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Toutes les données utilisées dans cette étude ont été obtenues à partir de bases de données accessibles au public (TCGA, GEO et METABRIC). Aucun participant humain ni animal n’a été impliqué ; par conséquent, l’approbation du comité d’examen institutionnel et le consentement éclairé n’étaient pas requis.
Acquisition et prétraitement des données
Les données d’expression génique liées à la résistance au tamoxifène ont été extraites de la base de données Gene Expression Omnibus (GEO) 10. Le jeu de données GSE67916 (Affymetrix Human Genome U133 Plus 2.0 Array) comprend 18 échantillons de cellules de cancer du sein : 8 échantillons témoins non traités et 10 échantillons résistants au tamoxifène générés par une exposition prolongée aux médicaments. Les données de séquençage de l’ARN et les informations de suivi clinique correspondantes pour la cohorte du carcinome invasif du sein (TCGA-BRCA) ont été téléchargées depuis The Cancer Genome Atlas (TCGA)11.
Les fichiers CEL bruts de microarray étaient traités dans R (version 4.4.2) à l’aide du package affy. La correction et la normalisation de fond étaient réalisées avec l’algorithme Robust Multi-array Average (RMA), incluant la transformation log2 et la normalisation quantile. Les identifiants de sonde étaient mappés à des symboles de gènes à l’aide de fichiers d’annotation de plateforme ; pour les gènes à multiples sondes, la valeur moyenne d’expression a été utilisée. Pour les données ARN-seq de TCGA, les valeurs de transcripts par million (TPM) ont été transformées log2 [log2(TPM + 1)]. Les échantillons avec des informations de survie incomplètes ou des variables cliniques manquantes ont été exclus.
Identification des gènes exprimés différemment
L’expression différentielle entre les échantillons résistants au tamoxifène et témoins a été évaluée à l’aide du paquet LimmaR 12 avec modération bayesique empirique. Gènes avec |log2 changement de plie| > 1 et une valeur P ajustée < 0,05 (Benjamini–Hochberg FDR) ont été définis comme des gènes différenciellement exprimés (DEG).
Analyse de l’enrichissement fonctionnel
Les analyses Gene Ontology (GO)13et Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)14 ont été réalisées à l’aide du packageclusterProfiler 15 R. Les catégories GO comprenaient le processus biologique (BP), la composante cellulaire (CC) et la fonction moléculaire (MF). Les valeurs de P ajustées < 0,05 ont été considérées comme significatives.
Sélection de fonctionnalités basée sur l’apprentissage automatique
Trois algorithmes d’apprentissage automatique ont été appliqués pour identifier les gènes hub : (1) régressionLASSO 16 (package glmnet) avec validation croisée 10 fois pour sélectionner le paramètre de pénalité optimal (lambda.min) ; (2) Supporter l’élimination des caractéristiques vectorielles machine–récursive (SVM-RFE)17 (package e1071) avec une validation croisée à cinq reprises pour identifier le sous-ensemble génétique minimal avec la plus faible erreur de classification ; (3) Random forest (RF)18 (package randomForest) avec 500 arbres (ntree = 500) ; les gènes étaient classés par MeanDecreaseGini. Les gènes identifiés par les trois méthodes ont été définis comme des gènes hub.
Construction du modèle de risque pronostique
Un modèle de risque pronostique multigénique a été construit à partir des données d’expression et de survie du gène TCGA-BRCA. Les gènes associés à la survie ont été dépistés par régression de Cox univariée, suivie d’une régression de Cox multivariée pour développer la signature finale. La formule du score de risque a été calculée ainsi : score de risque = (0,01297 × CAMK1D) + (0,03021 × CHAC1) + (0,02018 × KIAA0513) + (0,00647 × MED13) + (0,00108 × NDRG1) + (0,04551 × STXBP5). Les patients ont été stratifiés en groupes à haut et faible risque selon le score médian de risque.
Évaluation et validation du modèle pronostique
Les différences globales de survie entre les groupes ont été évaluées par l’analyse de Kaplan–Meier et le test log-rank. La performance prédictive a été évaluée à l’aide de courbes ROC (package pROC) et d’analyse ROC dépendante du temps (package timeROC). Un nomogramme intégrant les scores de risque et les variables cliniques a été construit à l’aide du package RMS. Les courbes d’étalonnage ont évalué l’accord entre les probabilités de survie prédite et observée. La validation externe a été réalisée dans la cohorte19 du Consortium international indépendant de la taxonomie moléculaire du cancer du sein (METABRIC) en utilisant la même formule et le même seuil.
Analyse de l’infiltration immunitaire
L’infiltration des cellules immunitaires a été estimée à l’aide de CIBERSORT20 avec 1 000 permutations basées sur les données TCGA. Des échantillons avec P < 0,05 ont été inclus. Les différences dans la composition des cellules immunitaires entre les groupes à haut et faible risque ont été évaluées avec le test de la somme de rangs de Wilcoxon, et les corrélations entre l’expression des gènes hub et l’abondance des cellules immunitaires ont été évaluées à l’aide de la corrélation de rang de Spearman.
Analyse statistique
Toutes les analyses ont été réalisées en R. Les variables continues ont été comparées à l’aide du test de somme de rang de Wilcoxon, et les variables catégorielles à l’aide du test du chi-carré. Un P bilatéral < 0,05 a été considéré comme statistiquement significatif.