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Recherche sur le cancer
0 vues • 5:10 min • April 30th, 2023
- Les îlots pancréatiques sont un amas de cellules pancréatiques productrices d’hormones qui jouent un rôle crucial dans le maintien de l’homéostasie du glucose. Une concentration élevée de glucose déclenche la fermeture des canaux ioniques potassiques, empêchant l’efflux d’ions potassiques, entraînant une dépolarisation membranaire. En conséquence, des canaux d’ions calcium voltage-dépendants s’ouvrent, permettant l’afflux d’ions calcium. Cette concentration accrue de calcium cytosolique stimule la libération d’hormones comme l’insuline. En temps réel, pour imager la dynamique cytosolique du calcium, transférez quelques îlots chargés d’un colorant indicateur de calcium approprié entre les parois d’espacement d’un maillage fin préassemblé.
Positionnez le treillis à l’envers sur une lamelle placée à l’intérieur de la chambre d’imagerie d’un microscope inversé. Placez un maillage grossier et un poids pour immobiliser les cellules. Ajoutez la solution d’imagerie dans la chambre. Ensuite, mettez en place un système de perfusion pour introduire du glucose ou une hormone de test d’intérêt. À l’intérieur des cellules, des indicateurs de calcium fluorescents préchargés signalent toute augmentation des concentrations de calcium cytosolique. Lors de la liaison aux ions calcium, les molécules indicatrices présentent une augmentation substantielle de l’émission de fluorescence. Dans le protocole suivant, nous montrerons l’imagerie en temps réel de la dynamique du calcium dans les îlots pancréatiques murins en réponse à la perfusion de glucose.
- Pour immobiliser les îlots pour l’imagerie, assemblez une chambre d’imagerie pour un microscope inversé et placez une lamelle en verre à l’intérieur de la chambre. Assurez-vous que l’interface de la chambre en verre est étanche et vérifiez que la lamelle est à portée de l’objectif du microscope. Ensuite, coupez des carrés de 20 X 20 millimètres de mailles fines et grossières et utilisez des morceaux de 45 à 50 micromètres de ruban adhésif épais pour créer deux parois d’espacement sur un morceau de maille fine. Plongez la maille grossière et un poids dans une boîte de Pétri de 35 millimètres de solution d’imagerie et placez la maille fine sous un microscope de dissection.
Retournez le grillage fin avec les parois de l’entretoise et les entretoises vers le haut et utilisez une pipette P20 pour transférer plusieurs îlots entre les deux entretoises. À l'aide d'une pince d'horloger, placez le treillis à l'envers à l'intérieur de la chambre d'imagerie du microscope inversé de sorte que les entretoises soient orientées vers le bas pour reposer directement sur la lamelle de la chambre, en piégeant les îlots entre les entretoises et le treillis au milieu de la lamelle.
- Veillez à ce que le treillis soit bien hydraté sans contenir des volumes excessifs de solution, ce qui provoquerait le mouvement latéral de l’échantillon.
- Ensuite, placez le maillage grossier et le poids sur le maillage fin dans la chambre et ajoutez une solution d’imagerie dans la chambre. Une fois les îlots immobilisés, sélectionnez le mode d’imagerie et l’objectif sur le microscope inversé et placez la chambre avec les îlots sur la platine à température contrôlée du microscope. Après avoir réglé la périfusion, positionnez l’entrée plus bas que l’écoulement sortant dans la chambre et réglez le flux sortant pour qu’il soit supérieur au flux entrant.
Assurez-vous que l’écoulement a un contact minimal avec la solution afin qu’il élimine la solution en plusieurs petites gouttelettes séquentielles d’attente, de longs intervalles d’élimination continue de la solution. Ensuite, lancez la périfusion avec une solution d’imagerie contenant 3 millimolaires de glucose et sélectionnez le trajet lumineux et les filtres pour l’imagerie des fluorophores verts. Ensuite, exécutez l’imagerie en direct pour configurer les paramètres d’imagerie et ajustez la vue pour capturer les îlots de mer qui vous intéressent.
Pour optimiser le rapport signal/bruit de l’image, ajustez l’intensité de la lumière d’excitation, le temps d’exposition et le binning, en veillant à ce que les paramètres permettent une visualisation distincte de chaque cellule à l’intérieur des îlots avec l’intensité lumineuse et l’exposition minimales possibles. Ensuite, imagez les îlots à 0,1 à 5 Hertz, en vérifiant la qualité des données acquises au fur et à mesure de leur capture.
Cet article décrit un protocole d'imagerie en temps réel des dynamiques calciques cytosoliques dans les îlots pancréatiques de souris en réponse à une perfusion de glucose. La méthode consiste à immobiliser les îlots et à utiliser des indicateurs fluorescents du calcium afin de visualiser les variations de concentration en calcium.
L'imagerie en temps réel des dynamiques calciques cytosoliques dans les sous-populations d'îlots pancréatiques permet une interrogation précise des mécanismes de sécrétion hormonale, essentiels à la recherche sur les maladies métaboliques. Cette technique renforce la confiance prédictive dans la validation des cibles et la réduction fonctionnelle des risques au stade précoce de la découverte, notamment pour les programmes sur le diabète et les troubles métaboliques. Ses résultats quantitatifs facilitent une intégration robuste des données entre fonctions et orientent les décisions d'avancement ajustées au risque.
Cette technique d'imagerie s'intègre à l'interface entre la phase initiale de découverte et l'identification de composés candidats, soutenant à la fois la validation ciblée guidée par une hypothèse et le développement de tests pour la recherche sur les maladies métaboliques.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026