JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologie
0 vues • 3:57 min • September 26th, 2025
Commencer avec une bactérie pathogène cultivée sur de la gélose.
Grattez les bactéries, suspendez-les dans un tampon et ajoutez un milieu pour maintenir la viabilité bactérienne.
Versez la suspension dans une microplaque.
Ensuite, prenez des souches distinctes de larves de C. elegans , soit avec une sensibilité accrue aux agents pathogènes, soit avec une résistance accrue, et laissez-les s’installer.
Retirez le surnageant, remettez les larves en suspension dans un milieu frais et transférez-les dans la microplaque contenant les bactéries.
Scellez la microplaque avec une membrane perméable aux gaz et incuber. Les bactéries sécrètent des métabolites toxiques qui activent les voies de stress et conduisent à la mort cellulaire.
Lavez les puits pour éliminer les bactéries, ajoutez un colorant fluorescent imperméable aux cellules et incuber.
Le colorant ne pénètre que dans les cellules larvaires mortes dont les membranes sont perturbées et se lie à leurs acides nucléiques.
Laver pour enlever l’excès de colorant et imager les vers colorés par fluorescence afin d’évaluer la mortalité des souches sensibles et résistantes.
Pour effectuer un test de destruction liquide, utilisez un grattoir cellulaire pour retirer le P. aeruginosa d’une plaque SK et remettre les bactéries en suspension dans environ 5 millilitres de S Basal.
À l’aide d’un spectrophotomètre, mesurez la DO 600 de la suspension bactérienne. Préparez 24 millilitres de stock dilué de P. aeruginosa dans S Basal à une DO de 600 égale à 0,09, puis ajoutez 21 millilitres de milieu SK liquide et, à l’aide d’une pipette multicanaux, transférez 45 microlitres de bactéries et de milieux dans chaque puits d’une plaque de 384 puits. Lavez les vers de leur source dans un tube conique de 50 millilitres et laissez-les se déposer sous la force gravitationnelle.
Aspirez le surnageant à 5 millilitres, puis utilisez un total de 50 millilitres de S Basal pour remettre les vers en suspension, et répétez le lavage deux fois de plus. À l’aide d’un trieur de vers, triez environ 22 vers dans chaque puits d’une plaque de 384 puits, selon le protocole textuel, puis utilisez un film perméable aux gaz pour sceller la plaque et incubez-la à 25 degrés Celsius pendant 24 à 48 heures. Au moment souhaité, utilisez une laveuse de microplaques et S Basal pour laver la plaque à 384 puits un total de 5 fois.
L’une des erreurs les plus faciles à commettre est d’aspirer la plaque de puits 384 avant que les vers ne se soient complètement installés. Il faut de la pratique pour pouvoir voir avec précision si les vers se sont complètement installés. Après le lavage final, aspirez le surnageant jusqu’à 20 microlitres.
Ensuite, ajoutez 50 microlitres de colorant d’acide nucléique micromolaire de 0,98 par puits, pour une concentration finale de 0,7 micromolaire. Incuber la plaque à température ambiante pendant 12 à 16 heures. Après la période d’incubation souhaitée, utilisez le laveur de microplaques pour laver les plaques au moins trois fois.
Pour l’acquisition de données, utilisez un spectrophotomètre ou un microscope automatisé pour imager à la fois la lumière transmise et la fluorescence.
Cette étude examine les effets de bactéries pathogènes sur les larves de C. elegans, en se concentrant sur les différences de sensibilité et de résistance entre diverses souches. La méthodologie comprend l'évaluation de la mort cellulaire par coloration fluorescente après exposition aux toxines bactériennes.
Ce pathosystème liquide basé sur C. elegans permet une évaluation quantitative à haut débit de la mortalité de l'hôte induite par des bactéries pathogènes, soutenant ainsi la validation précoce de cibles dans la découverte d'agents antimicrobiens. En mesurant la sensibilité propre à chaque souche grâce à des lectures de mortalité fluorescentes, le test offre une détection mécanistique des risques pour les hypothèses thérapeutiques dirigées contre l'hôte ainsi que pour les voies génétiques de résistance. Le format évolutif en plaques de 384 puits permet un criblage reproductible de composés et un partage de données interfonctionnel dans les pipelines de découverte.
La méthode s'intègre aux flux de travail précoces de découverte pour la validation de cibles, procède au criblage pour l'identification d'actifs, et oriente le classement préclinique à travers des phénotypes de mortalité liés au mécanisme.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026