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Article de méthode

Thérapie par électroacupuncture pour le trouble cognitif après une lésion de la moelle épinière

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DOI :

10.3791/69346

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21 novembre 2025

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1School of Acupuncture, Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Rehabilitation, The Third Affiliated Hospital of Beijing University of Chinese Medicine, 3Department of Rehabilitation, Jiangsu Changshu Second People's Hospital, 4Traditional Chinese Medicine Department, Shenzhen Third People's Hospital, Southern University of Science and Technology

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Cette étude a établi une procédure standardisée d’électroacupuncture visant à traiter les troubles cognitifs après une lésion de la moelle épinière. De plus, le protocole pour réaliser le labyrinthe en Y et les nouvelles expériences de reconnaissance d’objets afin d’évaluer l’efficacité de l’électroacupuncture pour atténuer les déficits cognitifs a été décrit en détail.

Résumé

La lésion de la moelle épinière (LME) est une maladie hautement invalidante et destructrice du système nerveux central (SNC), qui entraîne non seulement des dysfonctionnements moteurs et sensoriels des membres, mais perturbe également la structure et la fonction de l’hippocampe et du cortex, entraînant un trouble cognitif qui affecte gravement la qualité de vie des patients. Il est donc impératif d’explorer des approches thérapeutiques efficaces et des méthodes d’évaluation. L’électroacupuncture (EA) est une thérapie novatrice qui intègre l’acupuncture traditionnelle à la technologie contemporaine d’électrothérapie, qui présente les avantages d’une grande sécurité et peu d’effets secondaires, et qui a été largement utilisée dans la prise en charge des LME. Selon la théorie de la médecine traditionnelle chinoise (MTC), le vaisseau gouverneur relie le cerveau et la moelle épinière. Ainsi, l’AA aux points d’acupuncture situés sur le vaisseau gouverneur peut restaurer efficacement les fonctions du cerveau et de la moelle épinière. Dans ce protocole, nous avons utilisé la méthode d’Allen pour construire le modèle SCI. Nous avons introduit une procédure d’EA visant à traiter les troubles cognitifs chez les rats atteints de LME. De plus, nous avons décrit en détail le processus opérationnel de l’expérience Y de la reconnaissance d’objets (NOR) pour évaluer l’efficacité de l’EA à atténuer les déficits cognitifs chez les rats. Cette recherche fournit non seulement un protocole de traitement servant de référence pour le trouble cognitif après une LME, mais offre aussi un soutien expérimental préliminaire pour la validation des stratégies thérapeutiques pour cette affection et l’exploration ultérieure de la recherche.

Introduction

La lésion de la moelle épinière (LME) est un trouble courant du système nerveux central (SNC), généralement résultant de lésions de la moelle épinière ou de ses structures environnantes dues à des forces externes. Cette affection peut entraîner des dysfonctionnements sensoriels, moteurs et nerveux autonomes en dessous du niveau1 de la blessure. Plus important encore, les LME peuvent également provoquer des complications secondaires telles que l’anxiété, la dépression et le troublecognitif 2,3, qui nuisent à la rééducation des patients et diminuent significativement leur qualité de vie. De nombreuses études épidémiologiques ont montré que le risque de maladie d’Alzheimer (MA) chez les patients atteints de LM est nettement plus élevé que dans la populationgénérale 4,5,6. Une autre étude a confirmé que l’incidence du trouble cognitif chez les patients atteints de LME peut atteindre jusqu’à 60 %5,7. La LME entraîne non seulement une atrophie du cortex moteur, mais réduit également l’activité neuronale dans les régions cérébrales associées à la fonctioncognitive 8. L’inflammation accrue de l’hippocampe, du thalamus et du cortex après une LME est considérée comme un facteur significatif du troublecognitif 9,10,11. Améliorer les complications liées aux LME, telles que le trouble cognitif, est crucial pour améliorer la rééducation des patients et faciliter leur réintégration dans la société.

