Name: 腱板断型ボトルの培養システムを使用してげっ歯類全胚培養の方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-28T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: 学ぶ腱板断型ボトル培養システムを用いたげっ歯類全胚培養法。E12.5以降のラット胚を体外で培養し、発生生物学における遺伝子機能や細胞挙動の動的解析を可能にする標準プロトコルを解説する。

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我々は、ビデオを編集するためのビデオ録画および有用な助言のために氏肇輝に感謝。我々はまた、ビデオ録画のための親切なアシスタントのためDrs.Yuji恒川とカイチ吉崎に感謝。この作業は若手Bで、日本の文部科学省から重点領域 - 分子脳科学に関する科研費でサポートされています。我々は日本の文部科学省と日本の科学技術振興機構（JST）から日本の科学とテクノロジー社から戦略的創造科学技術（CREST）のためのコアの研究から、グローバルCOEプログラム&quot;グローバル脳科学のための基本とトランスレーショナルリサーチセンター&quot;のサポートを認める。

1。 WECシステムのセットアップ<ol><li> ）WECシステム内の入口シリコンチューブ〜0.22μmのメンブランフィルタージョイント。 </li><li> O 2（95％）とCO 2（5％）を含むガスのボンベの ​​バルブを開きます。オートクレーブ水を含む、バブルボトルを経由してドラム内に混合ガスを流し込む。 </li><li> 50ccのために混合ガスの流量を調整します。 </li><li>外は水のボトルにシリコンチューブを聞かせて混合ガスの流れをチェックアウト挿入。 </li><li> 20回転/分の速度でドラムを回転させる。 </li></ol> 2。培地の調製<ol><li>融解ラット直ちに遠心分離（IC）血清37.0℃においてB）。オートクレーブした100mlのビーカーに解凍した血清中にD -グルコース（2 mg / mL）を追加します。培地は初代培養のレベル（例えば、フードを使用して）で準備する必要があります。 </li><li> 400希釈：1の血清に抗生物質 - 抗真菌剤（100倍）液体を追加。 </li><li>室温で20分間血清（RT）c）から（採血時のラットの麻酔に起因する）、残りのイソフルランを気化。 </li><li> 0.45μmのメンブランフィルターを用いて培養液を滅菌する。 </li><li>各培養瓶の培地3.0 mlを注ぐとシリコンプラグでそれぞれのボトルの上部をシール、アルミホイルで覆われ（文献14参照）D）。 </li><li> ）タイロードの生理食塩水の電子を含む3つまたは4つの処分ペトリ皿を準備します。 </li></ol> 3。子宮のラットと分離の麻酔<ol><li>吸入または経口麻酔薬で深く時限妊娠ラットを麻酔。 </li><li> 70％エタノールで麻酔妊娠したラットの腹部領域をクリーニングします。 </li><li>ピンセットで皮膚を拾うと大きなハサミf）を使用して皮膚をカットして腹壁を露出させる。 </li><li>ピンセットで腹壁をピックアップして）胸椎レベルのgに大きなハサミで腹壁上にU字型の大規模な縦断的切開を占めている。 </li><li>ピンセットで左側に腸を持って行ってしまうと卵巣に接続されている子宮の一端を公開。 </li><li>ピンセットで子宮の端を拾うと大きなはさみで子宮と卵巣の間に位置をカット。 </li><li>子宮のもう一方の端まで、子宮の周りの脂肪をカットすることで妊娠ラットから子宮を取り出してください。 </li><li>タイロードの生理食塩水を含むペトリ皿に子宮を転送する。 </li><li>子宮を除去した後、麻酔薬の過剰投与や頸椎脱臼によりラットを安楽死させる。 </li></ol> 4。子宮から胚の除去<ol><li>簡単に言うとタイロードの生理食塩水で子宮をすすぎ、細かい鉗子H）のペアで2ペトリ皿に移す。 </li><li>双眼顕微鏡下で、微細なピ​​ンセットで子宮壁をピックアップし、眼科まっすぐはさみを使用して血管を使用して接続し子宮間膜の反対側で子宮壁をカット。 </li><li>子宮壁と脱落膜との間の空間に眼科ストレートはさみの先端を挿入します。 antimesometrial側に沿って長手方向に子宮壁をカット。 </li><li> mesometrial側の脱落膜および微細な鉗子i）の 2組を使用して子宮とは別のconceptuses塊。 </li><li>適切な直径を持つ滅菌ガラスピペット3番目のシャーレにconceptusesを転送する。 </li></ol> 5。ラットの胚の解剖<ol><li>脱落膜にmicroforcepsいずれかの先端を挿入し、鉗子の二組の受胎産物の周りに脱落膜上に横切開を行います。 </li><li>胎盤側に脱落膜に鉗子の先端を挿入し、上部に脱落膜上の2つの縦切開を行います。 </li><li>鉗子の二組のことをリッピングにより、胎盤側の脱落膜を取り外します。鉗子の二組の残りの脱落を削除します。 </li><li> 、ライヘルトの膜を拾うことで水平方向の切開を行うこと、および抗胎盤側で受胎産物から膜を分離する。 </li><li>鉗子の二組の胚の頭部近くに卵黄嚢に小さな穴を確認し、眼科曲線ハサミで卵黄嚢をカット。主要な血管を損傷しないことが重要です。 </li><li>微細な鉗子の二組の胚の頭の周りのサイトで羊膜をピックアップ、そして静かに）羊膜hを引き裂くことによって卵黄嚢から胚を引き出します。胚の体は妊娠中期の段階で胚のための酸素の供給を増やすために卵黄嚢から撤退すべきである。 </li></ol> 6。全胚培養<ol><li>胎盤、卵黄嚢、そして心臓の拍動と血液循環の状態で損害賠償を確認してください。 </li><li>へその緒をストレッチではないの自覚し、転送滅菌ガラスピペットで培養ボトルへの胚。培養ボトルにタイロードの生理食塩水のキャリーオーバーは可能な限り少ないはずです。 </li><li>回転体ドラムから非穴シリコンプラグを取り外します。垂直にWECシステムの回転子ドラムに穴をプラグで培養ボトルを接続してください。回転子のドラムが非常に微細な機器であるため、不適当な方向にドラムに力を入れるように注意してください。解剖胚を含むボトルは1つで文化いずれかに転送され、インキュベーターのフロントドアの開口部は、インキュベーターの温度を避けるために最小限に抑える必要がありますjを減少させる）。 </li><li>文化の10時間後、最大75 ccと24時間（表1）後に最大100 ccの混合ガスの流量を増加させる。 </li><li>培地は、調製したばかりの培地を使用して新しい培養瓶に培養胚を転送することにより、24時間のまわりに変更する必要があります。 34時間後に最大125 ccの流量を増加し、48時間後に最大150のcc（表1） </li><li>時折ハートビートレートを（すなわち、120-150/minが最適である）カウントすることにより、血液の循環を観測することによって培養胚の状態を確認してください。必要に応じてタイロードの生理食塩水で胚の成長を判断する体節の数を数えます。通常の開発では、一方の体節が2時間に追加されます。 </li><li> WECが終了すると、混合ガスの供給を停止し、入口管およびバブリング瓶からインレットチューブに逆流を防ぐために、フィルタ膜を切断。 </li></ol> 7。ノート<ol class="lalpha"><li> WECシステム内部の温度は常に37.0から37.5℃に保持され</li><li> 100パーセントラットIC血清は、日常的にラットおよびマウス胚のための私達のWECで使用され、使用前に-20℃に保たれている。 </li><li>我々は、イソフルランで麻酔したラットから収集されたラットIC血清を、購入。 </li><li>使い捨ての瓶は、池本理化からも利用できます。ボトルとシリコンのプラグはオートクレーブする必要があります。 </li><li>解剖中に低温または高温での胚の維持がWECで、その後の発展に影響を与えるので、胚の解剖は、室温で行ってください。 </li><li>解剖のためのツールは、乾熱で滅菌されています。 </li><li>皮膚と腹壁はできるだけ皿に毛の汚染を避けるために別々にカットする必要があります。我々は皮膚をカットし、子宮を分離するときに我々はそれぞれ、それらの新しいペアで大きなハサミとピンセットのペアを変更してください。 </li><li>そのヒントうまくある鉗子を使用すると、確かに組織を分析する非常に重要です。我々は、手動で石と機械油と鉗子の先端をシャープに。 </li><li>我々は、胚へ過剰な圧力を避けるために、ナイフのような鉗子の片側を使用してください。 </li><li> WECシステム内部の温度が何度も扉を開くことによって減少したとき、我々は、システム内の温度を保つためにライトをオンにし続ける。 </li></ol> 8。代表的な結果図1は、ラット胚と培養ラット胚の解剖の手順を示しています。 <img src="/files/ftp_upload/2170/2170fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。E12.5ラット胚の全胚培養。 （A）胎児は、妊娠ラットの子宮から解剖。胎盤側の脱落膜の（B）の除去。ライヘルトの膜の（C）除去。 （D）卵黄嚢を開く。 WECの開始後6時間ボトルで（E）ラット胚の培養。 （F）ラットの胚は、42時間培養。 D、脱落膜、R、ライヒェルトの膜、P、胎盤、YS、卵黄嚢、電子、胚。 <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> 0時間</td><td> 12時間</td><td> 24時間</td><td> 36時間</td><td> 48時間</td></tr><tr><td> E12.5ラット胚</td><td> 95パーセント50ccの</td><td> 95パーセント75のcc （10時間） </td><td> 95パーセントを100cc </td><td> 95パーセント125のcc（34時間） </td><td> 95パーセント150ccの</td></tr></tbody></table> 表1。最適な酸素状態。

