Le protocole de recherche a été approuvé par le Comité d’éthique du Second Hôpital Affilié de la Faculté de Médecine de l’Université du Zhejiang (n° 2025-0581). Toutes les expériences et procédures ont été réalisées conformément à la Déclaration d’Helsinki (révisée en 2013). Cette étude rétrospective a inclus 47 patients hospitalisés pour LETM au Second Affiliated Hospital de la Faculté de Médecine de l’Université du Zhejiang. Cette étude a obtenu le consentement éclairé de tous les participants. Cette étude de cohorte rétrospective a inclus tous les patients éligibles. Une analyse de puissance post-hoc a été réalisée pour évaluer l’adéquation de la taille de l’échantillon. Les résultats ont montré qu’avec la taille d’échantillon actuelle, la taille d’effet observée était de 1,213515, et la puissance atteinte (1-β err probable) était de 0,9659161, ce qui dépasse le seuil conventionnel de 0,8. Ainsi, la taille de l’échantillon répond aux exigences statistiques.
Recrutement des patients
Critères d’inclusion : Inclure les patients souffrant d’attaques aiguës, disposant de données cliniques complètes, dont le sérum a été testé négatif pour les anticorps MOG, AQP4 et GFAP, et dont les segments affectés étaient supérieurs ou égaux à trois18. Critères d’exclusion : Excluez les patients ayant souffert d’autres maladies pouvant entraîner un handicap, ainsi que ceux ayant accepté l’efgartigimod à l’apparitionaiguë 18. Collecte d’informations des patients : Les données démographiques, notamment l’âge, le sexe, la durée de la maladie et la longueur des segments vertébraux concernés, ont été enregistrés.
Traitement et évaluation clinique
Regrouper les patients selon leur schéma thérapeutique respectif. Les patients ont été divisés en deux groupes : le groupe de traitement efgartigimod (n = 11) et le groupe de traitement conventionnel (n = 36). Dans le groupe efgartigimod, les patients ont reçu une administration de 400 mg d’efgartigimod pendant 2 semaines, suivie d’une perfusion intraveineuse de 1 000 mg de méthylprednisolone mélangée à 500 mL de solution de glucose à 10 %, administrée sur une période de traitementde 2 semaines 16. Dans le groupe de traitement traditionnel, les patients ont été traités par perfusion intraveineuse de 1 000 mg de méthylprednisolone mélangée à 500 mL de solution de glucose à 10 % administrée sur une période de traitementde 2 semaines 19.
Paramètres d’évaluation clinique des patients
Le handicap des patients a été évalué à l’aide d’une série d’indices, dont l’échelle élargie de statut d’invalidité (EDSS) et l’échelle de fragilité clinique (SFC)20,21. La qualité de vie des patients a été évaluée avec le Health Survey Short Form-36 (SF-36), incluant le fonctionnement physique (PF), la santé mentale (MH), la douleur (PA), la santé générale (GH), la vitalité (VT), le fonctionnement social (SF), le rôle émotionnel (ER) et le rôle physique (RP)22.
Mesure de l’interleukine-6 (IL-6), IL-10 et IL-41
Des échantillons sanguins à jeun ont été prélevés le matin. Le sérum a été isolé du sang par centrifugation de 10 minutes à 1 000 x g et stocké à -80 °C pour une analyse ultérieure. La durée de stockage de tous les échantillons variait de 6 à 48 mois.
Les niveaux sériques d’IL-6, IL-10 et IL-41 ont été mesurés à l’aide de kits d’immunosorbent liés aux enzymes (ELISA), suivant les instructions du fabricant (Table of Materials). Équilibrez tous les réactifs du kit ELISA à température ambiante pendant 20 minutes avant l’analyse. Des puits standards, d’échantillonnage et vierges étaient utilisés. 50 μL de solution standard à différentes concentrations (0-100 pg/mL) ont été ajoutés dans les puits standards, 50 μL de l’échantillon sérique ont été ajoutés dans les puits d’échantillonnage, et 50 μL de diluant d’échantillon ont été ajoutés aux puits blancs. Un tampon de lavage était préparé en diluant la solution de lavage concentrée avec de l’eau double distillée à un ratio de 1:24. Le tampon préparé était utilisé le même jour afin d’assurer une efficacité optimale de lavage.