L’acupuncture est un composant important de la médecine traditionnelle chinoise (MTC), reconnue pour son efficacité clinique remarquable. L’électroacupuncture (EA) représente une thérapie innovante qui intègre l’acupuncture traditionnelle aux techniques contemporaines d’électrothérapie. Il stimule les nerfs et les muscles en appliquant un courant de basse tension à des points d’acupuncture spécifiques, offrant des bénéfices thérapeutiques pour la récupération fonctionnelle après une douleur chronique et des lésions du systèmenerveux 13,14,15. De nombreuses études ont démontré que l’EA peut favoriser la récupération fonctionnelle neurologique après une LME et atténuer des complications telles que la douleur neuropathique, la vessie neurogène et la spasticité 16,17,18,19. Selon la théorie de la MTC, le vaisseau gouverneur est connecté au cerveau et à la moelle épinière, influençant leursfonctions 20. Nous avons constaté que l’EA appliquée aux points d’acupuncture Dazhui (GV14) et Mingmen (GV4) du vaisseau gouverneur peut soulager la neuroinflammation et inhiber la formation de cicatrices gliales, facilitant ainsi la récupération des fonctions motrices après une LM21. De plus, nos recherches ont établi que l’AA aux points d’acupuncture Baihui (GV20) et Yintang (GV29) sur le vaisseau gouverneur peut améliorer les capacités cognitives chez les souris modèlesAD 22,23. Néanmoins, le potentiel de l’EA pour traiter le trouble cognitif après une LME reste insuffisamment exploré.

Dans cette étude, nous décrivons les méthodes opérationnelles de l’EA pour traiter le trouble cognitif chez les rats LME, incluant la sélection des points d’acupuncture, l’angle de l’acupuncture, la durée du traitement et d’autres détails. De plus, nous avons utilisé les tests Y-maze et NOR, ainsi que des évaluations pathologiques, pour évaluer l’efficacité de l’EA dans le traitement du trouble cognitif. Cette étude vise à fournir une référence pour le traitement clinique de cette affection.

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Protocole

Toutes les procédures expérimentales ont été réalisées en stricte conformité avec les directives des National Institutes of Health pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire et ont été approuvées par le Comité d’éthique animale de l’Université de médecine chinoise de Pékin (ID d’approbation : BUCM-2024042505-2065).

1. Préparation animale

  1. Sélectionnez des rats mâles adultes de Sprague Dawley (SD) pesant 220,0 g ± 20,0 g pour l’expérience.
  2. Hébergez les animaux au Centre Expérimental des Animaux de l’Université de Médecine Chinoise de Pékin à une température contrôlée (24 ± 2 °C) et sous un cycle de 12 heures d’obscurité/lumière, avec de l’eau potable stérile et un régime standard à granulés disponible à libitum.
  3. Acclimatez tous les animaux à l’environnement pendant 7 jours avant l’expérimentation.
  4. Divisez aléatoirement 24 rats SD en trois groupes (n = 8 par groupe) : le groupe de simulation (Sham), le groupe modèle LM (Modèle) et le groupe électroacupuncture (EA). Le diagramme de l’axe temporel de la conception expérimentale est illustré à la Figure 1.

2. Établissement du modèle SCI

REMARQUE : Les rats ont été privés d’eau et de nourriture pendant 8 heures avant l’opération, et les instruments chirurgicaux ont été stérilisés à l’aide de vapeur à haute température. Le modèle SCI a été construit en utilisant une modification de la méthode24 d’Allen.