<ol><li>New, D. A. T. Intoroduction. In mammalian postimplantation embryos. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNew%2C+DAT+%22In+Mammalian+Postimplantation+Embryos+A+Practical+Approach%22">In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach</a>. Copp, A. J., Cockroft, D. L. , IRL Press. Oxford. 1-14 (1990).</li>
<li>Cockroft, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+and+culture+of+post+implantation+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22In+Mammalian+Postimplantation+Embryos+A+Practical+Approach%22%5BJournal%5D)">Dissection and culture of post implantation embryos.</a> In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. Copp, A. J., Cockroft, D. L. , IRL Press. Oxford. 15-40 (1990).</li>
<li>Morris-Kay, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postimplantation+mammalian+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Essential+Developmental+Biology+A+Practical+Approach%22%5BJournal%5D)">Postimplantation mammalian embryos.</a> Essential Developmental Biology A Practical Approach. , IRL Press. Oxford. 55-66 (1993).</li>
<li>Fujinaga, M. In vitro culture of rodent embryos during the early postimplantation period. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFujinaga%2C+M+%22Developmental+Biology+Protocols%22">Developmental Biology Protocols</a>. Tuan, R. S., Lo, C. W. , Humana Press. Totowa. 53-76 (2000).</li>
<li>Eto, K., Takakubo, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+development+of+rat+embryos+in+culture+during+the+period+of+craniofacial+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Craniofac.+Genet.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Improved development of rat embryos in culture during the period of craniofacial morphogenesis.</a> J. Craniofac. Genet. Dev. Biol. 5, 351-355 (1985).</li>
<li>New, D. A., Cockroft, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rotating+bottle+culture+method+with+continuous+replacement+of+the+gas+phase%5BTitle%5D)+AND+%22Experientia%22%5BJournal%5D)">A rotating bottle culture method with continuous replacement of the gas phase.</a> Experientia. 35, 138-140 (1979).</li>
<li>Osumi-Yamashita, N., Ninomiya, Y., Eto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+craniofacial+embryology+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mammalian craniofacial embryology in vitro.</a> Int. J. Dev. Biol. 41, 187-194 (1997).</li>
<li>Inoue, T., Nakamura, S., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+mapping+of+the+mouse+prosencephalic+neural+plate%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Fate mapping of the mouse prosencephalic neural plate.</a> Dev. Biol. 219, 373-383 (2000).</li>
<li>Nomura, T., Holmberg, J., Frisen, J., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pax6-dependent+boundary+defines+alignment+of+migrating+olfactory+cortex+neurons+via+the+repulsive+activity+of+ephrin+A5%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Pax6-dependent boundary defines alignment of migrating olfactory cortex neurons via the repulsive activity of ephrin A5.</a> Development. 133, 1335-1345 (2006).</li>
<li>Inoue, Y. U., Asami, J., Inoue, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+labeling+of+mouse+rhombomeres+by+Cadherin-6%3A%3AEGFP-BAC+transgenesis+underscores+the+role+of+cadherins+in+hindbrain+compartmentalization%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Genetic labeling of mouse rhombomeres by Cadherin-6::EGFP-BAC transgenesis underscores the role of cadherins in hindbrain compartmentalization.</a> Neurosci. Res. 63, 2-9 (2009).</li>
<li>Calegari, F., Huttner, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+inhibition+of+cyclin-dependent+kinases+that+lengthens%2C+but+does+not+arrest%2C+neuroepithelial+cell+cycle+induces+premature+neurogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis.</a> J. Cell Sci. 116, 4947-4955 (2003).</li>
<li>Osumi, N., Inoue, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+into+cultured+mammalian+embryos+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporation.</a> Methods. 24, 35-42 (2001).</li>
<li>Arai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+Fabp7%2C+a+downstream+gene+of+Pax6%2C+in+the+maintenance+of+neuroepithelial+cells+during+early+embryonic+development+of+the+rat+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Role of Fabp7, a downstream gene of Pax6, in the maintenance of neuroepithelial cells during early embryonic development of the rat cortex.</a> J. Neurosci. 25, 9752-9761 (2005).</li>
<li>Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transferring+genes+into+cultured+mammalian+embryos+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth+Differ%22%5BJournal%5D)">Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation.</a> Dev. Growth Differ. 50, 485-497 (2008).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

