Lymphographie de fluorescence intraopératoire de routine utilisant de l’indocyanine Green lors d’une œsophagectomie : une étude de faisabilité

Résumé

Ce manuscrit décrit une lymphographie par fluorescence intraopératoire utilisant de l’indocyanine verte lors de l’œsophagectomie pour visualiser le canal thoracique (les colatéraux).

Résumé

Pour le cancer de l’œsophage résécable, les principaux centres oncologiques recommandent une œsophagectomie transthoracique avec une lymphadénectomie médiastinale en bloc incluant une résection du canal thoracique. Cependant, la résection du canal thoracique peut augmenter le risque de fuite du chyle postopératoire en raison de blessures au conduit principal, aux branches collatérales ou aux branches latérales. La lymphographie par fluorescence en temps réel et intraopératoire utilisant l’indocyanine green (ICG) s’est imposée comme une technique prometteuse pour améliorer la visualisation du canal thoracique, des branches latérales et des colatéraux lors de l’œsophagectomie. Cette étude vise à étudier la faisabilité d’une lymphographie par fluorescence de routine avec ICG lors d’une œsophagectomie pour le cancer, afin de visualiser avec précision le canal thoracique et ses collatéraux.

Pour la lymphographie par fluorescence, 2 mL de solution ICG (2,5 mg ICG/mL) sont administrés bilatéralement dans les ganglions lymphatiques inguinaux, avant la phase thoracique de l’œsophagectomie, ou dans la racine mésentérique de l’intestin grêle peu avant la fermeture abdominale. Une caméra proche infrarouge (NIR) est utilisée pour évaluer la lymphographie de fluorescence. Sous la visualisation par fluorescence, le canal thoracique est doublement cliqué distalement au niveau de l’arc de la veine azygos et coupé proximalement 4 à 5 cm au-dessus du niveau du diaphragme, puis tranché en bloc avec l’échantillon d’œsophagectomie. Un clipping ou une ligature de suture supplémentaire est réalisé en cas de fuite du chyle du conduit principal ou de tout canal collatéral ou branche latérale restante.

Une lymphographie par fluorescence a été réalisée chez 20 patients ayant subi une œsophagectomie pour un cancer de l’œsophage. Le canal thoracique a été visualisé avec succès chez 18 patients (90 %). Chez 67 % des patients dont la lymphographie par fluorescence a été réalisée avec succès, cela a conduit à un changement de prise en charge, par exemple la pose de clips supplémentaires. La lymphographie par fluorescence avec ICG aide à visualiser le canal thoracique et ses parties collatérales et à identifier les fuites du chyle pendant l’opération, ce qui entraîne souvent un changement dans la prise en charge opératoire. Un développement supplémentaire de l’étude est nécessaire pour affiner la technique et confirmer son application dans la prévention des fuites du chyle postopératoire.

Introduction

Le traitement curatif du cancer de l’œsophage résécable comprend généralement une chimiothérapie ou une chimioradiothérapie néoadjuvante, suivie d’une œsophagectomie¹. Une stratégie de traitement néoadjuvante fréquemment appliquée consiste en cinq cycles de carboplatine et de paclitaxel avec radiothérapie concomitante (41,4 Gy sur 23 fractions), suivis d’une œsophagectomie après un intervalle de 6 à 10 semaines. Une œsophagectomie transthoracique radicale dans notre centre comprend systématiquement une résection en bloc du canal thoracique pour une lymphadénectomie médiastinale adéquate, justifiée par la localisation anatomique du canal entre la veine azygos et l’aorte thoracique descendante, qui a été démontré abriter à la fois des ganglions lymphatiques ainsi que des métastases ganglionnaires ^2,3,4.

La fonction du canal thoracique inclut le transport de la lymphe des côtés gauche et droit du corps en dessous du diaphragme vers la circulation, via la jonction de la veine sous-clavière gauche et de la veine jugulaire interne, de la veine sous-clavière ou de la veine jugulaire^{interne 5,6}. L’une des fonctions du système lymphatique est de transporter le chyle (liquide lymphatique contenant des chylomicrons provenant du tractus gastro-intestinal, qui transporte des protéines, des globules blancs (principalement des lymphocytes), des vitamines liposolubles, du glucose et des produits digestifs) du tube digestif vers le système circulatoire.