  1. Placez le rat dans la boîte d’induction d’anesthésie et induisez-le avec de l’oxygène contenant 4 % d’isoflurane (1 L/min) jusqu’à ce qu’il soit complètement anesthésié.
  2. Retirez le rat de la boîte d’induction et placez son nez et sa bouche près du masque d’anesthésie. Ajustez la concentration d’isoflurane à 1,5 % à 2 % pour maintenir l’anesthésie.
    REMARQUE : Pendant le processus d’anesthésie chez le rat, il est impératif de surveiller de près l’état du rat. Si le rat présente une respiration superficielle et rapide ou une baisse de température corporelle, réduisez la concentration d’isoflurane pour éviter une suranesthésie.
  3. Rase les poils du dos du rat pour exposer complètement la zone chirurgicale. Stériliser la zone opératoire avec de l’iodophore et de l’alcool.
  4. Localiser la dixième vertèbre thoracique (T10). Créez une incision longitudinale médiane de 2,5 cm centrée sur T10.
  5. Utilisez des lames chirurgicales pour séparer les muscles du dos, exposant ainsi le processus épineux et les muscles adjacents aux vertèbres thoraciques. Retirez le processus épineux et la lame de T10 avec une pince hémostatique, exposant environ 10 mm de la moelle épinière.
  6. Impactez la dure-mère exposée (200 kilodyne) avec précision à l’aide d’un dispositif d’Allen modifié pour induire une contusion modérée.
    REMARQUE : Le succès du modèle LM se caractérise par une congestion et un œdème de la dure-mère au site de la blessure ainsi que par le spasme de la queue. Pour le groupe Sham, les rats ont subi la même intervention chirurgicale, y compris l’ablation de la lame vertébrale, mais la moelle épinière n’a pas été endommagée.
  7. Couvrez la dure-mère avec une éponge gélatineuse et suturez la plaie couche par couche.
  8. Placez le rat sur une bouillotte à température constante réglée à 37 °C et surveillez-le jusqu’à ce qu’il reprenne connaissance.
  9. Administrez une injection de pénicilline sodique dans le muscle du rat une fois par jour pendant trois jours après l’opération afin de prévenir l’infection. De plus, faites un massage de la vessie sur le rat 2 à 3 fois par jour pour faciliter la miction.

3. Traitement de l’EA

  1. Effectuer une intervention EA 24 heures après avoir établi avec succès le modèle SCI.
  2. Préparez des aiguilles d’acupuncture stériles jetables (diamètre : 0,30 mm ; longueur : 25 mm).
  3. Selon la théorie de la MTC et l’expérience clinique, il faut sélectionner les points d’acuacumesure Baihui (GV20), Dazhui (GV14) et Mingmen (GV4) pour le traitement de l’EA.
  4. Préparez des bas de soie noire. Guidez le rat pour percer dans les bas noirs. Attachez et fixez le rat sur une planche avec un liaison.
    REMARQUE : La corde doit être serrée modérément pour éviter l’asphyxie du rat à cause d’un lien trop serré ou de fuite due à un lien trop lâche.
  5. Localisez le point d’acupuncture GV20 au centre de l’os pariétal, à l’intersection de la ligne médiane du front et du point médian de la ligne reliant les deux bouts d’oreilles. Localiser GV14 entre la septième vertèbre cervicale (C7) et la première vertèbre thoracique (T1), sur la ligne médiane du dos. Localiser GV4 dans la dépression sous le processus épineux de la deuxième vertèbre lombaire (L2), sur la ligne médiane du dos (Figure 2).
  6. Désinfectez les points d’acudrogne avec de l’iodophore médical et de l’alcool médical à 75 %.
  7. Insérez les aiguilles obliquement vers le bas à un angle de 15° à une profondeur de 2 à 3 mm au niveau du GV20. Insérez les aiguilles dans les pointes GV14 et GV4 à un angle de 45°, avec une profondeur de 5 à 7 mm (Figure 3A).
  8. Relier les aiguilles à l’appareil thérapeutique EA à une fréquence de 2 Hz et une intensité de 1 mA. Sélectionnez la forme d’onde comme une onde continue (Figure 3B, C).
    REMARQUE : Cette intervention d’EA a été réalisée quotidiennement pendant 28 jours, chaque séance durant 20 minutes. Les rats des groupes Sham et Model n’ont reçu aucun traitement, mais ils ont été immobilisés pendant 20 minutes chaque jour, de la même manière que ceux du groupe EA.

4. Évaluation de la fonction motrice (Figure 4)

REMARQUE : Les1er,7e, 14e, 21e et28e jours suivant l’opération, la fonction motrice des rats de chaque groupe a été évaluée selon le score de Basso, Beattie et Bresnahan (BBB).

