain accessible à la recherche. Ces travaux ont été soutenus par le Réseau de recherche sur les îlots humains (RRID :SCR_014393), le Programme d’analyse du pancréas humain (RRID :SCR_016202), DK106755, DK123716, DK123743, DK120456, DK104211, DK108120, DK112232, DK117147, DK112217, EY032442 et DK20593 (Vanderbilt Diabetes Research and Training Center), l....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Ad-CMV-cADDisWelgenSans objet
  ; 0,01 pouce Tube FEPIDEX1527L
1 M HEPESGibco15630-080Enrichi-CMRL Média Composant
1,5 mL et tubes coniquesN’importe lequel
10 &mu ; m Filtre PTFECole-ParmerSK-21940-41Changer tous les 8 à 10 cycles
100 mM Pyruvate de sodiumThermo Scientific11360070Enriched-CMRL Media Component
190 proof EthanolDecon labs2816Acid Ethanol Component
200 mM GlutaMAX-I SupplementGibco35050061Enriched-CMRL Media Component
AscorbateSigmaA5960Composant du tampon de périfusion DMEM Albumine
sérique bovineSigmaA7888composant du tampon de périfusion DMEM
  ;Omnifit006BT
CellCarrier ULA  ; Microplaques à 96 puitsPerkin Elmer6055330
logiciel d’analyse cellSensOlympusv3.1Logiciel utilisé pour l’analyse des données
CMRL 1066MediaTech  ;15-110-CVComposant de média CMRL enrichi
Adaptateur conique (IDEX, P-794)IDEXP-794
D-(+)-GlucoseSigmaG7528Composant tampon
de glucose DMEM  ;SigmaD5030DMEM Composant du tampon de périfusion Chambre
environnementaleokolabIX83
Épinéphérine (Epi)SigmaE4250Composant du tampon de stimulation
Sérum fœtal bovin (FBS), Inactivé par la chaleurSigma12306CEnrichi-CMRL Composant du milieu
Glucagon ELISAMercodia10-1281-01
Glucagon Kit HTRFCisbio62CGLPEH
HCl (12N)AnyAny Acid Ethanol Component
HEPESSigmaH7523DMEM Perifusion Buffer Component iCell
Endothelial Cells Medium SupplementCell Cell DynamicsM1019iEC Media Component
Idex Derlin nut & ferrule 1/4-24Cole-ParmerEW-00414-LW
Insuline ELISAMercodia10-1113-01
Isobutylméthylonine (IBMX)SigmaI5879Composant du tampon de stimulation Microscope
confocal à balayage laser OlympusFV3000
L-GlutamineSigmaG8540DMEM Microchip
(Université de Miami, FP-3W)Université de MiamiFP-3W
Support de micropuce  ;Micronit MicrofluidicsFC_PRO_CH4525
Modèle 2110 Collecteur de fractionsBiorad7318122
pipettes et pointes P10, P200 et P1000N’importe quelTout
/streptomycineGibco15140-122Composant de média enrichi CMRL
Pompe péristaltique  ;InstechP720
Phosphate Tamponné SalineGibco14190-144Wash Islets
Sarstedt platsSarstedtdépend du diamètre
Bicarbonate de sodiumSigmaS6014DMEM Perifusion Buffer Component
Sodium PyruvateSigmaP2256  ; DMEM Perifusion Buffer Component
StereoscopeOlympusSZX12
Filtre Steriflip (0.22 &mu ; m)MilliporeSCGP00525Filtrez deux fois tous les tampons
VascuLife VEGF Medium Complete KitLifeLine Cell TechnologyLL-0003iEC Media Component
Piège à bulles du pénicillinedu plat

Références

  1. Tokarz, V. L., MacDonald, P. E., Klip, A. The cell biology of systemic insulin function. The Journal of Cell Biology. 217 (7), 2273-2289 (2018).
  2. Yu, Q., Shuai, H., Ahooghalandari, P., Gylfe, E., Tengholm, A. Glucose controls glucagon secretion by directly modulating cAMP in alph....

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