Une grande variation entre les patients existe dans l’anatomie du canal thoracique. La fréquence des variantes physiologiques et la présence de plusieurs branches latérales et collatéraux rendent le canal sujet à des blessures involontaires lors de l’opération, pouvant entraîner une fuite du chyle^{postopératoire 7}. Le canal thoracique est généralement vulnérable aux traumatismes lors de l’œsophagectomie, et la résection du canal thoracique a historiquement été associée à un risque plus élevé de fuite^{chyliculaire postopératoire 8}. La fuite de chyle est une complication fréquente après une œsophagectomie, avec des incidences dans la littérature allant largement de 2 % à 21 %, en raison de l’utilisation de différentes définitions ainsi que de la grande variété des techniques chirurgicales et de l’étendue de la lymphadénectomie 9,10,11,12. La survenue de fuite du chyle est associée à des restrictions alimentaires désagréables, un drainage thoracique prolongé, des réinterventions et une hospitalisation^{prolongée 11,12}. Récemment, la fuite chyliculaire a également été associée à une survie globale diminuée, vraisemblablement en raison d’hyponatrémie, d’hyperprotéinémie, d’une nutrition altérée et d’une diminution de la fonction^{immunitaire 13}.

Pour garantir une sécurité oncologique maximale avec une lymphadénectomie médiastinale adéquate et prévenir les blessures involontaires entraînant une fuite du chyle postopératoire, une vigilance suffisante lors de la résection du canal thoracique et de ses branches collatérales est essentielle. La détection intraopératoire de fuite du chyle peut être difficile, car les patients subissant une œsophagectomie sont privés de nourriture, ce qui entraîne un faible débit chyliculaire et un diamètre plus petit du canal thoracique. Ainsi, la fuite chyliculare est généralement détectée au jour 2 ou 3 postopératoirement, lorsque l’alimentation entérale est intensifiée. L’indocyanine green (ICG) est un colorant non toxique qui se lie fortement aux protéines transportées à travers le système lymphatique et peut être rendu visible par la lumière proche infrarouge. Cela permet une amélioration en temps réel des conduits avec un contrôle de l’anatomie guidé par fluorescence et une détection intraopératoire de toute blessure, qui peut être prise en charge directement. Une meilleure reconnaissance intraopératoire du canal thoracique, des branches latérales et des colatéraux, ainsi que la détection d’une possible fuite du chyle par lymphographie de fluorescence intraopératoire en temps réel à l’aide de l’ICG, peuvent entraîner une réduction des taux de fuite du chyle^{postopératoire 14}.

L’identification des canaux thoraciques avec ICG s’est déjà avérée faisable, efficace et peu chronophage lors de réopérations pour fuite chyliculare après une chirurgie thoracoscopique des poumons et de l’œsophage, lors de la lymphadénectomie cervicale pour un cancer de la thyroïde ou mélanome, et lors d’une œsophagectomie mini-invasive sans résection systématique des canaux thoraciques pour un carcinome^{épidermoïde} 15,16,17,18 . On ne sait pas encore si son utilisation courante lors de l’œsophagectomie avec résection standard du canal thoracique est réussie. Ainsi, dans cette étude pilote, l’objectif principal est d’étudier la faisabilité d’une lymphographie de fluorescence intraopératoire de routine lors d’une œsophagectomie avec la résection de routine du canal thoracique afin de visualiser le canal thoracique, ses collatéraux et ses variations anatomiques. Deuxièmement, il sera étudié si cette visualisation entraîne un changement dans la prise en main de l’opératoire (par exemple, un clipping supplémentaire comme traitement ultérieur pour les fuites intraopératoires). L’objectif ultime est de réduire l’incidence des fuites chyliculaires postopératoires après une œsophagectomie et ses implications cliniques (drainage thoracique prolongé, hospitalisation prolongée, nécessité d’interventions supplémentaires, restrictions alimentaires et survie globale réduite).

