Essai de formation de colonies : évaluation de l’efficacité des agents anticancéreux sur les cellules cancéreuses du poumon formant des colonies

0 vues4:11 min • April 30th, 2023

- Le test de formation de colonies est une analyse in vitro d'un médicament anticancéreux sur la croissance de la cellule cancéreuse, proliférant et se différenciant en colonies dans des milieux semi-solides. Pour commencer, ensemencez les cellules cancéreuses dans le milieu RPMI avec un supplément de croissance - sérum fœtal bovin, ou FBS, et antibiotique. Incuber les cellules pendant la durée requise.

Ensuite, collectez la concentration souhaitée de cellules dans un tube à microfuge et centrifugez. Remettez le granulé en suspension dans le PBS. Préparez un milieu à base de méthylcellulose et distribuez-le dans différents tubes avec FBS pour favoriser une croissance optimale.

Ajoutez une quantité appropriée de suspension cellulaire dans des tubes et vortexez-les pour mélanger les cellules avec le milieu. Ensuite, ajoutez des composés anticancéreux dans des tubes et préparez un contrôle en ajoutant du DMSO. Tubes vortex.

Ajoutez ce mélange de cellules dans la plaque de culture et incubez pendant la durée souhaitée. Après l’incubation, ajoutez du bromure de méthylthiazol diphényltétrazolium, ou MTT, et incubez pendant un certain temps. Le MTT réduit le sel jaune de tétrazolium dans les cellules viables en cristaux de formazan violets. Les colonies viables virent au violet. Capturez les images à l’aide d’un appareil photo numérique et analysez les colonies viables. Dans le protocole suivant, nous étudierons un test de formation de colonies pour évaluer l’activité des mimétiques de l’hydroxycoumarine OT48 et BH3 dans le cancer du poumon.

- Pour commencer, plaquez 20 000 cellules A549 par centimètre carré dans 15 millilitres de milieu de culture cellulaire RPMI 1640, complété par 10 % de FBS et 1 % d’antibiotiques dans une fiole de 75 centimètres carrés. Incuber la culture à 37 degrés Celsius et 5 % de CO2. Le jour de l’expérience, utilisez un hémocytomètre pour déterminer la concentration cellulaire.

Recueillir 50 000 cellules dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre par centrifugation à 400 G pendant sept minutes. Et remettre les cellules en suspension dans 100 microlitres de PBS 1X stérile. À l’aide d’une multipipette, versez 1,1 millilitre de milieu semi-solide à base de méthylcellulose, ou MCBM, dans des tubes, en préparant un tube pour chaque condition. Ajoutez ensuite 110 microlitres de FBS dans chaque tube.

Ensuite, ensemencez 1 000 cellules par millilitre. Ensuite, pipetez 2,4 microlitres de la solution de cellule mère dans les tubes de MCBM et de FBS. Après avoir ajouté les cellules, tenez les tubes verticalement et tourbillonnez-les à la vitesse la plus élevée pendant une minute pour bien mélanger le MCBM et les cellules.

Ajoutez maintenant le composé d’essai OT48 seul, ou en combinaison avec A1210477, aux échantillons. Préparez un tube séparé comme contrôle pour le solvant utilisé, tel que le DMSO. Ensuite, faites tourbillonner les échantillons pendant une minute.

Pour chaque dosage, pipeter un millilitre du mélange dans le puits central d’une plaque de culture cellulaire à 12 puits. Utilisez ensuite un millilitre d’eau stérile ou de PBS pour remplir les puits vides. Incuber les plaques à 37 degrés Celsius et 5 % de CO2 pendant 10 jours. Ajoutez ensuite 200 microlitres d’une solution mère de MTT de cinq milligrammes par millilitre dans chaque puits. Après avoir incubé les plaques pendant 10 minutes, vérifiez s’il y a des colonies viables, qui deviendront violettes.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026