Name: Lisolement et la In vitro Activation des Caenorhabditis elegans Sperme (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-31T19:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 46 s
Description: Apprenez à isoler et activer les spermatides de Caenorhabditis elegans par dissection de mâles et traitement protéasique. Cette méthode permet de visualiser la morphologie des spermatozoïdes pour des analyses biologiques.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Nous remercions Samuel Ward, Diane C. Shakes et Gregory Nelson pour le pionnier de cette technique. Nous tenons à remercier Pavan Kadandale et Brian Geldziler des vidéos montrant des spermatozoïdes activé; des membres du laboratoire pour les discussions utiles Singson; CCG pour les souches et les NIH pour nous soutenir par le biais de subvention (R01HD054681).

1) L'enrichissement de la population masculine <ol><li> Selon le besoin d'expérimentation, un grand nombre de mâles peut être obtenu en employant l'une des stratégies suivantes: <ol><li> grande population de mâles de type sauvage peut être obtenu par croisement 5 mâles de type sauvage et une hermaphrodite, sur une petite pelouse de l'OP50 ensemencé au centre de la plaque de NGM. Environ 50% de la génération suivante sera mâles de type sauvage. </li><li> lui-5 (e1490) ou lui-8 (e1489) hermaphrodites jettent grand nombre de mâles. lui-5 et lui-huit mâles sont fertiles et il n'y a aucun défaut évident dans la morphologie des spermatozoïdes et de la fonction. Alors, lui-5-8 ou lui mâles peuvent être utilisés en lieu et place des hommes de type sauvage pour de nombreuses expériences. </li></ol></li></ol> 2) Identification et isolement des hommes <ol><li> Examinez la morphologie de la queue des vers; queue du ver mâle est arrondi. </li><li> Choisissez L4 mâles scène et de les transférer sur une plaque NGM ensemencé avec E. coli OP50 et les laisser pousser pendant une journée ou deux. Growing mâles célibataires en l'absence d'hermaphrodites prévenir la perte de sperme et donc grand nombre de spermatides seraient disponibles durant la procédure expérimentale. </li><li> Le jour de la dissection, le transfert des mâles célibataires sur une plaque de NGM sans bactéries et de les laisser ramper pendant quelques minutes. Cette étape permet d'enlever petite couche de E. coli adhère à la surface des vers. Alternativement, une pipette petit volume de tampon M9 (6g Na 2 HPO 4, 3g KH 2 PO 4, 5g de NaCl, 0,25 g MgSO 4 .7 H 2 O par litre) dans un verre de montre et les hommes de transfert dans la mémoire tampon. </li></ol> 3) La dissection des hommes et dans l'activation in vitro <ol><li> Prenez une lame de verre et de marquer un petit cercle à l'aide d'un stylo pap. Pipeter 30 à 50 pl de milieu de sperme 1X (50 mM HEPES, 25 mM KCl, NaCl 45mm, 1 mM MgSO 4, 5 mM de CaCl2, 10 mM de dextrose; pH 7,8) dans le cercle. Le cercle hydrophobe permet de conserver la moyenne du sperme dans ses limites. </li><li> Transférer les mâles 5-10 sur le milieu de sperme. </li><li> Voir la lame sous microscope, tenir deux seringues attaché avec 27 aiguilles de calibre sur vos deux mains. </li><li> Utilisez une aiguille à «tenir» le ver et utiliser l'autre aiguille pour couper l'extrémité postérieure des hommes pour libérer les spermatides. </li><li> Couper le ver expulse généralement très grand nombre de spermatides instantanément. Les spermatides sont visibles minute granulés »sous le microscope stéréo. Cependant, parfois, une partie ou la plupart des spermatides peuvent être conservés au sein de la carcasse. Dans ce cas, doucement "glisser" la carcasse sur la lame de verre peut faciliter la libération des spermatides de la carcasse. </li><li> Pour activer les spermatides, disséquer les vers dans un milieu de sperme 1X contenant E pronase (20μg/ml) et laissez-les reposer pendant 5 minutes. </li><li> Ne pas laisser les diapositives à devenir secs à aucun moment de l'expérience. Ajouter moyen sperme plus 1X si nécessaire. </li></ol> 4) Visualisation des spermtids et les spermatozoïdes <ol><li> Placer délicatement une lamelle sur la surface de l'échantillon disséqué. </li><li> Trouver le domaine de spermatides sous faible grossissement (10X) </li><li> Détails fins de spermatides ou de spermatozoïdes peut être observée en se déplaçant à plus fort grossissement - habituellement à immersion dans l'huile 100X. </li></ol> 5) Les résultats représentatifs Un exemple de l'image DIC des spermatides isolées de mâle C. elegans est montré dans la figure 1. Spermatides sont de forme sphérique et les noyaux sont importants. In vitro, les spermatozoïdes sont activés montre la figure 2. <img src="/files/ftp_upload/2336/2336fig1.jpg" alt="Figure 1"> Figure 1. DIC l'image de C. spermatides elegans. <img src="/files/ftp_upload/2336/2336fig2.jpg" alt="Figure 2"> Figure 2. Image de DIC in vitro C activée elegans spermatozoïdes.

