5.13: Recommandations pour la chirurgie des rongeurs

1. planification préopératoire

bien que les lignes directrices n’exigent pas que les rongeurs chirurgies être exécutée dans un établissement chirurgical dédié, la superficie utilisée doit être désinfectée avec une surface dure appropriée désinfectant, qui doit être utilisé selon le fabricant ' s énumérés les concentrations et les temps de contact. La région devrait aussi être exempts de tout encombrement et ne pas être dans la ligne directe de l’alimentation et d’échappement conduits, comme les projets pourraient contribuer à l’hypothermie de l’animal. Accès à la salle devrait être limitée lorsque les interventions chirurgicales sont effectuées. Une zone de préparation chirurgicale (notamment pour l’enlèvement de l’animal ' cheveux s) et pour récupération post-opératoire et soins, devrait également être désignée et à proximité, sinon dans la salle de chirurgie. En général, si les interventions chirurgicales sont effectuées régulièrement dans un domaine spécifique, la zone ne devrait pas servir pour d’autres activités.

préparations préopératoires devraient comprendre un examen physique du patient chirurgical pour identifier toute affections sous-jacentes qui peuvent interférer avec la chirurgie. Puisque les rongeurs ont un taux métabolique élevé, et les réserves de graisse très limitée, ils ne devraient pas être jeun avant la chirurgie. L’animal ' l’état d’hydratation s devrait être évaluée par un test d’élasticité de la peau. La peau au-dessus des épaules est légèrement levée. Chez un animal normalement hydraté, la peau rapidement reviendra en place, alors que chez des animaux déshydraté, la peau pas immédiatement revenir à sa position normale. Dans l’ensemble apparence, tels que la posture et l’état de la couche de poils, convient également de noter. Un animal qui affiche une posture voûtée, ou a un pelage hirsute, peut être héberger une maladie. L’examen doit être effectué juste avant l’administration de l’anesthésie, et toute condition anormale doit être notée sur l’animal ' graphique s. ² Enfin, considérations relatives à l’anatomie et la physiologie du rat ou de souris doivent se faire lorsque les préparer à la chirurgie.

2. plateforme

les deux espèces ont une surface importante au rapport de volume de corps ce qui les rend sensibles à l’hypothermie lors d’interventions chirurgicales, surtout quand la chirurgie expose la cavité du corps. Efforts pour éviter l’hypothermie incluent l’utilisation d’une plateforme chirurgicale chauffée.

la plate-forme utilisée pour la chirurgie de rongeur, qui n’est généralement construite d’acier inoxydable ou en plastique dur, doit être recouverte d’un matériau isolant ou une source de chauffage d’appoint pour empêcher l’animal ' chaleur corporelle s de s’échapper pendant la mode opératoire. Chauffage d’appoint sources inclure l’eau en circulation chauffage tampons, forcés chauffe-air couvertures, lampes chauffantes ou une couche de mousse couvrant la plate-forme chirurgicale. Plates-formes chirurgicales avec construit dans la source de chaleur sont disponibles dans le commerce. Toutes les plates-formes doivent être d’un matériau qui est facilement désinfectée et insensible à l’humidité.

autres méthodes pour prévenir l’hypothermie comprennent l’utilisation d’isolateurs massives, placement isolants entre l’animal et la plate-forme chirurgicale et à l’aide d’une source de chaleur externe. ³ isolateurs de masse piéger air dans une matrice de fibre, produisant " encore air " qui entoure l’animal. Couvertures de l’eau chaude en circulation peut être utilisé sous le patient. Cet équipement est disponible dans diverses tailles de rongeurs d’équin et permet de soutien thermique précis avec thermostats intégrés.

