24 février 2011
L'exercice est capable d'induire l'apoptose dans les cellules immunitaires. Il ya des limites de mesure différents, notamment relatives à la quantité de temps requise pour isoler et traiter un échantillon de sang avant l'évaluation. Démontrée est une procédure rapide et peu invasive pour l'analyse de l'exercice apoptose induite par des lymphocytes.
Bonjour, je m’appelle James Volta et je travaille au programme de sciences de l’exercice du Département de kinésiologie, de loisirs et de sport de l’Université Western Kentucky. Et ce que nous allons faire, c’est vous montrer la procédure que nous avons développée et la procédure que nous utilisons pour mesurer l’exercice en dues, lymphocytes, apoptose. Alors allons y jeter un coup d’œil.
Un échantillon de sang prélevé par piqûre au doigt est obtenu à l’aide des précautions universelles : le collyre. Le bout du doigt est stérilisé, puis perforé. La première goutte de sang est essuyée, puis le sang est aspiré dans des tubes capillaires ou des micro-lits.
10 microlitres de sang total ont été pipetés dans un panel d’anticorps contenant une cytométrie en flux, un tampon permanent approprié fluorochromes, y compris l’annexe et V sept amino-actine D, soit CD quatre, CD huit, ou CD 19 et CD 45 ra en plus d’un tube de cellules uniquement, nous avons utilisé des billes de compensation comme contrôle pour aider à mettre en place nos expériences. L’échantillon est soigneusement mélangé dans un vortex, puis laissé incuber à température ambiante dans l’obscurité pendant 30 minutes. Après l’incubation, les échantillons sont centrifugés pendant 10 minutes, puis les échantillons sont décantés en un seul mouvement fluide.
300 microlitres de tampon de lyse des globules rouges sont ajoutés et les échantillons sont soigneusement vortexés. Il est très important que l’échantillon et le tampon de lyse soient soigneusement mélangés. Pour faciliter l’élimination maximale des globules rouges, vous remarquerez que votre échantillon commence à être trouble.
Mais après au moins 15 minutes d’incubation à température ambiante, il disparaîtra car les globules rouges sont Ls, 300 microlitres de solution saline tamponnée au phosphate sont ajoutés agissant comme une solution d’arrêt pour terminer la réaction de lyse. Et les échantillons sont à nouveau centrifugés pendant 10 minutes. Notez qu’après la procédure de centrifusion, vous aurez une pelle de cellules au fond de votre tube décantée en un mouvement fluide, tourbillonnant complètement pour remettre en suspension les cellules et la solution.
Et votre échantillon est prêt à être analysé par cytométrie en flux. Ici, nous montrons des diagrammes de dispersion représentatifs à l’intérieur des sous-fractions de lymphocytes, et l’identification des cellules anexiques et V positives dans le sous-ensemble. Nous venons donc de décrire la méthodologie que nous utilisons pour déterminer la ptose lymphocytaire induite par l’exercice, et nous pensons qu’il y a beaucoup d’autres applications qui peuvent être utilisées avec cette méthodologie.
Il peut vraiment être utilisé pour examiner n’importe quel type de globule blanc en plus des lymphocytes et des lymphocytes, de la sous-fraction. Et il peut également être utilisé pour mesurer n’importe quel marqueur qui se trouve à l’extérieur de la cellule. Nous pensons donc vraiment que cela a une plus grande application.
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Cette étude présente une procédure rapide et peu invasive pour analyser l'apoptose des lymphocytes induite par l'exercice. La recherche met en évidence l'impact de l'exercice sur l'apoptose des cellules immunitaires et aborde les limites de mesure liées au traitement des échantillons sanguins.
L'évaluation rapide de l'apoptose des lymphocytes induite par l'exercice répond à un défi majeur dans la recherche en immunologie : distinguer les véritables effets biologiques des artefacts introduits par un traitement différé des échantillons. Cette méthodologie permet une mesure plus précise de la dynamique des cellules immunitaires, soutenant ainsi la validation des cibles en physiologie de l'exercice et en immunopharmacologie. En réduisant le temps de traitement et le volume d'échantillon, elle améliore la fiabilité des données pour les études mécanistiques de la modulation immunitaire.
Cette méthode s'inscrit dans le continuum de la découverte allant de la vérification d'hypothèses à la validation de cibles, en particulier dans les programmes d'immunologie et de physiologie de l'exercice où la mort des cellules immunitaires constitue un indicateur mécanistique.