Protocole

Tous les patients ont fourni un consentement écrit éclairé pour l’utilisation de leurs données cliniques, conformément au comité institutionnel d’éthique de la recherche médicale humaine. Le protocole est entièrement rédigé dans le contexte d’une œsophagectomie totalement mini-invasive. La séquence des étapes du protocole dépend de la procédure : Ivor Lewis (œsophagectomie en deux étapes ; phase abdominale d’abord, puis phase thoracique) versus œsophagectomie de McKeown (œsophagectomie en trois étapes ; phase thoracique d’abord, puis phase abdominale et phase cervicale). Principalement, le protocole est rédigé dans le contexte de l’œsophagectomie d’Ivor Lewis ; dans la NOTE suivante, l’étape 11, la séquence et les étapes supplémentaires pour l’œsophagectomie de McKeown sont décrites. Dans l’œsophagectomie d’Ivor Lewis, l’ICG est soit administrée à la fin de la phase abdominale à la base du mésentère de l’intestin grêle, soit guidée bilatéralement par échographie dans les ganglions lymphatiques inguinaux avant le début de la phase thoracique. Dans l’œsophagectomie de McKeown, l’ICG est administrée par une échographie guidée bilatéralement dans les ganglions lymphatiques inguinaux au début de l’opération.

1. Patients

1. Pour être éligible à cette étude, assurez-vous qu’un patient remplit tous les critères d’inclusion suivants : âge de 18 ans et plus ; subir une œsophagectomie totalement minimalement invasive ou assistée par robot, Ivor Lewis ou McKeown ; pour le carcinome résécable (cT1-4a, N0-3, M0) de l’œsophage ou du syndrome de la jonction gastro-œsophagienne.
2. Fixez les critères d’exclusion suivants : allergie à l’ICG, à l’iodure ou à l’iodure de sodium ; hyperthyroïdie ou tumeur bénigne de la thyroïde ; examen thyroïdien utilisant de l’iodure radioactif <1 semaine ; Antécédents antérieurs de lymphadénectomie inguinale.

2. Protocole d’anesthésie

1. Avant l’opération, placez le patient sous anesthésie générale et régionale à l’aide d’une péridurale thoracique (étapes 2.1.1-2.1.5) ou d’un cathéter paravertébral (étapes 2.1.6-2.1.10).
   1. Effectuer la pose d’un cathéter péridural au niveau intervertébral entre T5 et T8 en utilisant la technique de perte de résistance.
   2. Dans la première heure suivant l’induction, administrez 5 à 10 mL de bupivacaïne à 0,25 % de bolus péridural.
   3. Ensuite, commencez une analgésie épidurale continue avec bupivacaïne 0,125 % et sufentanil 0,5 μg/mL, puis ajustez selon le confort du patient.
   4. Fournir des médicaments d’évasion selon le protocole institutionnel local.
   5. Retirez la cathéter péridural au troisième jour postopératoire.
   6. Localiser l’espace paravertébral de chaque côté du canal rachidien et placer le cathéter dans l’espace sous-pleural droit au niveau de T4-5 sous vision thoracoscopique directe avec une aiguille Tuohy de 18-19 G.
   7. Administrez un bolus de 20 mL de bupivacaïne 0,125 % au début de la thoracoscopie.
   8. Poursuivre l’analgésie paravertébrale sous bupivacaïne 0,125 % 8-12 mL/h selon le poids, puis titrer selon le confort du patient.
   9. Fournir des analgésies intraveineuses contrôlées par le patient selon le protocole local du centre.
   10. Retirez le cathéter paravertébral le troisième jour postopératoire.
2. Intubez le patient avec un tube endobronchique à double lumen (Ivor Lewis) ou un tube à un seul lumen (Ivor Lewis), ou sans bloqueur bronchique (McKeown).