chimiquement activés sources de chauffage peut être à usage unique ou réutilisables. Un type se compose d’une poche en plastique remplie avec une solution chimique et une rondelle de métal, qui, une fois pressé crée une réaction exothermique. Cela provoque le liquide à solidifier et à libérer la chaleur. En règle générale, ils ont une quantité limitée de la chaleur et conviennent uniquement pour les procédures rapides. Autres sources de chauffage chimique sont disponibles sous forme de solides à température ambiante, mais lorsqu’il est chauffé, ils deviennent liquides. Qu’un animal est placé sur le pad, le liquide libère chaleur et le contenu du tampon se solidifie qu’ils refroidissent. Ceux-ci peuvent libérer la chaleur sur une période beaucoup plus longue. Comme un avantage, ils ne doit pas dépasser la température d’activation (~ 39° C), éliminant ainsi la nécessité d’un thermostat de.

packs d’eau sont disponibles en bouteilles d’eau chaude consistant en un sac de caoutchouc ou de silicone avec un bouchon. Les packs sont remplis avec de l’eau chaude puis émet de la chaleur sur la surface extérieure. Le pack perdront graduellement la chaleur que l’eau se refroidit. Une version plus moderne se compose d’une matière plastique feuille avec tissu perméable à l’eau ont adhéré au sommet. L’espace entre les deux est rempli d’une poudre hydrophile qui absorbe l’eau et gonfle. Il peut être utilisé soit une source de chaleur ou comme une source de refroidissement. Selon la qualité des matériaux, il ou peut être recyclé et réchauffé au micro-ondes trempée dans l’eau chaude.

précautions doivent être prises lorsque vous utilisez une source de chaleur externe. Température corporelle doit être surveillée avec une sonde rectale ou avec un thermomètre placé à côté de l’animal sur la source de chaleur. Toutes les sources de chaleur externes doivent être vérifiées pour les défauts avant utilisation.

3. Épilation des poils

du site chirurgical doit être préparé pour minimiser la contamination de l’incision. Les cheveux doivent être étroitement coupé ou supprimé avec une crème dépilatoire chimique, qui dissout le poil dans le follicule. ^{2, 3} bien que le détourage de cheveux parfois peut être effectué que sur un animal conscient avec retenue manuelle, l’application de la crème dépilatoire ne doit se faire sur un animal anesthésié pour prévenir l’ingestion du produit, des lésions oculaires et enlèvement des poils excessifs. Rasage avec un rasoir est une option, s’il n’y a pas d’alternative. Cette méthode requiert des compétences techniques, le temps supplémentaire et patience afin d’éviter des lacérations à la peau. Le champ opératoire doit être suffisamment grand pour permettre d’incision et de suture sans inclusion de la fourrure dans la plaie opératoire, mais aussi petit que possible de manière à éviter l’aggravation de l’hypothermie.

1. 1. De tonte cheveux peut être coupé à l’aide de tondeuses électriques sur secteur ou à piles, de préférence avec une lame chirurgicale de l’A40. La largeur de la lame doit être considérée. Une norme 2 " lame peut être utilisée pour les rats, alors qu’un ½-1 " des lames est plus approprié pour les souris.
   2. Les cheveux est découpé dans le sens inverse de la croissance. Tendez la peau pour stabiliser, comme les rongeurs ont une fixation lâche de la peau vers le muscle sous-jacent.
   3. Il faut éviter les entailles ou couper la peau. L’extrémité plate de la lame est placée sur la peau lorsque tondre le cheveux. La lame ne doit jamais être utilisée avec les dents perpendiculaires à la peau.

figure 1. La position correcte d’une tondeuse à cheveux pendant le rasage.

2. les crèmes dépilatoires chimiques ou des lotions
   1. appliquer le produit sur la zone opératoire.
   2. Bout de 10 minutes, la peau doit être complètement rincernettoyé de toute trace de l’épilation pour éviter les brûlures irritations ou de produit chimique sur la peau et de d.