成功のための齧歯類のWECの2つの重要なステップがあります。最初に、解剖の手順は、しないように、特に被害の胚、血管に正確でなければなりません。酸素と栄養がもはや子宮からの分離後の胎盤を介して供給されていないので、第二、手続きはできるだけ早くする必要があります。これは古い胚にとって非常に重要です。 E12.5後のラットのWECのケースでは、我々は30分以内に培養ボトルに切除した胚を転送する必要があります。 我々は、蛍光色素のDIIと細胞の小さな数字をラベルまたは野生型と変異体背景7のラット胚におけるDII -標識細胞を移植することにより、野生型およびPax6変異ラット胚の神経堤細胞の移動パターンを分析した。前方神経板の運命のマップは24時間8 DIIと培養した神経上皮細胞のラベリングからマウスで描かれています。 WECは、Pax6変異ラット9に示すように、移行の不具合で、細胞の自律性を調べるためにE12.5ラット胚の終脳にGFPを発現する細胞の移植にも使用されています。様々な阻害剤が...

<table border="1"><tbody><tr><td> の名前 </td><td> タイプ </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント </td></tr><tr><td colspan="5"> WECの設定 </td></tr><tr><td> WECシステム（10〜0310） </td><td>ツール</td><td>池本リカ</td><td> 010-0310 </td><td>別のスモールモデルも用意されています。 </td></tr><tr><td>穴のないシリコンプラグ</td><td>ツール</td><td>池本リカ</td><td> 010-032-08 </td><td></td></tr><tr><td>混合ガスのシリンダー</td><td>ツール</td><td>日光山荘</td><td> - </td><td>酸素95％と5％の二酸化炭素を含む。カスタムオーダー。 </td></tr><tr><td>ガスレギュレータ</td><td>ツール</td><td>小野製作所</td><td> WR - 11 </td><td></td></tr><tr><td> 0.22μmのフィルターマイレクスGS </td><td>ツール</td><td>ミリポア</td><td> SLGS033SS </td><td></td></tr><tr><td colspan="5"> 麻酔と子宮の分離 </td></tr><tr><td>大きなはさみ</td><td>ツール</td><td> Napox </td><td> B - 7H </td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>ツール</td><td> Napox </td><td> - 3 - 2 </td><td></td></tr><tr><td>廃棄ペトリ皿 （90ミリメートル× 15ミリメートル） </td><td>ツール</td><td>いわき市</td><td> SH90 - 15 </td><td>深型シャーレは、解剖に最適です。 </td></tr><tr><td>イソフルレン</td><td>試薬</td><td>アボット</td><td> B506 </td><td>麻酔のための</td></tr><tr><td>ペントバルビタールナトリウム</td><td>試薬</td><td>シェリングプラウアニマルヘルス</td><td> - </td><td>麻酔のための</td></tr><tr><td>タイロードの生理食塩水</td><td>試薬</td><td> - </td><td> - </td><td>文献[プロトコルとしてよると。 2。 