3. Protocole antibiotiques

1. Administrez des antibiotiques prophylactiques 1 h avant le début de l’opération (1 000 mg de céfazoline et 500 mg de métronidazole par voie intraveineuse ; répétez après 6 heures de chirurgie).

4. Phase abdominale de l’œsophagectomie

1. Positionnez le patient en position couchée. Désinfecter et exposer la stérile.
2. Insérez un trocar de 12 mm et une caméra en sur-umbilique.
3. Créer un pneumopéritoine avec une pression maximale de 10-12 mmHg de CO₂.
4. Insérez un trocar de 10 mm et deux de 5 mm ainsi qu’un écarteur naparoscopique du foie.
5. Ouvrez le ligament hépatogastrique. Mobiliser la jonction œsophagogastrique pendant la pause, y compris les stations ganglionnaires paracardiques gauche et droite.
6. Effectuer une lymphadénectomie via le ligament hépatogastrique, le long du ligament hépatoduodénal, de l’artère hépatique commune, de l’artère splénique, de l’artère gastrique gauche, et autour du tronc cœliaque, avec ligature de la veine coronaire et de l’artère gastrique gauche.
7. Mobiliser la courbure plus importante et préserver l’artère et la veine gastro-épiploïques droites.
8. Ligater l’artère et la veine gastro-épiploïques gauches et transecter les artères gastriques courtes. On squelettise la courbure moindre au niveau de l’angulus et on préservera l’artère gastrique droite.
9. Créer un conduit gastrique en agrafant longitudinalement de l’angulus vers le fundus, pour créer un tube gastrique de 3 à 4 cm de large. Recoudez les lignes d’agrafes avec des sutures tressées absorbables et interrompues.
10. Créer une jéjunostomie alimentaire de 20 cm distale à Treitz. Fixez la jéjunostomie à la paroi abdominale avec une suture en poche à l’aide de sutures tressées absorbables 3-0 et à la peau avec des sutures tressées non absorbables. Posez deux points d’antrérotation.
11. Testez la sonde gastrique pour détecter aucune fuite et une bonne perpétuité.
    REMARQUE : Dans le cas d’une œsophagectomie d’Ivor Lewis avec administration de racines mésentériques, le protocole se poursuit avec les sections 5 et 6 ; La section 7 est sautée. En cas d’œsophagectomie d’Ivor Lewis avec administration de ganglion lymphatique inguinal ICG, la section 5 est sautée et le protocole est poursuivi avec les sections 6 et 7.

5. Administration de la racine mésentérique de l’ICG

1. Dissoudre 25 mg d’ICG dans 10 mL d’eau stérile, en obtenant une solution de 2,5 mg d’ICG par mL.
2. Injectez 2 mL (5 mg) dans la racine mésentérique au niveau du site prévu de la jéjunostomie.

6. Fin de la phase abdominale

1. Retirez les trocars et le rétracteur hépatique sous visualisation directe.
2. Dans le cas de l’œsophagectomie d’Ivor Lewis, plaies fermées : fascia avec tresses 0 compressibles et peau avec sutures monofilament synthétiques absorbables intracutanées 4-0.

7. Administration inguinale de l’ICG

1. Dissoudre 25 mg d’ICG dans 10 mL d’eau stérile, en obtenant une solution de 2,5 mg d’ICG/mL. Divisez cela en deux seringues de 2 mL, obtenant deux seringues de 2 mL contenant chacune 5 mg d’ICG.
2. Utilisez l’échographie comme guide pour localiser un ganglion lymphatique inguinal superficiel de façon bilatérale. Administrez un bolus de 2 mL de solution ICG (2,5 mg ICG/mL, 5 mg au total) par voie percutanée dans un ganglion lymphatique inguinal droit et un ganglion superficiel inguinal gauche sous guidage par échographie.