4. Chirurgien

solutions de chirurgien à utiliser doivent : 1) sensiblement réduire les microbes présents sur la peau et contiennent une préparation antimicrobienne non irritant ; 2) possède un large spectre des propriétés antimicrobiennes ; 3) être à action rapide ; et 4) ont une activité persistante, cumulatif.

les deux solutions de gommage nettoyant couramment utilisés sont les chlorhexidines et les iodophores. Solutions de chlorhexidine sont efficaces contre les bactéries et les virus, même en présence de matière organique. En revanche, les iodophores ont un large éventail d’action microbicide, mais leur efficacité est réduite en présence de matières organiques ; l’activité résiduelle est inférieure à celle de la chlorhexidines.

rinçages utilisés entre les gommages sont soit de l’eau stérile ou de l’alcool. Les solutions à base d’alcool contenant 60-95 % d’alcool ont grandes actions antimicrobiens au travers de la dénaturation des protéines. ² Toutefois, l’alcool peut être un irritant de la peau forte. Eau stérile est efficace dans la zone de rinçage, et pourtant il n’a pas toutes les propriétés antimicrobiennes.

1. Utiliser un tampon de gaze humide pour enlever les débris brut, y compris les poils et squames.
Solution de nettoyage antiseptique
2. imbibée sur un tampon de gaze est appliquée sur la peau à partir du site d’incision. Désinfection devrait commencer le long de la ligne d’incision et s’étendent vers l’extérieur dans un motif circulaire.
3. L’antiseptique rincer est ensuite appliqué en commençant à l’emplacement de l’incision. La peau est essuyée dans un motif circulaire en spirale vers la périphérie du champ chirurgical pour enlever la solution de nettoyage de la ligne d’incision.
4. Cela est répété trois fois.
5. Après un rinçage final, une compresse de gaze stérile est placée au-dessus du champ opératoire. Cette gaze peut être mouillée avec l’alcool ou d’iode. La gaze disparaît une fois que l’animal est transporté et mis en position sur une plateforme chirurgicale ou de la table/banc chirurgicale.

des zones du corps où les méthodes de lavage chirurgicales standards ne servent pas incluent les yeux, la bouche et la région anale. Parce que la surface de le œil serait endommagée si gommage solutions ont été utilisées, un chirurgien se fait uniquement sur les paupières après inculquer une pommade protectrice dans le œil. Dans certaines situations, une solution saline physiologique équilibrée est utilisée pour rincer l’oeil pour enlever les débris et de diluer des bactéries à un niveau acceptable pour une chirurgie de se produire. La bouche aussi s’avère difficile à nettoyer suffisamment pour la chirurgie. Il peut être rincé avec une solution saline physiologique équilibrée pour diluer toutes les bactéries ; Toutefois, il est important d’éviter d’utiliser trop saline, qui pourrait causer l’aspiration du liquide. Gencives, dents et la langue peuvent être essuyées avec un non toxique antiseptiques. Cependant, l’application de solutions pour les muqueuses peut entraîner une absorption systémique. Interventions chirurgicales dans la région anale, telles que la réduction chirurgicale du prolapsus rectales, ne sont pas considérés comme des chirurgies propres. L’utilisation de certaines solutions antiseptiques peut augmenter les lésions tissulaires et prévenir ou prolonger la guérison. L’utilisation d’une solution saline physiologique équilibrée pour laver la zone propre de débris est la méthode préférée de préparation chirurgicale. ^{2, 4}

5. Positionnement

positionnement du Patient pour les procédures abdominales implique la sécurisation des membres de l’enclin animal sur la plate-forme avec un ruban ou une ligature. Lorsque vous utilisez une ligature pour étendre les branches, il faut pour empêcher la circulation vers les pieds étant compromise, afin d’éviter une tension excessive sur les branches et un étirement extrême des membres susceptibles de perturber les articulations et d’éviter l’obstacle de la respiration. Les liens devraient être un dégagement rapide avec seulement une boucle demi-clef sur la branche. Certaines plates-formes disponibles dans le commerce viennent avec rétraction limb intégré qui se compose des crochets ou des boucles de fil d’acier inoxydable ou chaîne de boule, qui peut être ajustée selon la taille de l’animal. Si le ruban est utilisé, il faut se conformer aux surfaces sèches.