4℃で保存℃、 </td></tr><tr><td>時限妊娠Sprague - Dawleyラット</td><td>動物</td><td>チャールズ川ラボラトリーズジャパン</td><td> - </td><td></td></tr><tr><td colspan="5"> 培地の調製 </td></tr><tr><td>文化ガラス瓶</td><td>ツール</td><td>池本リカ</td><td> 010-032-05 </td><td></td></tr><tr><td>処分の培養瓶</td><td>ツール</td><td>池本リカ</td><td> 010-032-06 </td><td></td></tr><tr><td>穴付きシリコン栓</td><td>ツール</td><td>池本リカ</td><td> 010-032-07 </td><td></td></tr><tr><td>アルミ箔</td><td>ツール</td><td>どのような企業</td><td> - </td><td></td></tr><tr><td>オートクレーブ袋</td><td>ツール</td><td>カル</td><td> HM - 26 </td><td>培養ボトル用</td></tr><tr><td>オートクレーブ袋</td><td>ツール</td><td>カル</td><td> HM - 14A </td><td>シリコンプラグ用</td></tr><tr><td> 0.45μmのフィルターマイレクスHA </td><td>ツール</td><td>ミリポア</td><td> SLHA033SS </td><td></td></tr><tr><td> 50 mlコニカルチューブ</td><td>ツール</td><td>ベクトンディッキンソン</td><td> 352070 </td><td></td></tr><tr><td> 100mlのビーカー</td><td>ツール</td><td>いわき市</td><td> TE - 32 </td><td></td></tr><tr><td>ラットIC血清</td><td>試薬</td><td>チャールズ川ラボラトリーズジャパン</td><td> - </td><td> 、氏邦彦森崎：を参照してください。 TEL：+81-（0）45-474-9336、FAX：+81-（0）45-474-9340 </td></tr><tr><td> D（+） - グルコース</td><td>試薬</td><td>和光</td><td> 041から00595 </td><td></td></tr><tr><td>抗生物質antimyotic液体</td><td>試薬</td><td>ギブコ</td><td> 15240 </td><td></td></tr><tr><td colspan="5"> 胚の解剖 </td></tr><tr><td>眼科ストレートはさみ</td><td>ツール</td><td> Napox </td><td> MB50 - 7 </td><td>子宮壁を切断するための</td></tr><tr><td>眼科曲がったはさみ</td><td>ツール</td><td> Napox </td><td> MB54 - 2 </td><td>卵黄嚢を切断するための</td></tr><tr><td>鉗子＃5 </td&gt; <td>ツール</td><td>活力</td><td> T6715 </td><td></td></tr><tr><td>鉗子＃5F </td><td>ツール</td><td>レギ</td><td> T6819 </td><td></td></tr><tr><td>ガラスピペット</td><td>ツール</td><td> - </td><td> - </td><td>パスツールピペットを用いて手で作ら。 </td></tr><tr><td>オートクレーブ袋</td><td>ツール</td><td>カル</td><td> HM - 4 </td><td>ガラスピペットを用</td></tr><tr><td>双眼顕微鏡</td><td>ツール</td><td>ライカ</td><td> Mz7s </td><td></td></tr><tr><td>軽</td><td>ツール</td><td>ライカ</td><td> CLS 150XD </td><td></td></tr><tr><td>石油石</td><td>ツール</td><td>内田洋行</td><td> 833-2000 </td><td>鉗子のシャープニング用</td></tr><tr><td>マシン油</td><td>ツール</td><td>内田洋行</td><td> 835-0000 </td><td>鉗子のシャープニング用</td></tr></tbody></table>