8. Phase thoracique de l’œsophagectomie

1. Tournez le patient en position couchée. Désinfecter et exposer la stérile.
2. Introduction ouverte au niveau de la ligne axillaire postérieure, c’est-à-dire à l’extrémité de l’omoplate, avec un trocar de 12 mm et une caméra. Créer un pneumothorax du côté droit avec une pression maximale de_CO2 de 6 à 8 mmHg.
3. Insérer deux trocars de 12 mm et un trocar de 5 mm le long de l’omoplate et un autre plus distalement (espace intercostal 8 ou 9).
4. Disséquez le ligament pulmonaire droit. Exposez le péricarde, de la veine pulmonaire droite à la veine pulmonaire gauche.
5. Disséque la pause. Réaliser une dissection des ganglions lymphatiques sous-carinaux.
6. Isoler et ligater l’arc de la veine azygos à l’aide d’une agrafeuse vasculaire.
7. Effectuer une dissection des ganglions lymphatiques paratrachéaux inférieurs sur les côtés gauche et droit ainsi que pendant la fenêtre aortopulmonaire.

9. Résection du conduit thoracique

1. Utilisez la caméra proche infrarouge (NIR) pour évaluer la lymphographie de fluorescence. Évaluer l’amélioration fluorescente du canal thoracique à travers la plèvre.
2. Ouvrez la plèvre médiastinale le long de la veine azygos. Isoler le canal thoracique circonférentiellement distalement, au niveau de l’arche de la veine azygo.
3. Sous la visualisation de fluorescence, doublez le canal thoracique au niveau de l’arc de la veine azygos (Ivor Lewis) ou au niveau de l’entrée thoracique (McKeown) avec deux clips métalliques. Transectez le canal thoracique entre les clips.
4. Lors de la visualisation par fluorescence, disséquez le canal thoracique en bloc avec l’échantillon d’œsophagectomie, depuis le tissu entre la veine azygos et l’aorte thoracique descendante vers proximal, jusqu’à plusieurs centimètres au-dessus du niveau du diaphragme.
5. Lors de la visualisation de fluorescence, découpez le canal thoracique à 4-5 cm au-dessus du niveau du diaphragme avec une pince métallique. Transectez le canal thoracique entre les clips.
   REMARQUE : Le canal thoracique est maintenant disséqué en bloc avec l’échantillon d’œsophagectomie, et l’aorte descendante est complètement exposée.
6. 10 et 30 minutes après la résection des conduits thoraciques, inspectez la zone d’exploitation pour détecter une fuite de chyle. Si une fuite de chyle est identifiée, coupez également les conduits ou les vases colatéraux qui fuient.

10. Anastomose

1. Tirez la sonde gastrique vers la poitrine.
2. Transectez l’œsophage au niveau de l’arc de la veine azygo. Luxez l’échantillon dans la plaie.
3. Disséquez complètement l’échantillon du conduit gastrique avec l’agrafeuse linéaire.
4. Insérez l’enclume (25 ou 29 mm) dans le moignon œsophagien à l’aide d’une suture à cordon à main. Mesurez la longueur du conduit gastrique.
5. Insérez l’agrafeuse dans le conduit gastrique et perforez la paroi du conduit gastrique avec la pointe de l’agrafeuse. Alignez les pièces de l’agrafeuse et refermez l’agrafeuse. Faites allumer l’agrafeuse et vérifiez les beignets. Fermez le conduit gastrique avec l’agrafeuse linéaire.
6. Marquez le spécimen. Apportez le spécimen au pathologiste.
7. Soudre les croisements de l’agrafeuse avec une suture tressée réabsorbable interrompue 3-0.
8. Fixez la pointe du conduit gastrique sous le lambeau pleural. Réalisez une omentoplastie.