6. drapage

une fois que l’animal est préparée et placé sur la plate-forme chirurgicale, draps chirurgicaux sont utilisés pour prévenir la contamination du matériel de suture et de maintenir un champ stérile sur le site chirurgical. Draperies peuvent être un matériel de tissu réutilisables, un matériel de papier jetable ou un matériau adhésif en plastique jetable.

rideaux papier jetables ont une matrice de fibres tissées pour la force qui permet de couper dans toutes les formes et dimensions, y compris une fenestration de coupe ou d’ouverture dans le drapé, sans déchirure ni l’effilochage des bords coupés. Ils sont également l’humidité répulsifs. Les draps jetables peuvent être achetés préemballés et préstérilisé dans une variété de tailles et formes. Tissu rideaux n’est pas conçus pour être coupé par le chirurgien pour créer une fenestration. Ils sont achetés avec une fenestration précoupés et lié le bord. Tissu rideaux nécessite blanchiment d’argent et de stérilisation. Lorsque pris en charge bien, rideaux de tissu peut durer pendant des années, ce qui les rend un investissement économique.

tous les deux en papier et tissu rideaux est maintenus en place avec des pinces de serviette à travers la peau de l’animal si c’est un rongeur plus gros, comme un rat adulte. Pour petits rongeurs, le drapé n’est pas apposé sur la peau, ce qui nécessite une vigilance et des soins de la part du chirurgien de ne pas déloger ou décaler le drap une fois qu’il a été positionné sur l’animal.

adhésifs tentures sont soit transparent ou opaque. Les rideaux clairs sont préférables pour les chirurgies de rongeurs, car ils permettent la visualisation directe de l’animal. Des rideaux en plastique sont une combinaison de plastique et papier, avec la zone plastique étant directement au-dessus de l’animal et la zone de document définissant le champ stérile étendues. La portion du drapé qui soit directement sur le site de l’incision chirurgicale est conçue pour adhérer à la zone de l’incision. Le chirurgien peut ensuite couper directement à travers le plastique lors de l’incision cutanée. Pellicule plastique stérilisé a été accepté comme un matériau rentable et utile pour les chirurgies de rongeurs. Il faut éviter une constriction du mouvement pour la respiration lorsque l’écharpe est placé autour du patient. L’écharpe conserver la chaleur corporelle, permettra la visualisation du patient et fournissent une barrière d’humidité entre le champ stérile et l’animal. Il peut également servir à faciliter le positionnement et la tenue de l’animal pour la chirurgie au lieu de fixation limb.

rideaux de n’importe quel type devrait être soigneusement plié pour éviter le contact avec les zones non stériles, l’équipement et du personnel ; ils ne devraient jamais se sont déroulés en secouant ou en agitant.

1. Rideaux papier : dans le drapé de méthode unique, le drapé est déplié pour permettre la découpe de la fenestration si on n’est pas prédécoupé.
   1. Le chirurgien placera le drapé sur l’animal en gardant les mains sur le côté de la draperie qui ne touchera pas le patient.
   2. Le drapé est ajusté afin que le champ opératoire est visible à travers la fenestration.
   3. Le drapé est maintenu en place avec des colliers de serviette à travers la peau de l’animal dans le cas de plus gros rats.
2. Papier ou en plastique avec une fenêtre adhésive
   1. un drapé avec un adhésif fenêtre nécessite peeling de la zone de papier à la région d’adhésif à coller sur le champ chirurgical.
   2. Lorsque le déplier le drap stérile, la zone adhésive est généralement la région sommitale et est facilement accessible au chirurgien.
   3. Une fois que l’adhésif est découvert, le drapé est soigneusement déplié et tourné afin que le côté collant fait face à l’animal.
   4. Il est impératif que le drap est monté correctement, car une fois que l’adhésif entre en contact avec l’animal il ne pourra pas être ajusté.
   5. Le chirurgien devrait genTLY Appuyez sur l’adhésif du champ opératoire pour créer un joint avec la peau.
3. Tissu rideaux
   1. fenêtrée tissu rideaux ne doivent ne pas être coupés, donc c’est le chirurgien ' responsabilité s pour sélectionner un drapé avec une ouverture suffisamment grande pour exposer correctement la zone chirurgicale, mais pas trop grand pour permettre l’exposition de le quelconque les surfaces du corps Unshaved et mal préparés.
   2. Le drapé est soigneusement déplié pour révéler la fenestration.
   3. Le chirurgien placera le drapé sur l’animal, garder les mains sur le côté de la draperie qui ne touchera pas le patient.
   4. Le drapé est ajusté afin que le champ opératoire est visible à travers la fenestration.