  1. Placez le rat dans un endroit ouvert et calme pour permettre une libre circulation.
  2. Observez les mouvements des membres postérieurs du rat et notez-les selon l’échelleétablie de 25.
    REMARQUE : Deux chercheurs, qui ignoraient le regroupement des rats, ont attribué indépendamment des scores, et le score final pour chaque rat a été calculé comme la moyenne de leurs évaluations.

5. Réalisation de l’expérience du labyrinthe en Y (Figure 5)

REMARQUE : Le premier jour après l’intervention EA (le29e jour de l’expérience), l’expérience du labyrinthe en Y a été réalisée, comprenant un test d’alternance spontanée et un nouveau test d’exploration du bras. La procédure expérimentale du labyrinthe en Y est illustrée à la Figure 5A.

  1. Placez les cages expérimentales dans l’environnement expérimental avant le test et acclimatez-vous pendant 30 minutes.
  2. Nettoyez le dispositif du labyrinthe en Y avec de l’alcool, puis placez aléatoirement les trois bras du labyrinthe en Y comme bras de départ, le bras roman et l’autre bras.
  3. Pendant la phase d’alternance spontanée, couvrez le nouveau bras avec un déflecteur.
  4. Placez doucement le rat à l’extrémité du bras de départ et laissez-le explorer librement dans les deux bras pendant 10 minutes. Notez les temps, la distance et le temps de résidence du rat entrant dans le bras de départ et l’autre bras.
  5. Retirez tous les excréments dans la chambre après que chaque rat ait terminé le test. Nettoyez l’intérieur de la chambre avec de l’alcool médical à 75 % et séchez avec une gaze propre pour éviter les interférences causées par les odeurs laissées par les sujets précédents. Gardez l’environnement intérieur calme tout au long de l’expérience.
  6. Retirez le déflecteur et effectuez la nouvelle expérience d’exploration du bras 4 heures après l’expérience d’alternance spontanée.
  7. Placez doucement le rat à l’extrémité du bras de départ et laissez-le explorer librement dans les trois bras pendant 5 minutes.
  8. Notez la séquence, le nombre d’entrées, la distance et le temps de résidence du rat entrant dans chaque bras dans les 5 minutes.

6. Réalisation de la nouvelle expérience de reconnaissance d’objets (NOR) (Figure 6)

REMARQUE : Le deuxième jour après l’intervention de l’EA (le30e jour de l’expérience), l’expérience NOR a été réalisée. La procédure expérimentale du NOR est illustrée à la Figure 6A.

  1. Préparez un montage expérimental composé d’une boîte mesurant 70 cm × 60 cm × 30 cm, des objets cubiques bleus et des objets cylindriques rouges.
  2. Introduisez le rat dans la boîte expérimentale et laissez-le explorer librement les environs pendant 10 minutes.
  3. Après que l’expérience ci-dessus soit terminée pendant 1 heure, placez deux objets cubiques identiques symétriquement dans deux coins de la boîte expérimentale, placés à environ 10 cm des murs.
  4. Introduisez le rat dans la boîte expérimentale avec la tête orientée à l’opposé du bloc objet. Laissez le rat explorer librement son environnement pendant 10 minutes pour se familiariser avec le bloc d’objets.
  5. Après la fin de chaque essai de rat, essuyez soigneusement la boîte expérimentale avec de l’alcool afin de minimiser l’impact des odeurs résiduelles sur le comportement des rats suivants. Une fois la boîte sèche, placez le rat suivant à l’intérieur.
  6. Après que l’expérience ci-dessus soit terminée pendant 4 heures, remplacez le bloc objet droit par un objet cylindrique.
  7. Réintroduisez le rat dans la boîte expérimentale avec la tête tournée dos au mur du bloc d’objets. Laissez le rat explorer librement pendant 5 minutes dans la boîte.
  8. Notez le temps passé à explorer les objets cylindriques et cubiques ainsi que la distance totale et le temps. Calculez l’indice de préférence à l’aide de la formule : (Temps d’exploration des nouveaux objets - Temps d’exploration des anciens objets)/(Temps d’exploration des nouveaux objets + Temps d’exploration des anciens objets) × 100 %.

7. Réalisation du test de préférence de saccharose

REMARQUE : Les logements en cage simple sont utilisés pour empêcher la compétition sociale pour l’eau, ce qui pourrait perturber le comportement de consommation.

