24 février 2011
L'exercice est capable d'induire l'apoptose dans les cellules immunitaires. Il ya des limites de mesure différents, notamment relatives à la quantité de temps requise pour isoler et traiter un échantillon de sang avant l'évaluation. Démontrée est une procédure rapide et peu invasive pour l'analyse de l'exercice apoptose induite par des lymphocytes.
Bonjour, je suis James Volta, du programme de sciences de l'exercice au sein du Département de kinésiologie, de loisirs et de sport de l'Université Western Kentucky. Nous allons vous présenter la procédure que nous avons mise au point et que nous utilisons afin de mesurer l'apoptose des lymphocytes induite par l'exercice. Examinons cela de plus près.
Un prélèvement sanguin par piqûre au doigt est effectué en utilisant la technique universelle de goutte de sang au doigt. L'extrémité du doigt est stérilisée, puis piquée. La première goutte de sang est essuyée, puis le sang est recueilli dans des tubes capillaires ou des microplaquettes.
10 microlitres de sang total ont été pipetés dans un panneau d'anticorps contenant des fluorochromes appropriés pour la cytométrie en flux, un tampon de maintien, de l'annexine V, de l'acétine D à sept amino, soit le CD4, le CD8 ou le CD19 et le CD45ra, en plus d'un tube témoin contenant uniquement des cellules. Nous avons utilisé des billes de compensation comme témoin pour faciliter la mise en place de nos expériences. L'échantillon est bien mélangé par vortex, puis laissé incuber 30 minutes à température ambiante à l'abri de la lumière. Après l'incubation, les échantillons sont centrifugés pendant 10 minutes, puis décantés d'un seul mouvement fluide.
300 microlitres de tampon de lyse des globules rouges sont ajoutés et les échantillons sont bien vortexés. Il est très important que l'échantillon et le tampon de lyse soient complètement mélangés. Pour favoriser une élimination maximale des globules rouges, vous remarquerez que votre échantillon devient trouble.
Mais après une incubation d'au moins 15 minutes à température ambiante, le mélange devient limpide lorsque les globules rouges sont lysés. Ensuite, 300 microlitres de solution saline tamponnée au phosphate sont ajoutés, jouant le rôle de solution d'arrêt pour mettre fin à la réaction de lyse. Les échantillons sont alors à nouveau centrifugés pendant 10 minutes. Notez qu'après la centrifugation, vous obtenez un culot de cellules au fond de votre tube ; versez le surnageant d'un seul mouvement fluide, puis vortexez soigneusement pour resuspendre complètement les cellules dans la solution.
Et votre échantillon est prêt à être analysé par cytométrie en flux. Nous présentons ici des graphiques représentatifs de diffusion avant et latérale, avec sélection des sous-fractions de lymphocytes, ainsi que l'identification des cellules annexine V positives au sein de la sous-population. Nous venons donc de décrire la méthodologie que nous utilisons pour déterminer l'apoptose lymphocytaire induite par l'exercice, et nous pensons qu'il existe de nombreuses autres applications pouvant être réalisées avec cette méthodologie.
Elle peut effectivement être utilisée pour examiner tout type de globule blanc, en dehors des lymphocytes et des sous-fractions lymphocytaires. Elle peut également servir à mesurer n'importe quel marqueur présent à l'extérieur de la cellule. Nous pensons donc qu'elle présente des applications plus étendues.
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Cette étude présente une procédure rapide et peu invasive pour analyser l'apoptose des lymphocytes induite par l'exercice. La recherche met en évidence l'impact de l'exercice sur l'apoptose des cellules immunitaires et aborde les limites de mesure liées au traitement des échantillons sanguins.
L'évaluation rapide de l'apoptose des lymphocytes induite par l'exercice répond à un défi majeur dans la recherche en immunologie : distinguer les véritables effets biologiques des artefacts introduits par un traitement différé des échantillons. Cette méthodologie permet une mesure plus précise de la dynamique des cellules immunitaires, soutenant ainsi la validation des cibles en physiologie de l'exercice et en immunopharmacologie. En réduisant le temps de traitement et le volume d'échantillon, elle améliore la fiabilité des données pour les études mécanistiques de la modulation immunitaire.
Cette méthode s'inscrit dans le continuum de la découverte allant de la vérification d'hypothèses à la validation de cibles, en particulier dans les programmes d'immunologie et de physiologie de l'exercice où la mort des cellules immunitaires constitue un indicateur mécanistique.