figure 2. Champ opératoire visible à travers la fenestration d’un drapé correctement placé.

4. adhésif rideaux : un matériau économique et utile pour rongeurs chirurgies. ⁵
   1. drapé doit être tiré à partir du rouleau de manière à s’assurer que la section utilisée demeure stérile.
   2. L’assistant chirurgical ouvre la boîte et tire une longueur d’écharpe dehors, en prenant soin d’éviter de toucher à la boîte ou toute autre surface.
   3. Le chirurgien saisit l’enveloppe de chaque côté, et l’assistant coupe la fin ils tiennent loin (environ 3-4 pouces).
   4. Après avoir jeté le bord coupé, l’assistant recoupe aussi la section du reste de la course au.
   5. Le chirurgien saisit un côté de l’écharpe et le place sur l’animal.
   6. Les propriétés de l’écharpe lui permettent de se conformer à toutes les surfaces.
   7. Le chirurgien appuie sur le film à l’animal et crée un champ stérile.
   8. Il n’y a pas besoin d’utiliser des pinces serviette ou s’inquiéter que le drapé se déplace.
   9. Il faut éviter la constriction du mouvement pour la respiration. L’écharpe conservera la chaleur du corps, permettre la visualisation du patient et fournissent une barrière d’humidité entre le champ stérile et l’animal.

7. Monitorage peropératoire

Anesthetized patients doivent être surveillés pour la température du corps, respiration et rythme cardiaque jusqu'à ce qu’ils sont entièrement recouvrés.

température corporelle peut être contrôlée directement ou indirectement. Pour une surveillance directe, une sonde rectale, spécialement conçu pour les rongeurs doit être utilisée. Petits animaux thermomètres rectaux, mercure ou numérique, sont trop gros pour une utilisation dans des souris et des rats sans endommager les tissus rectales et le sphincter anal. Dans les souches sensibles, leur usage pourrait précipiter un prolapsus rectal. Surveillance indirecte consiste à placer un thermomètre à côté de l’animal ou sous le corps sur une source de chaleur externe. Bien que cela ne donnera pas une température exacte, il peut indiquer l’efficacité de la source de chaleur et permettre des ajustements réduire ou augmenter la chaleur selon les besoins.

il est difficile d’ausculter la fréquence cardiaque et de compter les respirations sur petits rongeurs sans équipement spécialisé.

surveillance plupart est visuelle et n’affiche plus que la présence ou l’absence de poitrine ou de la respiration abdominale. Fréquences cardiaques sont évalués comme présent ou absent par palpation ou l’observation visuelle du mouvement fine de la paroi thoracique. Ce n'est pas possible pendant une intervention chirurgicale en raison de drapage et la petite taille de l’animal.

une surveillance supplémentaire est possible grâce à l’utilisation des électrocardiogrammes (ECG) et oxymètres. ECG ' s évaluer l’état cardiaque d’un rongeur pendant l’anesthésie et la chirurgie. L’oxymètre de pouls utilise réfraction de lumière rouge et infrarouge pour mesurer l’oxygène dans le sang artériel. Cette technologie a été adaptée pour une utilisation chez les rongeurs à l’aide de la queue ou une patte. Les deux types de non invasives mesures continues du patient ' s les signes vitaux sont facilement accessibles avec un minimum de perturbations du champ chirurgical.