11. Fin de la thoracoscopie

1. À la fin de la thoracoscopie, placez un seul drain thoracique en silicone 27 French dans la cavité pleurale droite pour le drainage du_CO2 restant et un tube Jackson-Pratt pour le drainage du liquide postopératoire.
2. Retirez les trocars sous visualisation directe.
3. Plaies fermées : fascia avec tresses 0 et peau avec sutures 4-0 synthétiques absorbables intracutanées.
   REMARQUE : Dans le cas d’une œsophagectomie de McKeown, après la section 3, le protocole se poursuit avec les sections 7, 8 et 9. Pendant la phase thoracique, une lymphadénectomie supplémentaire des stations ganglionnaires paratrachéales supérieures est réalisée. Par la suite, le protocole est poursuivi avec les sections 11, 4 et 6. Après la phase abdominale, le protocole est poursuivi avec la section 12, qui ne s’applique qu’à l’œsophagectomie de McKeown, l’incision cervicale pour l’anastomose. Les sections 5 et 10 du protocole Ivor Lewis ne s’appliquent pas à l’œsophagectomie de McKeown.

12. Incision cervicale pour anastomose (dans le cas d’œsophagectomie de McKeown)

1. Effectuer une incision cervicale gauche. Mobiliser l’œsophage cervical en tenant compte de l’emplacement des nerfs laryngés récurrents des deux côtés.
2. Divisez l’œsophage. Faites une petite laparotomie. Insérez un protège-plaie. Luxez l’échantillon dans la plaie.
3. Disséquez complètement l’échantillon du conduit gastrique avec l’agrafeuse linéaire. Marquez le spécimen. Apportez le spécimen au pathologiste.
4. Suturez les croisements de la ligne d’agrafes avec des sutures PDS 3-0 interrompues.
5. Amenez le conduit gastrique vers la région cervicale de façon prévertèbre. Créer une anastomose à l’aide de trois agrafeuses (technique de chou collard modifiée). Placez une sonde nasogastrique dans le conduit gastrique.
6. Plaies cervicales fermées : platysma musculaire avec tresses 3-0 compressibles et peau avec des sutures 4-0 monofilament synthétiques absorbables intracutanées.
7. Créer une jéjunostomie alimentaire de 20 cm distale à Treitz. Fixez la jéjunostomie à la paroi abdominale avec une suture en poche à l’aide de sutures tressées 3-0 absorbables et à la peau avec des sutures tressées non résorbables.
8. Posez deux points d’antrérotation.
9. Testez la sonde gastrique pour détecter aucune fuite et une bonne perpétuité.
10. Plaies abdominales fermées : fascia avec tresses 0 compressibles et peau avec sutures monofilament 4-0 synthétiques intracutanées et absorbables.

13. Soins postopératoires et surveillance

1. Détube le patient dans la salle d’opération.
2. Après l’opération, transportez le patient à l’USAC (unité post-anesthésie) pour une nuit de surveillance.
3. Au PACU, réalisez une radiographie thoracique pour vérifier la présence d’un pneumothorax. Maintenez le drain thoracique sur une aspiration à -10_{cmH 2O}jusqu’après la radiographie. S’il n’y a pas de fuite d’air ou pas de pneumothorax, placez le drain thoracique sur un verrou_H2O.
4. Retirez le drain thoracique dès le premier jour postopératoire s’il n’y a pas de fuite d’air ni de pneumothorax.
5. Retirez le drain JP sur le pavillon si la production a un aspect clair et est inférieure à 200 mL/24 h.

Résultats

Dans notre établissement, la lymphographie par fluorescence ICG est la norme de soins cliniques lors de l’œsophagectomie pour le cancer de l’œsophage, basée sur des preuves publiées et des pratiques établies dans des centres d’experts internationaux. De manière routinière, tous les patients subissent une œsophagectomie avec lymphographie par fluorescence intraopératoire et une résection des canaux thoraciques selon ce protocole. Au moment de la rédaction, une lymphographie par fluorescen...