  1. Préparez une bouteille avec une solution de saccharose à 1 % et une autre avec de l’eau du robinet.
  2. Placez la solution sucrée et les bouteilles d’eau du robinet dans la cage, en veillant à échanger leurs positions toutes les 12 heures.
  3. Laissez le rat s’adapter à l’eau sucrée et à l’eau du robinet pendant 48 heures. Ensuite, privez le rat d’eau potable pendant 24 heures sans jeûner.
  4. Réintroduisez une bouteille d’eau sucrée et une bouteille d’eau du robinet dans la cage. Changez la position des bouteilles après 2 heures, et notez la consommation de chaque liquide sur une période de 4 heures. Calculez le pourcentage de préférence en saccharose en utilisant la formule suivante : (apport en solution de saccharose/(apport en solution de saccharose + apport en eau) × 100 %.

8. Coloration HE de l’hippocampe

  1. Après le test comportemental, anesthésiez le rat avec 3 % de phénobarbital sodique (2,0 mL/kg). Effectuer une perfusion cardiaque à l’aide de paraformaldéhyde. Prenez le tissu cérébral et plongez-le dans la paraffine. Préparez des tranches d’une épaisseur de 5 μm.
    ATTENTION : Le paraformaldéhyde est un irritant et doit être manipulé dans un environnement bien ventilé.
  2. Déparaffinez les tranches avec du xylène (I) et du xylène (II) pendant 10 minutes successivement. Faites tremper les tranches dans de l’alcool de gradient pour les déshydrater, chaque dégradé durant 3 minutes. Enfin, immergez les tranches dans de l’eau distillée pendant 2 minutes.
  3. Colorez les tranches avec une solution d’hématoxyline pendant 10 minutes. Rincez l’excès de solution à l’eau pendant 1 à 3 minutes. Immergez rapidement les lames dans de l’éthanol à l’acide muriatique pendant 5 à 10 secondes. Rincez à nouveau le toboggan à l’eau.
  4. Transférez les tranches dans une solution aqueuse alcaline faible pour le retour bleu. Rincez les tranches à l’eau pendant 1 à 3 minutes. Immergez les tranches dans de l’éthanol à 85 % pendant 3 à 5 minutes.
  5. Teintez les tranches avec une solution d’éosine pendant 3 à 5 minutes, déshydratez-les avec de l’alcool dégradé après le lavage. Placez les tranches dans du xylène pendant 5 à 10 minutes. Enfin, utilisez de la résine neutre pour sceller les tranches.
  6. Examinez les lames colorées au microscope optique à un grossissement de 400×.

9. Analyse ELISA

  1. Après le test comportemental, euthanasiez le rat par injection intrapéritonéale de pentobarbital sodium (200 mg/kg). Prélève les tissus de l’hippocampe.
  2. Peser le tissu de l’hippocampe et le transférer dans un tube d’homogénéisation pré-refroidi.
  3. Homogénéisez les tissus sur la glace à l’aide d’un homogénéiseur tissulaire.
  4. Centrifugez l’homogénéation à 5000 × g pendant 10 minutes à 4 °C. Collectez le surnageant et déterminez la concentration totale de protéines.
  5. Déterminez la concentration d’IL-1β et IL-6 dans l’hippocampe à l’aide de kits ELISA.

10. Analyse statistique

  1. Utilisez un logiciel d’analyse statistique approprié pour l’analyse statistique. Exprimez les données en moyenne ± écart-type.
  2. Effectuer une analyse bidirectionnelle de la variance (ANOVA) avec des mesures répétées et un test de moindre différence significative (LSD) pour disséquer les différences entre groupes dans les données de score BBB.
  3. Effectuer une ANOVA unidirectionnelle avec la méthode LSD pour comparer la variabilité entre groupes dans d’autres essais lorsque les données étaient normalement réparties ou présentaient une variance homogène. Sinon, effectuez le test non paramétrique.
  4. Si les données correspondent à une distribution normale, effectuer une analyse de corrélation de Pearson. Sinon, effectuez une analyse de corrélation de Spearman.
  5. Considérons des différences statistiquement significatives lorsque P < 0,05.

