Un protocole efficace de perfusion sanguine rapide est présenté ici pour préparer des échantillons de tissus de grenouilles à griffes africaines pour des études transcriptomiques et protéomiques.
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Article de méthode
Un protocole efficace de perfusion sanguine rapide est présenté ici pour préparer des échantillons de tissus de grenouilles à griffes africaines pour des études transcriptomiques et protéomiques.
Les Xénopes sont de puissants organismes modèles pour comprendre le développement des vertébrés et les maladies depuis plus de 100 ans. Ici, un protocole de perfusion sanguine rapide dans Xenopus, visant à une réduction cohérente et drastique du sang dans tous les tissus, est défini. La perfusion est réalisée en insérant une aiguille directement dans le ventricule du cœur et en pompant une solution saline héparinée tamponnée au phosphate (PBS) à travers le système vasculaire. La procédure peut être complétée en environ 10 minutes par animal. Le sang est dominé par quelques protéines et types de cellules très abondants, créant de nombreux problèmes car ces protéines masquent la plupart des autres molécules et types de cellules d’intérêt. La caractérisation reproductible des tissus Xenopus adultes avec la protéomique quantitative et la transcriptomique unicellulaire bénéficiera de l’application de ce protocole avant l’échantillonnage d’organes. Les protocoles d’échantillonnage tissulaire sont définis dans des documents d’accompagnement. Ces procédures visent à normaliser les pratiques chez Xenopus de sexe, d’âge et d’état de santé différents, en particulier X. laevis et X. tropicalis.
La perfusion du corps entier des amphibiens est systématiquement complétée à des fins de préservation et de fixation 1,2,3,4,5,6. Cependant, ces procédures se produisent à un rythme qui limite le nombre d’échantillons frais qui peuvent être prélevés par animal. Le but de ce travail est de développer un protocole de perfusion sanguine efficace chez Xenopus, en priorisant la vitesse de la technique. Le protocole prend moins de 10 minutes par animal pour X. tropi....
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Toutes les expériences ont été réalisées conformément aux règles et règlements de la Harvard Medical School IACUC (Institutional Animal Care and Use Committee) (IS 00001365_3).
REMARQUE : Bien que la principale méthode d’euthanasie décrite soit considérée comme une technique acceptable pour l’euthanasie par l’American Veterinary Medical Association12, il n’a pas été constaté qu’elle entraînait l’arrêt d’un battement de cœur13. Même la méthode secondaire fréquemment utilisée de double pithing n’empêche pas cela, pas plus que le retrait du cœur de l’animal. L’exsanguination des animaux anesthési....
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Après une perfusion réussie, tous les tissus (à l’exception du foie dans Xenopus pigmenté) seront nettement plus légers et moins saturés de sang. Les principaux vaisseaux sanguins deviendront moins visibles (figure 10) et les tissus (à l’exclusion du foie) se rinceront proprement dans le tampon après avoir été échantillonnés. Bien que la réussite de l’exécution du protocole ne puisse finalement être confirmée que par la qualité des données provenant d’échantillons de tissus exsangui.......
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Ce protocole décrit les techniques de dissection traditionnelles pour accéder à la cavité cœlomique. D’autres techniques sont également acceptables, à condition qu’elles causent des dommages minimes aux tissus, que le cœur soit accessible et que les poumons et l’estomac soient visibles. De même, la plupart des outils de dissection énumérés peuvent être facilement remplacés par des éléments comparables.
Bien que des tentatives aient été faites pour optimiser l’efficacité de cette procédure, les.......
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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Ce travail a été soutenu par le OD031956 de subvention OD R24 des NIH et le HD073104 de subvention NICHD R01. Nous remercions Darcy Kelly pour ses discussions utiles et ses premiers commentaires sur ce protocole. Nous tenons également à remercier Samantha Jalbert, Jill Ralston et Wil Ratzan pour leur aide et leur soutien, ainsi que nos trois pairs examinateurs anonymes pour leurs commentaires.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 5x Loupe avec lumière LED et support | amazon.com | la | lumière B08QJ6J8P1 ne doit pas produire de chaleur |
| Pipettes de transfert jetables | VWR | 414004-036 | |
| Dissection pince à pointe fine | Fisher Scinetific | 08-875 | |
| Ciseaux de dissection piont pointus, droits 6.5" | VWR | 76457-374 | |
| Plateau de dissection | Fisher Scinetific | 14-370-284 | Les feuilles de polystyrène sont une alternative acceptable |
| Récipient d’euthanasie | Article en plastique US | ; 2860 | contenants opaques alternatifs acceptables |
| Couvercle de récipient d’euthanasie | US Plastic | Item ; 3047 | |
| Broches de dissection fine | Living Systems Instrumentation | PIN-#3 | |
| Aiguilles hypodermiques à usage général, 22 G | Fisher Scientific | 14-826-5A | pour X. laevis |
| Aiguilles hypodermiques à usage général, 25 G | Fisher Scientific | 14-826AA | pour X. tropicalis |
| Héparine, muqueuse | intestinale porcineCiseaux d’iridectomie MilliporeSigma | 37-505-410MG | |
| 6" | vwr | 470018-938 | ciseaux à iris sont une alternative acceptable |
| Adaptateur Luer à barbe mâle Luer avec bague de verrouillage | amazon.com | B09PTX6M2Z | taille dépendra de l’arrosage de la pompe utilisé |
| Porte-aiguille Mayo-Hegar | Fisher Scinetific | 08-966 | pince moustique sont une alternative acceptable |
| MS-222 : Syncaine (anciennement tricaïne) | Pentair AES | TRS1 | |
| PBS 1x | Corning | 21-040-CV | |
| Pompe doseuse de liquide péristaltique 5&ndash ; 100 mL/min | amazon.com | B07PWY4SM6 toute pompe péristaltique capable de pomper 5-10 mL/min est acceptable | |
| Pierre à aiguiser | VWR | 470150-112 | en option ; pour émousser les aiguilles |
| Bicarbonate de sodium, poudre, USP | Fisher Scientific | 18-606-333 | |
| Pince à échantillons, dentelée | VWR | 82027-442 | |
| Broches en T pour la dissection | Fisher Scinetific | S99385 | |
| Seringues à insuline courtes ultra-fines, 31 G | VWR | BD328438 | |
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