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Article de méthode

Le test d’hémostase de Nimègue : mesure simultanée fluorogénique de la génération de thrombine et de plasmine dans un seul puits

496 vues

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DOI :

10.3791/69701

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27 février 2026

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit le test d’hémostase de Nimègue, qui permet une mesure simultanée et temporelle de la génération de thrombine et de plasmine afin d’assurer une évaluation intégrée de la coagulation et de la fibrinolyse. Le test vise à améliorer la caractérisation de l’équilibre hémostatique dans les milieux de recherche et cliniques, au-delà du cadre des tests hémostatiques conventionnels.

Résumé

La thrombine et la plasmine jouent toutes deux un rôle central dans l’hémostasie, régulant respectivement la coagulation et la fibrinolyse. Les tests hémostatiques conventionnels se concentrent souvent sur des composants isolés ou des phases limitées d’hémostasie ; Par exemple, le temps de thromboplastine partielle activée et le temps de prothrombine évaluent uniquement l’initiation de la formation de fibrine, tandis que les tests d’activité factorielle évaluent la fonction des facteurs de coagulation individuels. Bien que précieux, ces tests manquent d’une vue globale du processus global d’hémostasie secondaire et de fibrinolyse, qui se déroulent dynamiquement dans le temps. Le test d’hémostase de Nimègue (NHA) répond à cette limitation en permettant une mesure simultanée et temporelle de la génération de thrombine et de plasmine dans un seul puits de microplaque. En utilisant deux substrats fluorogéniques synthétiques avec des spectres d’excitation et d’émission distincts et sans réactivité croisée, le test permet une quantification précise des deux enzymes en parallèle. L’hémostasie est initiée dans un plasma pauvre en plaquettes à l’aide d’un facteur tissulaire, d’un calcium et d’un activateur de plasminogène de type tissulaire, et la fluorescence est enregistrée tous les 30 s sur 70 minutes à 37 °C. Les courbes d’activité enzymatique sont générées à l’aide d’étalonnages, à partir desquelles des paramètres tels que le temps de latence, le potentiel de thrombine, le temps de lyse de la fibrine et la hauteur du pic de plasmine sont dérivés. Le test capture de manière fiable la génération simultanée de thrombine et de plasmine avec une bonne précision intra- et inter-dossages, et détecte la modulation de la coagulation et de la fibrinolyse par des effecteurs tels que l’héparine, la protéine C activée et l’acide epsilon-aminocaproïque. Dans des échantillons cliniques, une diminution significative de la génération de thrombine a été observée chez les patients présentant des déficiences en facteurs de coagulation, tandis que les patients atteints de troubles fibrinolytiques présentaient des profils de génération de plasmine élevés. En combinant les mesures de génération de thrombine et de plasmine, la NHA offre une vision complète de l’équilibre hémostatique, au-delà des tests conventionnels. Cette approche intégrée est prometteuse pour la recherche et les applications cliniques, telles que la caractérisation des phénotypes hémostatiques, l’évaluation du risque de saignement et de thrombotique, ainsi que le suivi des interventions thérapeutiques ciblées. Ce protocole décrit la procédure NHA visant à améliorer la compréhension et l’évaluation de l’équilibre hémostatique.

Introduction

L’hémostasie résulte d’un équilibre dynamique entre la coagulation et la fibrinolyse. La thrombine et la plasmine sont les enzymes clés qui alimentent ces processus : la thrombine convertit le fibrinogène en fibrine, tandis que la plasmine dégrade la fibrine pour dissoudre les caillots. La perturbation de cet équilibre peut entraîner des saignements ou des événementsthrombotiques 1,2. Cependant, les tests de laboratoire utilisés pour évaluer l’hémostasie en pratique clinique se concentrent généralement sur des étapes isolées de coagulation ou de fibrinolyse, fournissant une co....

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Protocole

Toutes les procédures impliquant des échantillons de plasma humain ont été réalisées conformément aux directives institutionnelles et approuvées par le comité d’éthique médicale d’Arnhem-Nimègue. Un consentement éclairé écrit a été obtenu de tous les donneurs avant la collecte de l’échantillon.

1. Préparation de tampons, de réactifs et d’échantillons de plasma

  1. Préparer des solutions tampons
    1. Pèser 1,2 g de Tris (p.a.) et dissoudre dans 180 mL de 0,9 % de NaCl.
    2. Ajuste le pH à 7,4 avec HCl.
    3. Amenez le volume final à 200 mL avec 0,9 % de NaCl pour obte....

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Résultats

Les courbes de génération représentatives de thrombine et de plasmine obtenues avec le test d’hémostase de Nimègue (NHA) sont illustrées à la Figure 3. L’intensité du signal de chaque courbe est exprimée en pourcentage par rapport à l’échantillon de plasma normal regroupé (NPP) mesuré simultanément. Un échantillon avec NPP est inclus à chaque exécution comme contrôle interne pour vérifier la validité du test et garantir la comparabilité entre les exécutions........