Calculait le volume de la solution de travail en fonction des besoins expérimentaux (100 μL par puits). À 15 minutes avant utilisation, centrifugé l’anticorps biotinylé concentré 100x à 7 150 x g pendant 1 minute et dilué avec un tampon de dilution d’anticorps biotinylé à un ratio de 1:99 pour obtenir une concentration de travail 1x. J’ai utilisé immédiatement la solution de travail préparée pour maintenir son activité. Le conjugué HRP était constitué de streptavidine conjuguée HRP. Calculé le volume requis en fonction des exigences expérimentales (100 μL par puits), avec 100 à 200 μL supplémentaires préparés pour garantir une quantité suffisante. À 15 minutes avant utilisation, centrifugé le conjugué HRP concentré 100x à 11 173 x g pendant 1 minute puis dilué avec un tampon de dilution conjugué HRP à un rapport de 1:99 pour obtenir une concentration de travail 1x. A utilisé immédiatement la solution de travail préparée pour préserver son activité.
Préparer les puits standards (100 μL d’étalon dilué), les puits vierges (100 μL de tampon standard et de dilution d’échantillon) et les puits d’échantillon (100 μL d’échantillon d’essai dilué) en conséquence. Après l’ajout des solutions, scellez la plaque avec une membrane et incubez à température ambiante pendant 1,5 heure. Après l’incubation, retirez le liquide des puits sans le laver. Ensuite, 100 μL de solution active à anticorps biotinylés ont été ajoutés à chaque puits. Scellez la plaque et incubez à 37 °C pendant 1 heure pour faciliter la liaison de l’anticorps biotinylé aux complexes antigène-anticorps. Après l’incubation, retirez le liquide dans les puits et séchez la plaque sur un papier absorbant propre. Remplissez chaque puits avec 350 μL de tampon de lavage et laissez reposer 1 minute. Après avoir retiré le liquide, séchez à nouveau l’assiette sur du papier absorbant. J’ai répété cette procédure de lavage 4 fois.
Après le lavage, ajoutez 100 μL de solution de travail conjuguée enzymatique à chaque puits. Scellez la plaque et incubez à 37 °C pendant 30 minutes pour permettre une liaison complète entre le conjugué HRP et l’anticorps biotinylé. Après l’incubation, retirez complètement le liquide des puits et séchez la plaque sur un papier absorbant propre. Répétez la procédure de lavage décrite ci-dessus 5 fois pour éliminer complètement les conjugués enzymatiques non liés et minimiser les réactions non spécifiques. Après le lavage, ajoutez 90 μL de la solution de substrat à chaque puits. Scellez la plaque et étouffez à 37 °C dans le noir pendant environ 15 minutes. Préchauffe le lecteur de microplaques pendant 15 minutes pour garantir la précision de la détection. Après incubation, 50 μL de solution d’arrêt ont été ajoutés à chaque puits pour mettre fin au développement des couleurs et à la réaction enzymatique. Après la fin de la réaction, la densité optique (OD) à 450 nm de chaque puits était immédiatement mesurée, et les résultats étaient enregistrés à l’aide d’un lecteur de microplaques pour une analyse et un calcul ultérieurs des données.
Analyse statistique
Une analyse statistique a été réalisée sur SPSS 27.0 et GraphPad Prism 8.4.3. Des échantillons indépendants comme le test t et le test χ2 ont été utilisés pour comparer les données de base entre les deux groupes. Le test t par échantillon jumelé ou test Wilcoxon a été utilisé pour comparer les scores cliniques et les scores de qualité de vie avant et après le traitement. De plus, les niveaux sériques d’IL-6, IL-10 et IL-41 ont été comparés avant et après le traitement à l’aide d’un test t par échantillon jumelé. Une comparaison entre les deux groupes a été réalisée à l’aide d’un test t d’échantillons indépendants. Le coefficient de corrélation de Pearson a été utilisé pour mesurer la corrélation entre les niveaux de facteurs inflammatoires et l’EDSS. Les différences ont été considérées comme statistiquement significatives à p < 0,05.