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Résultats

L’AC améliore la fonction motrice des rats LM
Le1er jour suivant l’opération SCI, les scores BBB du groupe modèle étaient enregistrés à 0, indiquant la réussite de l’établissement du modèle SCI. Durant les1er,7e, 14, 21e et28e jours après l’opération, les scores BBB du groupe modèle étaient significativement inférieurs à ceux du groupe Sham (P < 0,01). Notamment, aux7e,14e...

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Discussion

La LME est un événement stressant qui inflige un traumatisme sévère à la physiologie et à la psychologie des patients, conduisant non seulement à des troubles moteurs et sensoriels, mais aussi à un troublecognitif 3. Selon4 rapports, le risque de déclin cognitif après une LME est 13 fois plus élevé que chez les individus en bonne santé. Les patients d’âge moyen et âgés atteints de LME présentent une plus grande susceptibilité à la DA par ra...

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Déclarations de divulgation

Tous les auteurs n’ont déclaré aucun conflit d’intérêts potentiel.

Remerciements

Cette recherche a été soutenue par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (n° 82374593, 82305381), le Fonds de construction hospitalière de haut niveau de Shenzhen (n° 24275G1001), ainsi que par le projet soutenu du Plan médical et scientifique et technologique de Changshu (n° CSWSQ202302), et le Projet de recherche indépendant des étudiants de troisième cycle à l’Université de médecine chinoise de Pékin (n° ZJKT2025016).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,9 % de solution salineBeijing suolaibao technology Co., Ltd.IN9000, P1022-10
4 % de paraformoldéhydeBeyotimeP0099
75 % d’alcool médical, iodophoreBeijing oubei biologie science et technologie Co., LtdOB40126-1, HX0098AUtilisé pour la désinfection
Aiguilles d’acupunctureZhongyan Taihe Co., LtdZY500
Machine anesthésique pour petits animauxShanghai Yuyan Instruments Co., LtdABM
Système d’analyse du comportement animalBeijing zhong Shi di Chuang technology Co., LtdZS-XWT-II
Machine centrifugeEppendorf, Allemagne5811FR080384
Dispositif d’électroacupunctureUsine d’Instruments Médicaux de Shantou Co., Ltd6805-DUsed  ; pour le traitement par électroacupuncture
Kits ELISAJianglai Biology Science and Technology Co., LtdJL18365, JL20896Utilisé pour détecter les niveaux d’IL-1, IL-6
Éponge à gélatineJiangxi Xiang’en Medical Technology Development Co., Ltd24092901
Solution d’hématoxyline, solution d’éosineSigma-Aldrich03971Utilisé pour la coloration en HE
Impacteur à l’Horizon InfiniLexington, KY, États-UnisIH-0400Utilisé pour construire un modèle de lésion de la moelle épinière
IsofluraneShenzhen Ruiwode Life Science and Technology Co., LtdR510-22-10
MicroscopeOLYMPE
Pénicilline sodiqueCoolaberCP8271-5g
Phénobarbital sodiumSigma-AldrichP3761
Rats SDSibeifu (Pékin) Biology Technology Co., LtdSCXK2019-0010
SPSSIBMVersion 26.0Logiciels statistiques
SaccharoseBeijing Solarbio Technology Co., LtdS8271
XylèneShanghai Aladdin Biochemical Technology Co., LtdX112050

