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Article de méthode

In vivo Enregistrement par patch-clamp de cellules entières de neurones peptidergiques hypothalamiques chez des larves de poisson-zèbre

780 vues

DOI :

10.3791/68943

22 août 2025

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Cet article présente un protocole d’enregistrement in vivo de l’activité électrique des neurones peptidergiques hypothalamiques à l’aide de l’électrophysiologie patch-clamp de cellules entières chez des larves intactes de poisson-zèbre.

Résumé

L’hypothalamus est une ancienne région du cerveau qui régule divers aspects de la physiologie et du comportement, notamment le sommeil et l’éveil, l’appétit, l’homéostasie énergétique, l’anxiété, la dépression et l’interaction sociale. Des populations neuronales spécifiques de l’hypothalamus exercent leurs effets via la libération de neurotransmetteurs et de neuropeptides. L’enregistrement par patch-clamp sur cellule entière est une approche indispensable pour étudier le rôle de ces facteurs dans la transmission synaptique et le fonctionnement du cerveau. Cependant, il est difficile d’accéder aux neurones hypothalamiques pour les enregistrements électrophysiologiques chez les mammifères intacts en raison de leur emplacement profond dans le cerveau. Par conséquent, notre compréhension des propriétés intrinsèques et des fonctions physiologiques des neurones hypothalamiques est limitée. La larve de poisson-zèbre est un modèle alternatif utile pour étudier les neurones hypothalamiques en raison de son cerveau vertébré transparent et petit, mais bien conservé. Ici, nous présentons un protocole pour l’enregistrement in vivo de neurones hypothalamiques dans des larves de poisson-zèbre intactes. En utilisant cette technique, nous pouvons enregistrer à partir de neurones peptidergiques dans l’hypothalamus, examiner les réponses de ces neurones aux stimuli sensoriels et explorer leurs effets sur les neurones en aval. Cette technique expérimentale fournit donc une approche utile pour étudier les fonctions physiologiques des neurones neuropeptidergiques hypothalamiques chez des animaux intacts.

Introduction

En tant que modèle animal vertébré populaire, le poisson-zèbre (Danio rerio) est largement utilisé dans la recherche en neurosciences et présente plusieurs avantages1. Leur complément de gènes et leur architecture cérébrale sont très conservés chez les mammifères, et ils ont un riche répertoire comportemental, ce qui les rend utiles pour étudier les mécanismes génétiques et neuronaux qui sous-tendent des comportements tels que le sommeil, l’anxiété, la dépression et l’interaction

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Protocole

Toutes les expériences ont été approuvées par l’Institutional Care and Use Committee (IACUC) de l’Université de Shanghai (protocole animal YS 2025-169) et l’IACUC de l’Institut de technologie de Californie (protocole animal 1836). Des poissons-zèbres de 5 à 7 jours après la fécondation (dpf) ont été nourris avec des rotifères et utilisés pour des expériences. À ce stade de développement, le sexe n’est pas déterminé. Des poissons-zèbres adultes sur un fond de nacre [mitfa(w2/w2)]24 ont été utilisés pour la reproduction.

1. Solutions et recettes

  1. Préparez un....

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Résultats

Dans ce manuscrit, nous présentons une technique améliorée d’enregistrement in vivo de cellules entières pour étudier les neurones hypothalamiques chez le poisson-zèbre intact, en nous concentrant particulièrement sur les neurones d’hypocrétine (Hcrt).

Comme présenté dans la figure 1, notre méthodologie permet des enregistrements électrophysiologiques directs de ces neurones profondément dans le cerveau chez un animal intact (Figure 1.......

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Discussion

Le protocole décrit ici permet d’enregistrer par patch-clamp les neurones peptidergiques dans l’hypothalamus larvaire du poisson-zèbre, l’une des régions cérébrales les plus profondes et les plus difficiles d’accès sur le plan technique. En raison de la difficulté inhérente à cette préparation, les enregistrements réussis à l’aide d’un patch-clamp nécessitent une attention méticuleuse à quelques paramètres critiques, à savoir la qualité de la pipette, la technique d’approche, la pureté d.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts et rien à divulguer.

Remerciements

Nous tenons à remercier le Dr Daniel Wagenaar pour son aide dans la conception de dispositifs pour les expériences optogénétiques. Ce travail a été soutenu par les subventions R35 NS122172 et R34 NS126800 des National Institutes of Health à D.A.P, et le Shanghai Overseas Talents Introduction Program à R.Z.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AmplificateurAxone700 milliards
Capillaires en verre borosilicatéSutterRéf. BF100-58-10
Caméra CCDDage-MTIIR-1000
Ordinateurs pour les enregistrements électrophysiologiquesVallonPrécision 3660
DigidataAxone1440A
Faraday CageSur mesure
ForcepsF.S.T.Dumont #5
IncubateurLonroyGZP-150B
Filtre à membraneMillipore SigmaSLGV004SL
Micro couteauF.S.T.10318-14
ObjectifOlympeMplan 5X/0.1 ; UMPlanFI/IR 60X/0.9w
Pompe péristaltiquePlusRéf. BT100-1L
Porte-pipetteNarishigeH-7pour la dissection
ExtracteurSutter InstrumentP-97
Stéréomicroscope pour le dépistage et la dissection par fluorescenceOlympeSZX16
StimulateurA.M.P.IMaster8
Micromanipulateur tridimensionnelSutter InstrumentMPC-325
Microscope DIC infrarouge droitOlympeBX51WI
Table d’isolation des vibrationsTMC61-541-06
Moniteur vidéoSUNSPORéf. SP-717
Bain-marieYihengLe HWS-12
Traducteur X-YSur mesure

Références

  1. Bradbury, J. Small fish, big science. PLoS Biology. 2, e148(2004).
  2. Rihel, J., et al. Zebrafish behavioral profiling links drugs to biological targets and rest/wake regulation. Science. 327, 348-351 (2010).
  3. Oikonomou, G., Prober, D. A.

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Neurones hypothalamiquesenregistrement in vivoenregistrement lectrophysiologiquetransmission synaptiquelib ration de neurotransmetteurssignalisation des neuropeptidescerveau de vert br