腱板断型ボトルの培養システムを使用してげっ歯類全胚培養の方法

The Method of Rodent Whole Embryo Culture using the Rotator-type Bottle Culture System

全胚培養（WEC）技術は、新しいと彼の同僚によって1950年代に開発され、発生生物学1に適用されている。開発と哺乳類の胚の成長は、胎盤の機能に深く依存しているが、WECの技術は、胚の日中の妊娠中期の段階に対応する限られた期間の培養マウスやラットの胚ex vivoでの条件（E）が6.5 - E12.5に連絡することができますマウスまたはラット2、3、4のE8.5 - E14.5。胚を顕微鏡下で操作できるので、WECでは、我々が直接微細なガラスキャピラリーを用いた胚の所望の領域をターゲットにすることができます。我々はpostimplanted哺乳類胚のダイナミックな発生過程を研究する場合したがって、齧歯類のWECは、非常に有用な技術である。最新の、WECシステムのいくつかのタイプは、1が開発されている。これらのうち、ローテーター型ボトル培養系は、それぞれ1マウス及びラットにおけるE9.5およびE11.5、後に、最も人気があり、妊娠中期、すなわちにおける胚の長期培養に適しています。このビデオプロトコルでは、我々は、新規およびコックロフト5で設計されたオリジナルのローテータのシステム、洗練されたモデルを使用して12.5日後に6をラットのWECの私達の標準的な手順を示し、そして哺乳類の発達の研究にWECの技術の様々なアプリケーションを紹介生物学。

全胚培養法は、培養マウスやラットの胚に連絡することができます<em&gt;生体外で</em妊娠中期の段階に対応する限られた期間&gt;条件。このビデオプロトコルでは、ローテータ型ボトルの培養系を用いて12.5日後にラットの全胚培養の私達の標準的な手順を示しています。

全胚培養（WEC）法は1950年代にNewらによって開発され、発生生物学に応用されてきました1。発生が...

発生生物学では、実験に様々な動物が利用されています。胚の培養技術は1950年代に確立され、ハワイの農業における現代的な遺伝子操作法の確立以前に発展しました。胚は操作が可能であり、顕微鏡下での観察ができるため、遺伝子の導入やトランスフェクションによって標的領域を直接制御することができ、したがって全胚培養は非常に有用なツールとなります。着床後のマオリアン胚の動的な発生過程を研究したい場合、マオリアン胚の成長は機能的なプレゼンターに決定的に依存しているため、培養期間が制限されます。一般的に、ラットでは胚日 8.5 から 14.5 まで、マウスでは E 6.5 から 12.5 までの期間、胚を培養することが可能です。当研究室では、回転培養システムを用いてラットおよびマウスの胚を培養しています。この培養システムは、ラットおよびマウスの胚の妊娠後期における培養に最も普及しており、適しています。具体的には、ラットではE 11.5以降、マウスではE 9.5以降の時期が対象となります。このビデオでは、E 12.5 RU胚を用いた飢餓培養の標準プロトコルをご紹介します。この条件下では、胚を2日間培養することができ、これはホーン培養におけるさまざまな有効な操作を検討するのに十分な期間です。成功させるためには、2つの重要なステップがあります。第一に、胚、特に脈管（rod vessels）を損傷させないよう、正確に解剖操作を行う必要があります。第二に、操作は可能な限り迅速に行わなければなりません。これは、特に日齢の高い胚において重要です。例えば、E 10.5のマウス胚の場合、30分以内に移送する必要があります。私たちはPax6変異体の胚に対して全胚培養法を適用しました。例えば、少数の細胞を染料でラベル化するか、野生型および変異体背景の胚に細胞を移植することで、変異体における神経前駆細胞の遊走パターンを解析しました。さらに、電気ショックを用いるエレクトロポレーション法により、培養マウス胚およびラット胚への遺伝子導入法を確立しました。これにより、外来遺伝子の構築物、ドミナントネガティブ型、およびsiRNAを、発達中の脳領域に簡便に導入することが可能です。したがって、機能喪失（loss of function）および機能獲得（gain of function）実験を通じて、遺伝子機能を容易に解析することができます。また、器官培養またはスライス培養を用いて、GFPまたはRFPでラベル化された細胞の挙動を解析します。したがって、器官培養を他の手法と組み合わせることで、さまざまな実験を行うことが可能です。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