8. surveillance postopératoire

un devez envisager d’utiliser un coussin chauffant sous le postopératoires de cage de récupération. En outre, l’analgésie préventive et postopératoire devrait bénéficier autant que possible. Dispositions de l’analgésie sont plus efficaces pour réduire l’intensité de la stimulation douloureuse lorsqu’il est administré avant l’événement douloureux. Avantages de l’utilisation préventive des analgésiques incluent la réduction de l’intensité de la stimulation douloureuse, amélioration de l’animal ' postopératoires niveau de confort s, la réduction du montant nécessaire pour maintenir un plan chirurgical, l’anesthésie et un récupération plus lisse de l’anesthésie, une fois la procédure terminée. Médicament préventif et postopératoires fréquemment utilisés est indiqués dans le tableau 1. ⁶

Table 1. Couramment utilisé des drogues préventives et postopératoires.

Les lignes directrices pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire exigent que la chirurgie de survie des rongeurs soit pratiquée de manière aseptique et humaine. Il s’agit de s’assurer qu’il y a un traumatisme minimal pour l’animal ; il n’y a pas d’infection due à l’intervention chirurgicale elle-même ; pour prévenir l’hypothermie ; et pour diminuer la douleur et l’inconfort induits par les étapes invasives.

Cette vidéo passera en revue les considérations générales relatives à la planification préchirurgicale, à la surveillance peropératoire et aux soins postopératoires. Suivra la démonstration de quelques types de chirurgies pratiquées aujourd’hui dans la recherche biomédicale.

Tout d’abord, passons en revue les étapes préparatoires qu’un scientifique doit effectuer avant toute chirurgie des rongeurs. La zone où la chirurgie serait pratiquée doit être dégagée et doit être désinfectée avec un désinfectant approprié pour surfaces dures. Notez que la zone ne doit pas être en ligne directe avec la ventilation, car les courants d’air pourraient contribuer à l’hypothermie du patient. Pour prévenir davantage l’hypothermie, la plate-forme chirurgicale doit être isolée avec une source de chaleur supplémentaire.

Les instruments chirurgicaux doivent être stérilisés à l’avance. Enveloppez-les dans des sachets autoclavables individuellement et placez-les dans une configuration en tente à l’intérieur de l’autoclave pour permettre une pénétration complète de la vapeur. Lorsque des chirurgies en série sont effectuées, stérilisez les instruments entre chaque animal avec un stérilisateur à billes pendant 10 à 15 secondes. Assurez-vous de refroidir l’instrument avant de l’utiliser sur l’animal suivant.

Plusieurs jours avant l’opération, observez l’animal pour évaluer son état corporel, son appétit, sa consommation d’eau et sa production d’urine et de matières fécales. De plus, notez la posture du corps et l’état du pelage. Un animal affichant une posture voûtée ou un pelage négligé peut être porteur d’une maladie et ne pas être un bon candidat pour la chirurgie.

Parce que les rongeurs ont un taux métabolique très élevé et des réserves de graisse très limitées, ils ne doivent pas être à jeun avant la chirurgie. Évaluez l’état d’hydratation de l’animal en effectuant le test d’élasticité de la peau. Pour ce faire, soulevez doucement la peau au-dessus des épaules. Chez un animal normalement hydraté, la peau se remettra rapidement en place, alors que chez un animal déshydraté, la peau ne reviendra pas immédiatement à sa position normale.