<ol><li>Kimble, J., Crittenden, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controls+of+germline+stem+cells%2C+entry+into+meiosis%2C+and+the+Sperm%2FOocyte+decision+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Cell+and+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Controls of germline stem cells, entry into meiosis, and the Sperm/Oocyte decision in Caenorhabditis elegans.</a> Annual Review of Cell and Developmental Biology. 23, 405-433 (2007).</li>
<li>Lhernault, S. W., Roberts, T. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLhernault%2C+SW+%22Methods+in+Cell+Biology%22">Methods in Cell Biology</a>. , Vol. 48 273-301 (1995).</li>
<li>Hodgkin, J., Horvitz, H., Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nondisjunction+Mutants+of+the+Nematode+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Nondisjunction Mutants of the Nematode Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 91, 67-94 (1979).</li>
<li>Altun, Z. F., Hall, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+to+male+C.+elegans+anatomy%5BTitle%5D)+AND+%22WormAtlas%22%5BJournal%5D)">Introduction to male C. elegans anatomy.</a> WormAtlas. , ColdSpring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, New York. (2008).</li>
<li>Shakes, D., Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initiation+of+spermiogenesis+in+C.+elegans%3A+a+pharmacological+and+genetic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Initiation of spermiogenesis in C. elegans: a pharmacological and genetic analysis.</a> Dev Biol. 134, 189-200 (1989).</li>
<li>Nelson, G. A., Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicle+fusion%2C+pseudopod+extension+and+amoeboid+motility+are+induced+in+nematode+spermatids+by+the+ionophore+monensin%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Vesicle fusion, pseudopod extension and amoeboid motility are induced in nematode spermatids by the ionophore monensin.</a> Cell. 19, 457-464 (1980).</li>
<li>L'Hernault, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+and+cell+biology+of+spermatogenesis+in+the+nematode+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">The genetics and cell biology of spermatogenesis in the nematode C. elegans.</a> Molecular and Cellular Endocrinology. 306, 59-65 (2009).</li>
<li>Chatterjee, I., Richmond, A., Putiri, E., Shakes, D., Singson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Caenorhabditis+elegans+spe-38+gene+encodes+a+novel+four-pass+integral+membrane+protein+required+for+sperm+function+at+fertilization%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The Caenorhabditis elegans spe-38 gene encodes a novel four-pass integral membrane protein required for sperm function at fertilization.</a> Development. 132, 2795-2808 (2005).</li>
<li>Xu, X., Sternberg, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+C.+elegans+sperm+TRP+protein+required+for+sperm-egg+interactions+during+fertilization%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A C. elegans sperm TRP protein required for sperm-egg interactions during fertilization.</a> Cell. 114, 285-297 (2003).</li>
<li>Nelson, G., Roberts, T., Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caenorhabditis+elegans+spermatozoan+locomotion%3A+amoeboid+movement+with+almost+no+actin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Caenorhabditis elegans spermatozoan locomotion: amoeboid movement with almost no actin.</a> J Cell Biol. 92, 121-131 (1982).</li>
<li>Machaca, K., DeFelice, L. J., L'Hernault, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+chloride+channel+localizes+to+Caenorhabditis+elegans+spermatids+and+chloride+channel+blockers+induce+spermatid+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">A novel chloride channel localizes to Caenorhabditis elegans spermatids and chloride channel blockers induce spermatid differentiation.</a> Dev Biol. 176, 1-16 (1996).</li>
<li>LaMunyon, C., Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+viability+of+mutant+and+manipulated+sperm+by+artificial+insemination+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Assessing the viability of mutant and manipulated sperm by artificial insemination of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 138, 689-692 (1994).</li>
</ol>

En plus d&#39;analyser des mutants Spe, ce protocole a d&#39;autres applications importantes, comme l&#39;analyse la morphologie des spermatozoïdes avec le vieillissement. Spermatides et des spermatozoïdes isolés en utilisant ce protocole peut être utilisé dans d&#39;autres expériences en aval tels que, immunomarquage de type sauvage et le sperme mutant 8, 9, de la motilité du sperme sur des lames 10, des mesures physiologiques 9, 11, ou même l&#39;insémination artificielle 12.</sup...

