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Une injection intracanalaire est utilisée pour fournir des traitements localisés à travers les canaux jusqu’aux glandes mammaires. Tout d’abord, placez un lapin anesthésié face au côté ventral vers le haut sur une table pour la procédure. Localisez les trayons à injecter et essuyez la zone avec de l’alcool.
Chargez une seringue avec une quantité appropriée de solution saline stérile et insérez l’aiguille, côté biseau vers le haut, dans le côté de la tétine. Injecter la solution saline pour une meilleure visualisation des ouvertures canalaires. Ensuite, soulevez la tétine et insérez soigneusement l’aiguille à pointe émoussée pour canuler le conduit. Chargez la seringue avec une solution d’intérêt à injecter.
Maintenant, verrouillez doucement la seringue sur l'embout de l'aiguille et injectez lentement la solution pour éviter tout dommage dû à la pression. L’injection dans le trayon délivrerait directement la solution à la glande mammaire du lapin. Dans le protocole suivant, nous administrerons un agent de contraste pour visualiser les canaux de la glande mammaire en utilisant la technique d'injection intracanalaire dans un modèle de lapin.
Pour commencer cette procédure, rasez soigneusement l’abdomen caudal d’un lapin anesthésié dans la zone autour des troisième et quatrième paires de trayons inguinaux. Une fois la majorité des poils épilés, appliquez la crème dépilatoire sur les zones rasées, et 10 minutes après l’application, retirez la crème à l’aide d’une serviette en papier humide imbibée d’eau tiède. Essuyez ensuite la zone avec des tampons de gaze imbibés d’alcool pour nettoyer le site d’injection. Placez le lapin sur son dos dans une auge en forme de V doublée d’une couverture d’eau chaude à recirculation et d’un tampon absorbant.
Pour préparer le produit de contraste, reconstituez-le selon les instructions du fabricant, puis secouez doucement le flacon pour mélanger. L’agent de contraste utilisé ici est stable à température ambiante pendant quatre à six heures après la reconstitution. Localisez les troisième et quatrième paires de trayons inguinaux à injecter. Chargez ensuite 0,2 millilitre de solution saline stérile à 0,9 % dans une seringue à tuberculine Luer-lock de 1 millilitre avec une aiguille de calibre 22. Jetez l’aiguille de calibre 22 une fois que la solution saline est dans la seringue et remplacez-la par une aiguille stérile de calibre 25.
Ensuite, essuyez doucement la zone avec de l’alcool isopropylique à 85 % sur un tampon de gaze. Avec le biseau de l’aiguille vers le haut et la seringue parallèle au corps de l’animal, insérez l’aiguille sur le côté du trayon et injectez lentement 0,1 à 0,2 millilitres de solution saline, pour permettre une meilleure visualisation des ouvertures canalaires. Ensuite, chargez 0,2 millilitre de solution injectable dans une seringue à tuberculine Luer Lock de 1 millilitre.
Tenez doucement la tétine avec le pouce et l’index et soulevez-la légèrement pour l’injection intracanalaire. Tout en maintenant la position relevée de la tétine, canulez soigneusement le canal d’intérêt à l’aide d’une aiguille à pointe émoussée de calibre 25. Après la canulation, tournez doucement la seringue Luer-lock sur le moyeu de l’aiguille de perfusion à embout arrondi jusqu’à ce qu’elle soit verrouillée en place. Soulevez le trayon et injectez la solution lentement pour minimiser les dommages potentiels causés par les fluides se déplaçant rapidement dans le conduit.
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