Après avoir aménagé la zone de chirurgie et vous être assuré que l’animal est en bonne santé, vous pouvez commencer à préparer l’animal à la procédure. La première étape est l’anesthésie. Afin de comprendre comment induire et maintenir l’anesthésie, reportez-vous à une autre vidéo de cette collection. Une fois que l’animal est sous sédation, retirez-le de la chambre et placez-le sur le coussin de rasage. Notez que le rasage doit être effectué dans une zone éloignée de la plate-forme chirurgicale pour éviter toute contamination. Appliquez une pommade oculaire lubrifiante pour prévenir le dessèchement des yeux, en particulier pour les chirurgies relativement longues.

Le rasage se fait généralement à l’aide d’une tondeuse électrique, de préférence avec une lame chirurgicale A40. Une lame standard de deux pouces peut être utilisée pour les rats, tandis qu’une lame d’un demi-pouce à un pouce est plus appropriée pour les souris. Pour éviter les entailles et les coupures, étirez d’abord la peau pour la stabiliser. Placez ensuite le plat de la lame sur la peau et déplacez-le dans le sens inverse de la croissance des poils. Le champ opératoire rasé doit être suffisamment grand pour permettre l’incision et la suture sans inclusion de fourrure dans la plaie chirurgicale, mais aussi petit que possible afin d’éviter l’exacerbation de l’hypothermie. Alternativement, les poils peuvent être enlevés à l’aide d’une crème dépilatoire, qui dissout les poils au niveau du follicule. Tout d’abord, appliquez le produit sur la zone du site chirurgical à l’aide d’un écouvillon. Après environ trois minutes, rincez et nettoyez la peau à l’eau stérile pour éliminer toute trace de crème afin d’éviter les irritations ou les brûlures chimiques.

Après l’épilation, utilisez une éponge de gaze humidifiée pour enlever tous les débris, y compris les poils et les squames. Ensuite, à l’aide d’un tampon de gaze pré-imbibé d’une solution antiseptique ou nettoyante, frottez la zone en commençant au site d’incision et en s’étendant vers l’extérieur en un motif circulaire. Ensuite, appliquez le liquide de rinçage selon le même motif circulaire - en spirale de la ligne d’incision à la périphérie du champ chirurgical. Répétez le cycle de nettoyage et de rinçage au moins trois fois. Après le rinçage final, placez un tampon de gaze stérile - imbibé d’alcool ou d’iode - sur le champ opératoire. La gaze restera en place pendant le transport de l’animal et sa position sur la plateforme chirurgicale.

L’étape suivante consiste à positionner l’animal. Pour les procédures dorsales, placez l’animal en position couchée. Fixez les membres sur la plate-forme à l’aide d’une ligature ou d’un ruban adhésif. Il faut veiller à ne pas compromettre la circulation des pieds, provoquer une tension excessive sur les membres, altérer les articulations en raison d’un étirement excessif ou entraver la respiration de l’animal. Une fois que l’animal est préparé et positionné sur la plate-forme chirurgicale, retirez la gaze recouvrant la zone d’incision et l’animal est maintenant prêt pour le drapage.

N’oubliez pas que le drapage est une technique aseptique, de sorte que le chirurgien doit porter des gants stériles, un bonnet bouffant, un masque chirurgical et une blouse de laboratoire propre ou une blouse chirurgicale stérile. Les rideaux peuvent être faits de tissu, qui est réutilisable, ou de papier jetable ou de matériau adhésif en plastique. Les rideaux de tout type ne doivent jamais être secoués ou agités pour se déplier. Ils doivent être ouverts avec précaution pour éviter tout contact avec des zones, des équipements et du personnel non stériles. Si le champ n’est pas prédécoupé, dépliez-le suffisamment pour pouvoir créer une ouverture à l’aide de ciseaux stériles qui seront assez grands pour exposer adéquatement la zone chirurgicale, mais pas trop grands pour permettre l’exposition des surfaces corporelles non rasées et non préparées.