このビデオはmidgastrulaステージショウジョウバエの胚からの一次ニューロン培養の準備を示しています。ライブ文化の景色は、重炭酸塩ベースの定義培地での生育の2日後に細胞を1めっき後の時間と分化した神経細胞を示す。神経細胞は電気的興奮性であり、シナプス結合を形成する。...

Midgastrulaステージショウジョウバエの胚からの神経培養の準備

このビデオでは、新しい文化、最大24時間までのニワトリ胚が卵の外側に培養される方法を示しています。このメソッドは1つが、マウスのE7 - 9に相当する期間を早期に開発を（14 SOMの原条。）勉強することができます。この技術のアプリケーションでは、in...

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この記事では、我々は長期的な有効にするシンプルな方法論を提示...

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母体の代謝をバイパスする神経胚形成の間にマウス胚の直接の薬理学的操作を可能にする方法が記載されている。技術は時間のポイントと薬剤を変えることによって、神経胚形成の異なる側面を研究するために適応させることができます。...

マウス全胚培養における神経管閉鎖

我々は、齧歯類の胚から海馬および皮質ニューロンを分離、培養するための迅速な方法論を記述します。このプロトコルは、私たちはほぼ純粋な神経細胞の培養が必要とされる実験を行うことができます。...

ラット胚神経細胞の分離と文化：クイックプロトコル

スライス培養、遺伝子的および薬理学的摂動による胚の操作を容易にする。しかしながら、培養条件は、通常の開発では、スライスの低減環境内で進めることができることを確認する必要があります。我々は、少なくとも24時間にわたって進行する通常の脊髄の開発が容易にプロトコルを示している。...

ニワトリ胚脊髄スライス培養プロトコル

胚培養に利用される血清は、特にシグナル伝達の相互作用を含む研究での実験の結果に影響を与えることができ、未知のコンポーネントが含まれています。ここでは、無血清酸素化培養系を利用し、16〜40時間培養妊娠中期のマウス胚が子宮内で発生中の胚に匹敵する形態的発展を示すことを示している。...

無血清全胚培養系で、マウス胚発生

哺乳類全胚培養(WEC)は、奇形学および発生生物学で広く使用されています。即時遠心分離したラット血清は、マウスとラットの両方のWECの培地として一般的に提供されます。このビデオでは、哺乳類のWECに適した高品質のラット血清を調製するための標準プロトコールを実演します。...

哺乳類の全胚培養に適したラット血清の調製

私たちは、初期のマウス胚の定義された部位に培養細胞を移植し、そのin...

早期着床後のマウス胚への細胞やDNAの正確​​ローカライズ転送する方法

全胚培養のための強化されたプラットフォームは、着床後マウス胚の連続的かつ堅牢な 子宮外...

元ウテロ マウス胚の採虫前から高度器官形成までの培養

このプロトコルは、胚移植プロセスに影響を与える関連分子を評価するためのシンプルで効率的な胚移植 in vitro...

In Vitroでの胚着床モデルの確立

学ぶ腱板断型ボトル培養システムを用いたげっ歯類全胚培養法。E12.5以降のラット胚を体外で培養し、発生生物学における遺伝子機能や細胞挙動の動的解析を可能にする標準プロトコルを解説する。

腱板断型ボトルの培養システムを使用してげっ歯類全胚培養の方法

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