Isolement de cellules avec des informations morphologiques et spatiales à partir d’échantillons de fibrose sous-muqueuse buccale par microdissection par capture laser

Résumé

La microdissection par capture laser des tissus de fibrose sous-muqueuse buccale permet d’extraire avec précision des cellules des régions histologiques d’intérêt pour l’analyse de données multi-omiques avec des informations morphologiques et spatiales.

Résumé

La fibrose sous-muqueuse buccale (OSF) est un type courant de trouble potentiellement malin dans la cavité buccale. L’atrophie de l’épithélium et la fibrose de la lamina propria et de la sous-muqueuse sont souvent retrouvées sur les lames histopathologiques. Il a été proposé que la dysplasie épithéliale, l’atrophie épithéliale et les fibroblastes sénescents soient associés à la transformation maligne de l’OSF. Cependant, en raison de l’hétérogénéité des maladies buccales potentiellement malignes et du carcinome épidermoïde buccal, il est difficile d’identifier les mécanismes moléculaires spécifiques de la transformation maligne dans l’OSF. Nous présentons ici une méthode permettant d’obtenir un petit nombre de cellules épithéliales ou mésenchymateuses portant des données morphologiques et des informations spatiales par microdissection à capture laser sur des lames de tissus enrobés de paraffine fixées au formol. À l’aide d’un microscope, nous pouvons capturer avec précision le tissu épithélial dysplasique ou atrophique à l’échelle microscopique (~500 cellules) et le tissu sous-épithélial fibrotique. Les cellules extraites peuvent être évaluées par séquençage du génome ou du transcriptome afin d’acquérir des données génomiques et transcriptomiques avec des informations morphologiques et spatiales. Cette approche élimine l’hétérogénéité du séquençage tissulaire OSF en vrac et l’interférence causée par les cellules dans les zones non lésionnelées, ce qui permet une analyse spatio-omique précise des tissus OSF.

Introduction

La fibrose sous-muqueuse buccale (OSF) est une maladie chronique et insidieuse qui se développe principalement dans la muqueuse buccale et entraîne une ouverture de la bouche restreinte¹. Alors que l’OSF est une maladie multifactorielle, la mastication de la noix d’arec ou de la noix de bétel est la principale cause d’OSF ^2,3. En raison de cette habitude géographiquement spécifique, l’OSF est principalement concentrée dans les populations d’Asie du Sud-Est et d’Asie du Sud³. Les caractéristiques histologiques communes de l’OSF comprennent un dépôt anormal de coll....

Protocole

Cette étude a été approuvée par le comité d’examen institutionnel de l’école et de l’hôpital de l’Université de Pékin. Le consentement éclairé des patients a été obtenu. Les échantillons de tissus utilisés dans cette étude ont été anonymisés. Le schéma d’étude est illustré à la figure 1.

1. Préparation de l’échantillon

1. Couper des tissus de fibrose sous-muqueuse buccale enrobés de paraffine fixés au formol en sections continues de 3 μm et 10 μm d’épaisseur sur un microtome.
2. Dépliez les sections dans l’eau, puis pêchez sur les toboggans. Fixez les sections de 3 μM et 10 μm sur....

Résultats

En effectuant une microdissection laser des tissus OSF, nous avons capturé des échantillons d’épithélium dysplasique, de stroma sous l’épithélium dysplasique, d’épithélium atrophique et de stroma sous le tissu épithélial atrophique (Figure 1). Grâce à l’extraction de l’ADN et au séquençage du génome entier à faible profondeur, nous avons pu analyser les altérations du nombre de copies (CNA) liées à la morphologie15. L’AIC est une forme courante d’instabilité génomique.......

Discussion

Ce protocole prévoyait la mise en place d’un pipeline permettant de capturer des échantillons de tissus OSF avec des informations morphologiques et spatiales pour d’autres analyses spatio-omiques par microdissection laser. À partir des résultats représentatifs, nous avons identifié différents modèles d’AIIC parmi divers échantillons liés à la morphologie.

L’OSF, un type d’OPMD, est une affection précancéreuse courante du carcinome épidermoïde buccal⁶. L’instabilité géno.......

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Lames de microscope à adhérence	CITOTEST	REF.188105
Div-haematoxylin	YiLi	20230326
Eosin solution	BASO	BA4098
Éthanol	PEKING REAGENT	N°32061
Harris hematoxylin dye solution	YiLi	20230326
Plaque chauffante	LEICA	HI1220
Système de microdissection par capture laser	LEICA	LMD7	Machine
Microsystème de microdissection laser	LEICA	8.2.3.7603
Logiciel Support de montage pour micromonture	LEICA	REF.3801731
Verre de protection de microscope	CITOTEST	REF.10212450C
Microtome	LEICA	RM2235
Tubes PCR	AXYGEN	16421959
PEN-lames à membrane	LEICA	n° 11505158
Solution Re-blue	YiLi	20230326
Eau distillée ultrapure	Invitrogen	REF.10977-015
Xylène	PEKING REAGENT	n° 33535