Références

  1. Kirshblum, S., Snider, B., Eren, F., Guest, J. Characterizing natural recovery after traumatic spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (9), 1267-1284 (2021).
  2. Lim, S. W., et al. Anxiety and depression in patients with traumatic spinal cord injury:a nationwide population-based cohort study. PLoS One. 12 (1), e0169623(2017).
  3. Calderone, A., et al. Cognitive, behavioral and psychiatric symptoms in patients with spinal cord injury:a scoping review. Front Psychiatry. 15, 1369714(2024).
  4. Craig, A., Guest, R., Tran, Y., Middleton, J. Cognitive impairment and mood states after spinal cord injury. J Neurotrauma. 34 (6), 1156-1163 (2017).
  5. Yeh, T. S., Ho, Y. C., Hsu, C. L., Pan, S. L. Spinal cord injury and Alzheimer's disease risk:a population-based, retrospective cohort study. Spinal Cord. 56 (2), 151-157 (2018).
  6. Mahmoudi, E., et al. Traumatic spinal cord injury and risk of early and late onset Alzheimer's disease and related dementia:large longitudinal study. Arch Phys Med Rehabil. 102 (6), 1147-1154 (2021).
  7. Sachdeva, R., Gao, F., Chan, C. C. H., Krassioukov, A. V. Cognitive function after spinal cord injury:a systematic review. Neurology. 91 (13), 611-621 (2018).
  8. Chen, X., et al. The gray matter atrophy and related network changes occur in the higher cognitive region rather than the primary sensorimotor cortex after spinal cord injury. PeerJ. 11, e16172(2023).
  9. Li, Y., et al. Delayed microglial depletion after spinal cord injury reduces chronic inflammation and neurodegeneration in the brain and improves neurological recovery in male mice. Theranostics. 10 (25), 11376-11403 (2020).
  10. Wu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress and disrupted neurogenesis in the brain are associated with cognitive impairment and depressive-like behavior after spinal cord injury. J Neurotrauma. 33 (21), 1919-1935 (2016).
  11. Sefiani, A., Geoffroy, C. G. The potential role of inflammation in modulating endogenous hippocampal neurogenesis after spinal cord injury. Front Neurosci. 15, 682259(2021).
  12. Wu, R., et al. Electroacupuncture stimulation to modulate neural oscillations in promoting neurological rehabilitation. Brain Res. 1822, 148642(2024).
  13. Xu, Y., et al. Electroacupuncture alleviates mechanical allodynia and anxiety-like behaviors induced by chronic neuropathic pain via regulating rostral anterior cingulate cortex-dorsal raphe nucleus neural circuit. CNS Neurosci Ther. 29 (12), 4043-4058 (2023).
  14. Hu, R., et al. Electroacupuncture promotes the repair of the damaged spinal cord in mice by mediating neurocan-perineuronal net. CNS Neurosci Ther. 30 (1), e14468(2024).
  15. Chen, M., et al. Electroacupuncture alleviates sciatic nerve injury and inhibits autophagy in rats. Acupunct Med. 42 (5), 268-274 (2024).
  16. Chen, Y., et al. Electroacupuncture inhibits NLRP3 activation by regulating CMPK2 after spinal cord injury. Front Immunol. 13, 788556(2022).
  17. Cheng, J., et al. Electroacupuncture modulates the intestinal microecology to improve intestinal motility in spinal cord injury rats. Microb Biotechnol. 15 (3), 862-873 (2022).
  18. Zhang, T., Yu, J., Huang, Z., Wang, G., Zhang, R. Electroacupuncture improves neurogenic bladder dysfunction through activation of NGF/TrkA signaling in a rat model. J Cell Biochem. 120 (6), 9900-9905 (2019).
  19. Liu, Q., et al. The protein kinase A signaling pathway mediates the effect of electroacupuncture on excessive contraction of the bladder detrusor in a rat model of neurogenic bladder. Acupunct Med. 42 (1), 32-38 (2024).
  20. Xu, Y., et al. Effectiveness of acupuncture in the governor vessel and yangming meridian for the treatment of acute ischemic stroke:a systematic review and network meta-analysis. PLoS One. 19 (4), (2024).
  21. Hu, Y., et al. Effects of electroacupuncture on glial scar generation in SCI model rats. Anat Rec (Hoboken). 306 (12), 3156-3168 (2023).