Ensuite, placez le champ sur l’animal en gardant les mains sur le côté du champ qui ne touchera pas le patient. Et enfin, ajustez-le de manière à ce que le champ opératoire soit visible à travers l’ouverture. Cela permet de maintenir un champ stérile sur le site chirurgical pendant toute la procédure. Si vous utilisez un rideau en papier avec une fenêtre adhésive, décollez d’abord le papier de la zone adhésive. Ensuite, dépliez soigneusement le drapé, tournez-le de manière à ce que le côté collant soit face à l’animal et placez-le sur la zone chirurgicale. Ensuite, appuyez doucement l’adhésif sur le champ opératoire pour créer un joint avec la peau.

Après la préparation, l’étape suivante est la chirurgie. Jetons donc un coup d’œil à quelques points que le chirurgien doit garder à l’esprit pendant et après la chirurgie. Sous anesthésie, les animaux doivent être surveillés pour la température corporelle, la respiration et la fréquence cardiaque jusqu’à ce qu’ils soient complètement rétablis.

Pour la surveillance directe de la température corporelle, une sonde rectale conçue spécifiquement pour les rongeurs doit être utilisée. La plage normale est de 35,3 à 38 ? C c’est-à-dire 97,5 à 100,4 ? F. Alternativement, pour une surveillance indirecte, placez le thermomètre à côté ou sous l’animal. Bien que cela ne donne pas une température corporelle exacte, cela peut indiquer l’efficacité de la source de chaleur et permettre un ajustement pour réduire ou augmenter la chaleur au besoin.

Pendant ce temps, tout au long de la procédure, surveillez visuellement la fréquence cardiaque, les respirations et la couleur de la queue. À l’occasion, une surveillance supplémentaire peut être effectuée à l’aide d’électrocardiogrammes, qui évaluent l’état cardiaque d’un rongeur pendant l’anesthésie et la chirurgie.

Après l’opération, l’animal doit être remis dans une cage de récupération placée partiellement sur un coussin chauffant et la nourriture doit être facilement accessible. Le placement partiel sur le coussin chauffant permet à l’animal de s’éloigner de la source de chaleur une fois qu’il a repris conscience. De plus, une analgésie préventive et postopératoire doit être fournie dans la mesure du possible. Voir le tableau 1 ci-dessous pour la liste des analgésiques recommandés, leur posologie, leur voie d’administration et leur fréquence.

Maintenant que vous êtes bien au fait des considérations, examinons quelques-unes des chirurgies de survie effectuées par les chercheurs biomédicaux.

Afin de manipuler le cerveau chez les animaux vivants, les scientifiques effectuent souvent des chirurgies stéréotaxiques à l’aide d’un équipement spécialisé appelé « cadre stéréotaxique ». À l’aide de cet outil et d’un système de coordonnées tridimensionnelles, il est possible de cibler des endroits spécifiques pour mesurer l’activité cérébrale, induire des lésions ou effectuer des manipulations génétiques.

Les scientifiques pratiquent également des interventions chirurgicales pour créer des modèles animaux de troubles humains. Ici, les chercheurs ont créé un modèle de « lambeau de peau » pour étudier les lésions tissulaires induites par l’ischémie. En implantant une fenêtre métallique dans la peau rasée, les chercheurs ont pu visualiser la microcirculation de la région chez un animal vivant pendant plusieurs jours. Dans une autre expérience, les chercheurs ont pratiqué une intervention chirurgicale pour induire un défaut osseux en perçant une plaque dans le fémur d’un rat, puis ont étudié le processus de guérison osseuse in vivo à l’aide de rayons X.

Vous venez de regarder la vidéo de JoVE sur les considérations à prendre en compte avant, pendant et après la chirurgie des rongeurs. Ensemble, ces mesures réduiraient la probabilité d’infection et d’hypothermie, et aideraient à atténuer la douleur et l’inconfort de l’animal, ce qui augmenterait à son tour la probabilité de réussite d’une chirurgie de survie. Comme toujours, merci d’avoir regardé !