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Recherche sur le cancer
0 vues • 3:01 min • April 30th, 2023
Certains organes produisent des facteurs solubles et deviennent des sites préférentiels pour les métastases du cancer du sein. Un milieu conditionné préparé à partir de ces cellules d’organes prélevées peut aider à identifier et à étudier ces facteurs.
Commencez par placer un organe prélevé, tel qu'un foie, dans un tube contenant du PBS froid et retournez le tube de haut en bas pour éliminer le sang résiduel de l'organe. Placez l’organe dans une boîte de Pétri. Et à l’aide d’un scalpel, coupez l’organe en petits morceaux.
Remettez ces morceaux en suspension dans un tube contenant un milieu de base complété par un antibiotique pour favoriser la croissance cellulaire et prévenir la contamination. Maintenant, versez la suspension cellulaire dans une plaque de culture et incubez à 37 degrés Celsius avec un apport continu de dioxyde de carbone pendant la durée requise.
Pendant l’incubation, ces cellules libèrent des métabolites, des facteurs de croissance, des protéines de la matrice extracellulaire dans le milieu. Ensuite, transférez la suspension cellulaire dans un tube à centrifuger et ajoutez un milieu frais pour la diluer. Centrifugez le tube et filtrez le surnageant, qui est le milieu conditionné, dans un tube frais.
Dans le protocole suivant, nous préparerons des milieux conditionnés à partir des poumons et du cerveau de souris pour étudier le comportement métastatique des cellules cancéreuses du sein.
Pour générer le milieu conditionné aux poumons, inversez les tubes de tissu pulmonaire trois fois pour éliminer tout sang résiduel des organes. Remplacez ensuite le lavage par du PBS frais et froid et répétez jusqu’à ce que la solution saline soit exempte de sang.
Ensuite, transférez les poumons dans une boîte de Pétri en verre de 60 millimètres carrés par souris et utilisez deux lames de scalpel stériles pour hacher les tissus avec des tranchages répétés d’avant en arrière.
Lorsque les fragments de tissu ont une taille d’environ 1 millimètre cube, remettez les morceaux en suspension dans le volume approprié de milieu DMEM/F-12 complété par des antibiotiques et incubez les tissus dans un puits d’une plaque de 6 puits par souris à 37 degrés Celsius et 5 % de CO2.
Après 24 heures, transférez tout le contenu de chaque puits dans des tubes coniques individuels de 50 millilitres et diluez le milieu conditionné avec trois volumes équivalents de milieu DMEM/F-12 frais par tube.
Centrifugez les tubes pour éliminer tous les gros débris de tissus. Ensuite, regroupez le milieu conditionné à travers une crépine à seringue de 0,22 micron dans un seul tube conique de 50 millilitres.
Cet article traite de la préparation de milieux conditionnés à partir d'organes récoltés, en se concentrant spécifiquement sur le foie, les poumons et le cerveau, afin d'étudier les facteurs impliqués dans la métastase du cancer du sein. La méthodologie consiste à isoler des cellules provenant de ces organes et à analyser les facteurs solubles libérés qui pourraient influencer le comportement métastatique.
Les milieux conditionnés par des organes permettent l'étude des facteurs solubles responsables de la tropisme métastatique spécifique aux organes, offrant ainsi un outil mécanistique de réduction des risques pour la validation ciblée dans la recherche sur les métastases du cancer du sein. En isolant les métabolites, facteurs de croissance et protéines de la matrice extracellulaire d'origine organique, cette approche renforce la fiabilité prédictive pour l'identification de voies thérapeutiques exploitables et la sélection de candidats précliniques. Elle répond à un point critique de découverte : comprendre comment les signaux de l'environnement cellulaire influencent le comportement métastatique, orientant ainsi les décisions stratégiques dans l'identification de cibles en oncologie.
Cette méthode s'intègre dans la continuité de la découverte, depuis les tests initiaux d'hypothèses sur des cibles jusqu'à l'identification de composés actifs et la validation préclinique, en fournissant un contexte microenvironnemental spécifique aux organes.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026