<table><tbody><tr><td>Seringue tuberculine</td><td>BD Biosciences</td><td>309623</td><td>Seringue : 1 ml, aiguille :&lt;br/&gt;27G X &amp;#189; po</td></tr><tr><td>Stylo à paraffine</td><td>Zymed Laboratories, Inc.</td><td>00-8888</td><td></td></tr><tr><td>Plaques de microscope VWR VistaVision HistoBond</td><td>VWR international</td><td>16004-406</td><td>Dimensions :&lt;br/&gt;75 × 25 × 1 mm</td></tr><tr><td>Lame à couvrir</td><td>VWR international</td><td>48366045</td><td></td></tr><tr><td>Protéase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6911</td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;isolement et la in vitro activation des caenorhabditis elegans sperme

Isolation and In vitro Activation of Caenorhabditis elegans Sperm

Les mâles et les hermaphrodites sont les deux formes sexuelles naturellement trouvé dans le nématode C. elegans. Les spermatozoïdes sont produits par amiboïde deux mâles et hermaphrodites. Dans la phase antérieure de la gamétogenèse, les cellules germinales des hermaphrodites se différencier en un nombre limité de sperme - environ 300 - et sont stockés dans un petit «sac» appelé la spermathèque. Plus tard, les hermaphrodites produisent continuellement ovocytes 1. En revanche, les mâles produisent des spermatozoïdes exclusivement au long de leur vie adulte. Les mâles produisent des spermatozoïdes, si bien qu&#39;il représente&gt; 50% des cellules totales dans un deux ver adulte typique. Par conséquent, isoler les spermatozoïdes de mâles est plus facile que de celui des hermaphrodites. Seule une faible proportion d&#39;hommes sont naturellement généré spontanée due à la non-disjonction des chromosomes X 3. Traversée hermaphrodites avec des mâles ou plus commodément, l&#39;introduction de mutations pour donner naissance à Lui (incidence élevée de mâles) phénotype sont certaines des stratégies à travers lequel on peut enrichir la population masculine 3. Les mâles peuvent être facilement distingués des hermaphrodites en observant les quatre morphologie de la queue. La queue Hermaphrodite est souligné, tandis que la queue mâle est arrondi avec des structures d&#39;accouplement. Couper la queue des communiqués grand nombre de spermatides stockées à l&#39;intérieur l&#39;appareil reproducteur masculin. La dissection est réalisée sous un microscope stéréo en utilisant des aiguilles de calibre 27. Depuis spermatides ne sont pas physiquement connecté avec les autres cellules, la pression hydraulique expulse le contenu interne du corps masculin, y compris les spermatides 2. Les mâles sont directement disséqués sur une petite goutte de &#39;moyen du sperme ». Spermatides sont sensibles à l&#39;altération du pH. Ainsi, HEPES, un composé avec une bonne capacité tampon est utilisé dans les médias du sperme. Le glucose et d&#39;autres sels présents dans les médias du sperme aider à maintenir la pression osmotique pour maintenir l&#39;intégrité des spermatozoïdes. Post-méiotiques différenciation des spermatides en spermatozoïdes est appelée spermiogenèse ou l&#39;activation des spermatozoïdes. Shakes 5, 6 et Nelson précédemment montré que les spermatides rondes peuvent être induites à se différencier en spermatozoïdes en ajoutant des composés activant diverses, y compris Pronase E. Ici nous démontrons in vitro de la spermiogenèse de C. spermatides elegans utilisant Pronase E. Spermiogenèse réussie est pré-requis pour la fertilité et donc les mutants défectueux dans spermiogenèse sont stériles. Jusqu&#39;alors plusieurs mutants ont été révélé défectueux spécifiquement dans sept processus de spermiogenèse. Anomalie trouvée lors de l&#39;activation in vitro du roman de SPE (spermatogenèse défectueuse) mutants serait nous aider à découvrir d&#39;autres joueurs participant à cet événement.

Un protocole pour l&#39;isolement et l&#39;activation de spermatides de mâle<em&gt; C. elegans</em&gt; Est décrit ici. Couper l&#39;extrémité postérieure de spermatides communiqués de sexe masculin. Les spermatides peuvent être activés par l&#39;ajout de protéase.

L&#39;isolement et la In vitro Activation des Caenorhabditis elegans Sperme

Les mâles et les hermaphrodites sont les deux formes sexuelles présentes naturellement chez le nématode C. elegans. Les spermatozoïdes améboïdes sont produits à la fois par les mâles et...