Discussion

Étapes critiques du protocole ainsi que modifications et dépannage de la technique

L’une des étapes les plus cruciales du protocole inclut l’injection réussie d’ICG. Chez les 10 premiers patients, le canal thoracique n’a pas été visualisé chez 20 %. À la suite de discussions avec des chirurgiens expérimentés lors de conférences internationales et à la lumière de la littérature disponible, l’administration de l’ICG par injection mésentérique a ...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Spécifique pour la lymphographie de fluorescence ICG
Échographie Arietta V70	Hitachi		Appareil à ultrasons avec sonde linéaire & nbsp ;
Console de chirurgien da Vinci	Chirurgie intuitive	SS999	Utilisé pour contrôler le robot chirurgical
Carrette de vision da Vinci	Chirurgie intuitive	VS999	Le chariot à vision abrite des technologies avancées de vision et d’énergie et assure la communication entre les composants du système da Vinci
da Vinci Xi	Chirurgie intuitive	K131861	Le robot chirurgical : « chariot patient »
Endoscope da Vinci Xi avec caméra, 8 mm, 30 et degrés ;   ;	Chirurgie intuitive	470027	La caméra du robot de Vinci
Système de caméra à fluorescence (Stryker PINPOINT, plateforme 1688 AIM 4K, optiques à 30 degrés avec drapé de caméra vidéo ou Spy-PHI avec drapé	Stryker
Fringue Freka Connect ENFit/ProNeo 60 mL	Freka  ;   ;	3044683	Pour administrer une crème entérale
Gros clips à heurlet			Supprimer le canal thoracique
Poudre de colorant vert Indocyanine 25 mg flacon & nbsp ;	Vert diagnostique	PICG0025NL	Poudre verte d’indocyanine
Aiguilles lombaires Spinocan 20G x 3 1/2" 0,9 x 88 mm (2x)	BBraun	4509900-01	Pour perforer les ganglions inguinaux
Clips métalliques		ER320	Supprimer le canal thoracique
Nutridrink compact 50 ml  ;	Nutricia	62173	Crème entérale pour stimuler le flux chylique
Aiguille Pajunk SonoPlex 22G x 50 mm (2x)	Pajunk	001185-74	Pour percer les ganglions inguinaux & nbsp ;
Aiguille rouge à tirer			Pour créer une solution ICG
Eau stérile pour injection 10 mL	Fresenius Kabi		Pour dissoudre la poudre ICG
Seringue 10 mL	BD	300912	Pour créer une solution ICG
Seringues 3 mL (2x)	BD	309658	Administrer la solution ICG
Fournit l’œsophagectomie en général  ;
1000 mg de céfazoline & nbsp ;
Gazes stériles 10 x 10
Aiguille Ruohy 18-19 Gauche
1x Ethibond 2/0 (corriger la jéjunostomie)
1x PDS 2/0 SH (fascia) & nbsp ;
1x Vicryl 0 MH (fascia)
1x Vicryl 0 UR-6 (fascia)
1x Vicryl 0 UR-6 (fascia)
1x vicryl 3/0 SH (jéjunostomie)  ;
1x vicryl 3/0 SH (subcutis) & nbsp ;
1x vicryl 3/0 SH-1 14 cm  ;   ;
1x V-loc 23 cm (anastomose)
2x Monocryl 4/0 (skin)
2x Monocryl 4-0 (skin)
2x Vicryl 2/0 SH (fixation 27 drain)
Trocar 3 x 5 mm
500 mg de métronidazole   ;
5 trocars de 12 mm
Crochet endométrique bleu
Bupivacaïne 0,125 %
Bupivacaïne 0,25 %
Caméra
Drain Ch27
Écraser Hechtingen Ethibond 0 EN-3
Diathermie
Laparoscopie jetable scissors  ;
Tube endobronchial à double lumière
Œil d’endométriose optique HD
Endoloop  ;
Endostitch & nbsp ;
Cathéter péridural
Système de gastroscopie
Tour de gastroscopie
Cathéter d’alimentation pour jéjunostomie
Mini-rétracteur hépatique laparoscopique
Ligaclip 10 mm
Embout émoussé en ligasure
Matelas à microperles
Cathéter paravertébral
Agrafeuse circulaire motorisée 25 et 29 mm
Agrafeuse motorisée Echelon Flex 60 mm
Recharge 60mm Echeon Blanc/Bleu/Vert
Système d’aspiration et d’évacuation de la fumée
Sufentanil 0,5 mcg/mL
Aiguille de Verrès
Videotower