Électrophysiologie par patch clamp de cellules entières : une méthode pour étudier les propriétés électriques des neurones

0 vues3:42 min • April 30th, 2023

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- Commencez par placer sur une platine de microscope une chambre d’enregistrement contenant un échantillon dans une solution de bain, dont la composition correspond à l’environnement extracellulaire physiologique ou au cytoplasme. Avancez la micropipette enregistreuse, une pipette contenant une électrode d’argent baignée dans une solution d’électrolyte, qui imite les conditions intracellulaires, vers le neurone en appliquant une pression positive, et entrez en contact avec la membrane cellulaire.

Passez doucement de la pression positive à la pression négative pour former un joint étanche entre la membrane et la pipette. Réglez un potentiel de maintien sur l’amplificateur pour maintenir la cellule à une tension constante. Rompez ensuite la membrane cellulaire à l’intérieur de la micropipette en appliquant une aspiration.

Une fois que la membrane cellulaire se rompt, le potentiel de rétention provoque le flux d’ions à travers des canaux ioniques voltage-dépendants, créant un potentiel de membrane, qui est enregistré par l’électrode enregistreuse. Enregistrez immédiatement le potentiel de membrane. L’électrode d’enregistrement transmet le signal à l’amplificateur de rétroaction, qui soustrait le potentiel de membrane du potentiel de maintien - un oscilloscope, qui présente un affichage visuel du potentiel de membrane, et un ordinateur. Dans le protocole suivant, nous effectuerons une mesure par patch clamp sur la cellule de Mauthner dans un embryon de poisson-zèbre.

- Pour vous préparer au serrage par patch, commencez par tirer des pipettes à patch clamp avec du verre borosilicate à paroi mince dans un extracteur horizontal. Le diamètre de la pointe de la pipette est d’environ 0,2 à 0,4 micromètre après polissage au feu jusqu’à un bord lisse, et le cône de la tige mesure environ 4 millimètres de long.

Remplissez l’extrémité de la pipette avec une solution intracellulaire en trempant l’extrémité dans le liquide intracellulaire. Insérez ensuite une aiguille de seringue dans la pipette et expulsez doucement la solution intracellulaire de la seringue pour terminer de remplir la pipette. Fixez la pipette à la tête de l’amplificateur dans la configuration d’électrophysiologie. Il est important de maintenir l’étage de tête à un angle d’environ 45 degrés par rapport à l’axe horizontal, car cela garantit un angle d’entrée pour la pipette adapté à la formation de joints à haute résistance avec la cellule Mauthner.

Juste avant que la pipette ne descende dans la solution du bain, appliquez une petite quantité de pression positive sur la pipette pour réduire le risque de blocage de la pointe. Continuez à vous approcher de la cellule M avec une petite quantité de pression positive dans la pipette. La pression positive pousse doucement la cellule d’un côté à l’autre et, lorsqu’elle est positionnée immédiatement au-dessus de la cellule, forme une petite fossette sur la membrane cellulaire.

Maintenant, laissez la pipette en place pendant quelques secondes pour nettoyer doucement la surface de la cellule afin qu’un joint solide entre la pipette et la membrane puisse être formé. Relâchez ensuite la pression positive dans la pipette pour initier le scellement. Une petite quantité de pression négative, associée à un potentiel de pipette négatif, permet de former des joints giga-ohm en quelques secondes.

Par la suite, modifiez le potentiel de maintien dans l’amplificateur à moins 60 millivolts. Rompre la membrane cellulaire avec une série de courtes impulsions d’aspiration. Ensuite, enregistrez immédiatement les potentiels de membrane et minimisez les artefacts de capacité. Compensent la capacité de la cellule et la résistance d’accès de 70 % à 85 %.

La résistance d'accès doit être surveillée toutes les 30 secondes à une minute, et s'il y a un changement de 20 % ou plus, interrompre l'expérience. Une fois l’expérience terminée et que suffisamment de données ont été acquises, sacrifiez l’embryon en retirant le cerveau postérieur à l’aide d’une paire de pinces.

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Dernière mise à jour : 1 août 2026