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Article de méthode

Transformation racinaire poilue du soja pour l’analyse de la fonction génique

5.5K vues

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DOI :

10.3791/65485

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5 mai 2023

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole pour la production à haute efficacité de racines velues de soja transgéniques.

Résumé

Le soja (Glycine max) est une culture précieuse en agriculture qui a des milliers d’utilisations industrielles. Les racines de soja sont le principal site d’interaction avec les microbes du sol qui forment une symbiose pour fixer l’azote et les agents pathogènes, ce qui rend la recherche sur la génétique des racines de soja d’une importance primordiale pour améliorer sa production agricole. La transformation génétique des racines velues du soja (HR) est médiée par la souche Agrobacterium rhizogenes NCPPB2659 (K599) et constitue un outil efficace pour étudier la fonction des gènes dans les racines de soja, ne prenant que 2 mois du début à la fin. Ici, nous fournissons un protocole détaillé qui décrit la méthode pour surexprimer et réduire au silence un gène d’intérêt dans les HRs de soja. Cette méthodologie comprend la stérilisation des graines de soja, l’infection des cotylédons par K599, ainsi que la sélection et la récolte de RR génétiquement transformés pour l’isolement de l’ARN et, s’il y a lieu, l’analyse des métabolites. Le débit de l’approche est suffisant pour étudier simultanément plusieurs gènes ou réseaux et pourrait déterminer les stratégies d’ingénierie optimales avant de s’engager dans des approches de transformation stables à long terme.

Introduction

Le soja (Glycine max) est l’une des cultures les plus précieuses en agriculture. Il a des milliers d’utilisations commerciales et industrielles, telles que l’alimentation, l’alimentation animale, l’huile et comme source de matières premières pour la fabrication1. Sa capacité à former une relation symbiotique avec les microorganismes fixateurs d’azote du sol, à savoir les rhizobiums, accroît encore l’importance de l’étude de la génétique du soja2. Par exemple, le réglage fin des propriétés de fixation de l’azote dans les racines de soja peut entraîner une réduction des émissions de carbone et réduire considérable....

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Protocole

REMARQUE : Il est recommandé que toutes les étapes de la procédure soient effectuées dans des conditions stériles.

1. Stérilisation des semences de soja

  1. Dans une enceinte de biosécurité, placer 16 à 20 graines de soja Williams 82 rondes en parfait état (c.-à-d. sans fissures ni imperfections) dans un tube à centrifuger de 50 mL.
  2. Ajouter 30 mL d’alcool isopropylique à 70 %, agiter doucement pendant 30 s, puis décanter l’alcool.
  3. Agiter doucement les graines avec 30 ml d’eau de Javel à 10 % pendant 10 s et laisser reposer les graines dans la solution pendant 5 minutes à température ambiante (RT, 2....

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Résultats

Les résultats représentatifs proviennent des données publiées 19,20. Les résultats de la PCR (cPCR) de la colonie K599 Agrobacterium transformée sont présentés à la figure 1. Comme l’indiquent les colonies positives de la figure 1, le gène d’intérêt a été détecté par PCR (figure 1A). Cependant, un tiers à la moitié des colonies étaient négatives pour le criblage du .......

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Discussion

Au cours de la dernière décennie, la méthode HR du soja a été développée comme un outil puissant pour étudier les gènes impliqués dans la fixation de l’azote 22,23, la tolérance au stress biotique et abiotique 24,25 et les voies de biosynthèse des métabolites 26,27. La connaissance de la façon dont les plantes produisent des métabolites présente u.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette recherche a été financée par le numéro de subvention RGPIN-2020-06111 du Conseil de recherches en sciences naturelles et en génie du Canada (CRSNG) et par un généreux don de Brad Lace. Nous tenons à remercier Wayne Parrott (Université de Géorgie) pour l’Agrobacterium K599 et le protocole préliminaire, et le laboratoire Nakagawa & Hachiya (Université de Shimane) pour les vecteurs vides pGWB2, pGWB6 et pANDA35HK.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AcétosyringoneCaïman23224
Eau de Javellavo21124
DMSOBioréactifs Fisher195679
GelzanPhytotechHYY3251089A
HygromycinePhytotechHHA0397050B
Alcool isopropyliqueFisher206462
KanamycinPhytotechSQS0378007G
LB poudreBioréactifs Fisher200318
poudre MS LaboratoiresCaisson2210001
Na2HPO4Fisher bioréactifs194171
NaClFisher 192946
chimique Boîtes de PétriFisherbrand08-757-11100 mm x 25 mm
PhosphinothricineCedarlaneP034-250MG
REDExtract-N-Amp Kit PCRSigmaR4775
SucroseBioshop2D76475
TimentinCaisson labs12222002
VitaminsCaissonlabs 2211010
chimique

Références

  1. Li, S., et al. Optimization of Agrobacterium-mediated transformation in soybean. Frontiers in Plant Science. 8, 246(2017).
  2. Elhady, A., Hallmann, J., Heuer, H. Symbiosis of soybean with nitrogen fixing bacteria ....

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Réimpressions et autorisations

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