  22. Ding, N., Hao, X., Zhang, Y., Zhang, Y., Li, Z. Benign regulation of short-chain fatty acids:the underlying mechanism of the beneficial effects of manual acupuncture on cognitive ability and the intestinal mucosal barrier in APP/PS1 mice. Front Neurosci. 19, 1509581(2025).
  23. Wang, Z. D., et al. Electroacupuncture efficacy evaluation on blood-brain barrier and cerebral blood flow function in SAMP8 mice. Pak Vet J. 45 (1), 149-161 (2025).
  24. Koozekanani, S. H., Vise, W. M., Hashemi, R. M., McGhee, R. B. Possible mechanisms for observed pathophysiological variability in experimental spinal cord injury by the method of Allen. J Neurosurg. 44 (4), 429-434 (1976).
  25. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  26. Bai, J., et al. The impact of electroacupuncture on anxiety-like behavior and gut microbiome in a mouse model of chronic restraint stress. Front Behav Neurosci. 17, 1292835(2023).
  27. Man, S. C., et al. A pilot controlled trial of a combination of dense cranial electroacupuncture stimulation and body acupuncture for post-stroke depression. BMC Complement Altern Med. 14, 255(2014).
  28. Zhang, Y., et al. Manual acupuncture benignly regulates blood-brain barrier disruption and reduces lipopolysaccharide loading and systemic inflammation, possibly by adjusting the gut microbiota. Front Aging Neurosci. 14, 1018371(2022).
  29. Wang, X., et al. Electroacupuncture in promoting neural repair after spinal cord injury:inhibiting the Notch signaling pathway and regulating downstream proteins expression. Anat Rec (Hoboken). 304 (11), 2494-2505 (2021).
  30. Wang, W. W., Xie, C. L., Lu, L., Zheng, G. Q. A systematic review and meta-analysis of Baihui (GV20)-based scalp acupuncture in experimental ischemic stroke. Sci Rep. 4, 3981(2014).
  31. Lu, X. Y., et al. Impact of acupuncture on ischemia/reperfusion injury:unraveling the role of miR-34c-5p and autophagy activation. Brain Res Bull. 215, 111031(2024).
  32. Song, Y., Chen, Y., Li, J., Sun, W., Jin, F. Manual acupuncture enhanced therapeutic efficacy in vascular dementia rat model:systematic review and network meta-analysis. Syst Rev. 14 (1), 80(2025).
  33. Ding, N., Jiang, J., Xu, A., Tang, Y., Li, Z. Manual acupuncture regulates behavior and cerebral blood flow in the SAMP8 mouse model of Alzheimer's disease. Front Neurosci. 13, 37(2019).
  34. Ai, Q., et al. Electroacupuncture inhibits oxidative stress and improves cognitive function by downregulating the Ang II/AT1R/NOX axis in chronic cerebral ischemia rats. Neurosci Lett. 851, 138179(2025).
  35. Wang, X., et al. Electroacupuncture at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) protects against spinal cord injury:the role of the Wnt/β-catenin signaling pathway. Neural Regen Res. 11 (12), 2004-2011 (2016).
  36. Li, K., et al. Effect of electroacupuncture treatment at Dazhui (GV14) and Mingmen (GV4) modulates the PI3K/Akt/mTOR signaling pathway in rats after spinal cord injury. Neural Plast. 2020, 5474608(2020).
  37. Ahuja, C. S., Martin, A. R., Fehlings, M. Recent advances in managing a spinal cord injury secondary to trauma. F1000Res. 5, F1000 Faculty Rev-1017(2016).
  38. Jure, I., De Nicola, A. F., Encinas, J. M., Labombarda, F. Spinal cord injury leads to hippocampal glial alterations and neural stem cell inactivation. Cell Mol Neurobiol. 42 (1), 197-215 (2022).
  39. Bromley-Brits, K., Deng, Y., Song, W. Morris water maze test for learning and memory deficits in Alzheimer's disease model mice. J Vis Exp. (53), e2920(2011).
  40. Kraeuter, A. K., Guest, P. C., Sarnyai, Z. The Y-maze for assessment of spatial working and reference memory in mice. Methods Mol Biol. 1916, 105-111 (1916).
  41. Leger, M., et al. Object recognition test in mice. Nat Protoc. 8 (12), 2531-2537 (2013).
  42. Li, C., et al. Regulation of NRF2/GPX4 signaling pathway by hyperbaric oxygen protects against depressive behavior and cognitive impairment in a spinal cord injury rat model. CNS Neurosci Ther. 31 (5), e70421(2025).

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