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Discussion

Le test d’hémostase de Nimègue (NHA) est un dosage fluorogénique à double enzyme qui permet la mesure simultanée et résolue dans le temps de la génération de thrombine et de plasmine dans un plasma pauvre en plaquettes. En capturant les deux processus dans un seul puits, la méthode facilite une analyse cinétique à haute résolution de l’hémostasie secondaire et de la fibrinolyse. Cette double lecture offre des avantages méthodologiques distincts par rapport aux tests conventionnels et a é.......

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Déclarations de divulgation

W.L. van Heerde est fondateur et employé d’Enzyre BV et copropriétaire de Van Heerde Holding BV, actionnaire d’Enzyre. Enzyre a reçu des financements pour des recherches sous contrat de la part de Takeda et Novo Nordisk. W.L. van Heerde a également reçu un soutien de subventions de voyage de la SOBI et du CAF-DCF. Les auteurs restants ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

Remerciements

Cette étude a été menée conformément aux objectifs d’EuroBloodNet.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Matériaux
Chloridédihydre de calcium (CaCl2.2H2O)Merck1.02382
Céphaline (kit de réactifs C.K. Prest 5 APTT)Stago00847Stable pendant 6 mois à -20 &°C.   ;
Eau distilléeNotez la date d’ouverture. À utiliser dans le délai d’un jour après la première ouverture.
Diméthylsulfoxyde (DMSO)Merck1.02950.0500
Alpha-thrombine humaineLaboratoires de recherche enzymatiqueHT 1002aLa boîte contient un dépliant avec un certificat d’analyse. Le volume de tampon à ajouter dépend de la concentration spécifiée et doit être ajusté de façon à ce que 1 & micro ; L de thrombine humaine ajoutée à 120 & micro ; Le réactif L donne une concentration finale de 76 nmol/L.
Plasmine humaineLaboratoires de recherche enzymatiqueHPlasLa boîte contient un dépliant avec un certificat d’analyse. Le volume de tampon à ajouter dépend de la concentration spécifiée et doit être ajusté de façon à ce que 1 & micro ; L de plasmine humaine ajoutée dans 120 & micro ; Le réactif L donne une concentration finale de 200 nmol/L.
Plasma normal en poolPréparation interneNon applicableStable pendant 3 heures après décongélation si on le garde sur la glace.
Plasma patientNon applicableNon applicable
Substrat plasmique (CBZ-L-phénylalanyl-L-amide d’arginine) - rhodamine-morpholino uréeSymeresStable pendant 6 mois à -80 °C.   ;
Facteur tissulaire humain recombinant (TF) : InnovinDade BehringB4212Stable pendant 6 mois à -80 °C.   ;
Activateur de plasminogène de type tissulaire recombinant (tPA) : Alteplase/ActilyseBoehringer IngelheimStable depuis 12 mois à -80 ° ;C.  ;
Tris(hydroxylméthyl)aminométhane (H2NC(CH2OH)3)Merck1.08382.2500
Tampon Tris-NaCl, pH 7,4 (TBS)Préparation interneNon applicable
Tampon Tris-NaCl-CaCl2, pH 7,4 (TBS-Ca)Préparation interneNon applicable
Substrat de thrombine Bz-bêta-Ala-Gly-Arg-7-amine-4-méthylcoumarineSymeresStable pendant 6 mois à -80 °C.   ;
Équipement
Fluorimètre / lecteur de microplaques Fluostar Optima avec contrôle de température et injecteurs à réactifsBMG Labtech
Plaque micro-titrée à 96 puits, polystyrène, fond plat, noir, surface de liaison moyenne (équivalent Microlon)Greiner BIO-ONE655076
Bilan analytique (bilan à charge supérieure)
Pointes de pipette bleues (pour 100-1000 & micro ; L)
Tubes de prélèvement sanguin de citrate 3 mL (3,2 % de citrate)BD Vacutainer
Seau à glace
Machine à glace
Incubateur / vibrateur à microplaques
Agitateur magnétique
Rack de tubes pour microcentrifugeuses
Tubes microcentrifuge, fermables
Compteur de pH
Pointes de pipette 0,1-10 & micro ; L, non stérile
Pipettes (2, 10, 20, 100 et 1000 & micro ; L)
Tournevis (utilisé comme sonde)
Mélangeur à lampes
Bain marie
Pointes de pipette jaunes (pour 20-200 & micro ; L)

Références

  1. Chapin, J. C., Hajjar, K. A. Fibrinolysis and the control of blood coagulation. Blood Rev. 29 (1), 17-24 (2015).
  2. Furie, B. Pathogenesis of thrombosis. Hematology. 2009 (1), 255-258 (2009).
  3. Teruya, J., et al.

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Réimpressions et autorisations

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