June 4th, 2009
Dans cette vidéo, nous vous présentons la sonde microfluidique 1 (PMF). Nous expliquons en détail comment assembler le MFP, montez au sommet d'un microscope inversé, et l'aligner par rapport à la surface du substrat, et enfin montrer comment l'utiliser pour traiter une surface de substrat immergé dans une solution tampon.
Cette procédure montre comment assembler et utiliser la sonde microfluidique ou MFP. Les composants microfluidiques de l’imprimante multifonction sont des seringues étanches aux gaz, des tubes capillaires en verre, des connecteurs micro-étanches d’Upchurch et la tête de l’imprimante multifonction. Cette vidéo présentera les étapes critiques de l’assemblage et de l’alignement.
Une fois assemblé, le MFP peut être utilisé avec une grande variété de substrats et de réactifs pour le modelage et le traitement de surface. Bonjour, je m’appelle Cecil Perot. Je suis stagiaire postdoctoral dans le laboratoire de David Yaker au Département de génie biomédical de l’Université McGill à Montréal, au Canada.
Bonjour, je m’appelle Mohammad Kasime. Je suis candidat au doctorat dans le laboratoire de David Y au département de génie biomédical de l’Université McGill. Bonjour, je m’appelle David Yoker.
Je suis professeur adjoint au Département de génie biomédical et j’aimerais vous accueillir aujourd’hui à notre démonstration sur la sonde microfluidique. Aujourd’hui, nous allons vous montrer une procédure de fonctionnement et d’utilisation de la sonde microfluidique. Nous utilisons ce procédé dans notre laboratoire pour le traitement de surface et le modelage.
Alors commençons, pour démarrer ce protocole. Les seringues et les aiguilles en plastique sont utilisées pour remplir les seringues en verre de type gaz avec des réactifs, en veillant à ce qu’il n’y ait pas de bulles d’air. En règle générale, nous utilisons une seringue d’un à 10 microlitres pour l’injection et une seringue d’un volume cinq à 10 fois plus grand pour l’aspiration.
Ensuite, à l’aide de raccords nano étanches à faible volume mort, les seringues sont connectées à un tube capillaire. Les capillaires sont ensuite remplis et vérifiés au microscope pour détecter la présence de bulles. La puce MFP est pré-remplie d’une solution tampon pour éviter le piégeage des bulles lors de la connexion des capillaires.
Enfin, les capillaires sont branchés dans la pièce de connexion PDMS dans la tête d’hélice micro-fabriquée. Une fois l’imprimante multifonction assemblée, nous sommes prêts à commencer à l’installer. Le substrat est inséré dans un support fait maison.
Il est fixé à la platine du microscope. L’espace entre le MFP et le substrat est essentiel pour les processus de structuration de surface. À l’aide d’un support à trois points formé par des vis micrométriques, l’alignement horizontal est ajusté avec une précision micrométrique.
Ceci est nécessaire car le substrat est traité en étant scanné sous le MFP. Pour commencer à configurer l’imprimante multifonction, la tête de la sonde est fixée dans le support de sonde et montée sur la station de sonde au-dessus d’un microscope inversé. Les seringues sont ensuite placées dans des pousse-seringues de haute précision.
Ensuite, à l’aide d’une paire de goniomètres, l’alignement du meza du MFP avec le substrat est ajusté en observant les anneaux de Newton, également connus sous le nom de franges d’interférence. Ceux-ci apparaissent lorsque le MFP est mis en contact avec le substrat, le point de contact et la fréquence des anneaux servent d’indication de l’inclinaison. Lorsque le MFP est aligné avec la surface, un seul anneau d’interférence s’étend sur toute la surface.
Cette mesure sert également à calibrer la séparation entre le MFP et le substrat. Avec la mise en place de l’imprimante multifonction, nous sommes maintenant prêts à passer à l’utilisation de l’imprimante multifonction. Pendant le fonctionnement de l’imprimante multifonction, la distribution est contrôlée par un logiciel de vue de laboratoire.
Le fonctionnement de l’appareil est visualisé à l’œil nu et à l’aide d’une caméra CCD. Avant de commencer une aspiration correcte, injectez un peu de liquide pour vous assurer que la seringue d’aspiration est correctement orientée et qu’il n’y a pas de bulles. Le MFP est ensuite immergé dans le tampon.
Nous pouvons maintenant commencer l’injection de liquide tout en surveillant le confinement des billes en vol. Le rapport d’aspiration par injection varie de un à trois à un à 10, en fonction de la diffusivité du réactif avec un tampon environnant et du modèle d’écoulement géométrique souhaité. Enfin, la sonde peut désormais être utilisée pour une variété d’applications.
Les motifs de surface montrés ici ont été réalisés par le MFP avec de la biotine marquée à la fluorescéine sur des lames de verre hydrogel recouvertes d’ENC. Le débit d’injection était d’un nanolitre par seconde et le débit d’aspiration était de 10 nanolitres par seconde en utilisant respectivement des seringues de 10 microlitres et 50 microlitres. L’écart entre la surface et la sonde était de cinq micromètres.
Le MFP peut également être utilisé pour la coloration locale et le traitement des cellules et des tissus. Le confinement de l’écoulement empêche la diffusion du réactif et permet une coloration chimique précise des cellules. Comme le montre ici, une monocouche de cellules fibroblastiques a été colorée avec 100 microgrammes par millilitre de dai.
Nous vous avons donc montré comment utiliser la sonde microfluidique. Lors de cette procédure, vous devez vous assurer d’éviter toute bulle sur le système et de vous assurer que la surface de l’hélice microfluidique est parallèle au substrat. Donc c’est tout.
Merci d’avoir regardé et bonne chance dans vos expériences.
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Cette vidéo démontre l'assemblage et l'utilisation de la sonde microfluidique (MFP). Elle couvre les étapes critiques pour aligner la MFP avec un microscope inversé et traiter les surfaces de substrats immergées dans une solution tampon.
The microfluidic probe enables precise, localized reagent delivery for surface processing without requiring closed microfluidic channels, supporting scalable and reproducible assay development. This capability enhances target validation and phenotypic screening by allowing controlled microenvironments for cellular and molecular interactions. It provides a reusable platform for high-resolution surface patterning, reducing reagent consumption and improving experimental throughput in early discovery workflows.
The microfluidic probe integrates into the discovery continuum from early target validation through assay development to preclinical screening, supporting iterative design and testing cycles.