L'objectif général de cette procédure est de visualiser la morphologie des spermatozoïdes. Cela est réalisé en isolant d'abord les mâles en vue de la dissection un jour à l'avance. La deuxième étape de la procédure consiste à disséquer les mâles afin de libérer les spermatozoïdes.La troisième étape de la procédure consiste à visualiser la morphologie des spermatozoïdes. La dernière étape de la procédure consiste à préparer les spermatozoïdes pour des applications ultérieures. En définitive, on peut obtenir des résultats montrant la morphologie des spermatozoïdes et leur capacité à s'activer suite à un traitement avec des activateurs in vitro.Le protocole d'isolement et d'activation des spermatozoïdes a été initialement mis au point il y a plus de 30 ans par Sam Ward, Diane Shakes et Gregory Nelson. Nous utilisons actuellement cette méthode pour caractériser des mutations qui modifient la fonction et la fertilité des spermatozoïdes chez C. elegans. L'objectif global de cette procédure est de visualiser la morphologie des spermatozoïdes de C. elegans.Cela est réalisé en isolant les mâles un jour avant la dissection afin de les maintenir en abstinence. La deuxième étape consiste à dis

isolation-and-in-vitro-activation-of-caenorhabditis-elegans-sperm

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Isolation vampirique de fluide extracellulaire d&#39;<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Les nématodes peuvent être multipliés facilement en laboratoire, en partie parce que les hermaphrodites peuvent se reproduire par autofécondation. Cependant, les croisements génétiques et autres expériences peuvent nécessiter un grand nombre de mâles. Cette vidéo décrit une méthode d’enrichissement pour C. elegans mâle.

Enrichissant pour les mâles : maintenir un stock de C. elegans mâles

Cette vidéo présente une méthode permettant d’isoler les blastomères de C. elegans des embryons précoces. Les cellules résultantes conviennent à la culture cellulaire ou aux expériences ex vivo.

C. elegans Dissection de blastomères : procédé d’extraction de la coquille d’œuf et de dissociation de cellules embryonnaires

Nous décrivons ici un protocole révisé pour la culture à grande échelle de l'embryon C. elegans cellules. Embryonnaire C. elegans cellules cultivées in vitro à l'aide de cette méthode, semblent différencier récapituler et l'expression de gènes d'une manière spécifique de la cellule. Les techniques qui nécessitent un accès direct à des cellules ou à l'isolement de types de cellules spécifiques à partir d'autres tissus peuvent être appliquées sur C. elegans cellules cultivées.

Un procédé de culture embryonnaire<em&gt; C. elegans</em&gt; Cellules

Un test d'oeuf en ver (EIW) est une méthode utile pour quantifier comportement de ponte. Altérations de la ponte peut être une réponse comportementale de l'organisme...

Mesurer les effets des bactéries sur<em&gt; C. Elegans</em&gt; Comportement aide d&#39;un test de rétention d&#39;oeufs

Le sperme doit naviguer avec succès à travers l’oviducte pour fertiliser un ovocyte. Ici, nous décrivons un dosage pour mesurer la migration des spermatozoïdes dans l’utérus hermaphrodite de C. elegans . Ce dosage peut fournir des données quantitatives sur la distribution du sperme dans l’utérus après l’accouplement, ainsi que sur la vitesse, la vitesse directionnelle et la fréquence d’inversion.

Mesure du sperme guidage et motilité dans le Caenorhabditis elegans hermaphrodite appareil de reproduction

Le nématode génétiquement traitable Caenorhabditis elegans peut être utilisé comme modèle simple et peu coûteux pour la découverte de médicaments. Décrit ici est un protocole pour identifier les thérapies anticancéreux qui inhibent la signalisation en aval des protéines RAS et EGFR.

Identification des inhibiteurs de l’EGFR et du SRA à l’aide de Caenorhabditis elegans

Nous décrivons ici un protocole détaillé pour isoler l’extrait nucléaire actif de C. elegans au stade larvaire 4 et visualiser l’activité de transcription dans un système in vitro .

Isolement de l’extrait nucléaire actif de Caenorhabditis elegans et reconstitution pour la transcription in vitro

Nous présentons ici une méthode générale pour déterminer la viabilité embryonnaire et le nombre total d’embryons produits (couvée) à l’aide de l’organisme modèle C. elegans.

Mesure de la viabilité embryonnaire et de la taille du couvain chez Caenorhabditis elegans

Ce protocole établit des méthodes pour extraire et quantifier les réponses à la phéromone sexuelle volatile chez C. elegans, fournissant des outils pour étudier la communication chimique et la trajectoire de navigation.

Extraction de phéromones sexuelles volatiles et test de chimioattraction chez Caenorhabditis elegans

Ici, nous présentons des protocoles et des outils pour visualiser le calcium pendant la fécondation et l’embryogenèse précoce à l’aide d’un rapporteur de calcium génétiquement codé exprimé dans la lignée germinale du nématode modèle C. elegans.

Visualisation in vivo des transitoires calciques pendant la fécondation et le développement précoce chez C. elegans

Apprenez à isoler et activer les spermatides de Caenorhabditis elegans par dissection de mâles et traitement protéasique. Cette méthode permet de visualiser la morphologie des spermatozoïdes pour des analyses biologiques.

L'isolement et la In vitro Activation des Caenorhabditis elegans Sperme

Explorer plus de vidéos