Name: Assay immunoprécipitation de la chromatine des gènes spécifiques de tissus en utilisant des embryons de souris en début de (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-29T16:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 2 s
Description: Apprenez l'immunoprécipitation de la chromatine sur des embryons de souris E8.5 pour étudier l'activation des gènes spécifiques de tissus. Cette méthode permet d'analyser les interactions protéine-ADN régulatrices.

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Ce travail a été soutenu par le NIH R01 GM56244 à Ani, qui inclut les fonds attribués par l&#39;American Recovery and Reinvestment Act de 2009, et par le NIH R01 GM87130 d&#39;Jarp

1. L'isolement des embryons Remarque: Toutes les opérations impliquant des souris doivent être effectués en conformité avec les soins des animaux et des politiques appropriées d'utilisation et des protocoles <ol><li> Vérifier la présence d'une fiche d'accouplement chez la souris femelle le matin après l'accouplement et de séparer les femelles fécondées par des mâles haras en les plaçant dans une cage différente. Midi de la journée que la fiche d'accouplement est observé est considéré comme jour embryonnaire 0,5 (E 0,5) de développement. </li><li> À E8.5, (ou le stade désiré, si différent), le sacrifice de la souris en utilisant un protocole approuvé. </li><li> Mouiller le ventre de l'animal euthanasié à l'éthanol 70% et d'ouvrir la cavité abdominale. Les sites d'implantation indiquant la présence d'embryons en développement sont considérés comme un «perles sur un fil" arrangement sur toute la longueur de chaque corne utérine (figure 1A). Avec des ciseaux, enlever les deux cornes utérines, couper chaque site d'implantation individuelle de se séparer (figure 1B) et les placer dans un plat de 100 mm de Pétri contenant température ambiante (TA) moyen de dissection (DMEM, 10% de sérum de veau fœtal, HEPES 20 mM pH 7,4 , 60 pg / ml de pénicilline, la streptomycine 2 mM). </li><li> En utilisant une pince, retirer chaque embryon et les membranes entourant le tissu utérin (figure 1C) et les placer dans un milieu de dissection douce. </li><li> Isoler embryons individuels sous un microscope de dissection à l'aide des pinces. A ce stade de développement, les embryons sont entourés par le pariétal du sac vitellin, qui contacte le tissu deciduum, le viscéral du sac vitellin et de l'amnios. L'amnios est une membrane transparente qui est en contact direct avec l'embryon. Le sac vitellin viscéral se trouve entre l'amnios et le feuillet pariétal jaune et se distingue facilement dans E8.5 E9.5-embryons par la présence de vaisseaux sanguins importants qui nourrissent l'embryon. Retirez chaque embryon à partir de ses membranes entourant et le transfert individuellement dans une nouvelle plaque contenant les médias de dissection pour enlever l'excès de sang. Le stade de développement peut varier d'un embryon à l'embryon et entre les portées; représentant E8.5 embryons et un embryon de E9.5 représentatifs sont présentés dans la figure 1D. </li><li> Transfert chaque embryon d'un tube eppendorf de 1,5 ml contenant 200 ul de médias dissection (décrit dans l'étape 4 ci-dessus). </li></ol> 2. Homogénéisation de l'embryon isolé <ol><li> Ajouter 20 unités de collagénase de type II dans un volume de 200 ul (dilué dans du phosphate 1X Dubbecco du sérum physiologique tamponné; DPBS) à chaque tube Eppendorf. </li><li> Agitez doucement échantillons dans un shaker à 37 ° C à 100 rpm pendant 20 min. </li><li> Resuspendre bien par pipetage pour perturber des amas de cellules. </li><li> Appliquer la suspension de cellules sur le dessus de la crépine de cellules stériles (maillage de 40 um) placée sur un tube eppendorf de 1,5 ml. </li><li> Appliquer immédiatement 600 pl de la température ambiante 1X DPBS sur le dessus de la crépine de cellule pour compléter la séparation. Jeter le filtre. </li><li> Centrifuger les échantillons à 4 ° C à 4000 xg pendant 5 min. </li><li> Jeter le surnageant. </li><li> Reprendre le culot dans 1 ml de DPBS 1X RT. </li><li> Centrifuger les échantillons à 4000 xg pendant 1 min à température ambiante. </li><li> Jeter le surnageant. </li><li> Reprendre le culot dans 200 pl de la dissection des médias RT. </li><li> Compter les cellules embryonnaires. Il ya une moyenne 3-5 x 10 6 cells/E8.5 embryon. </li></ol> 3. Croix-link chromatine <ol><li> Ajouter 5,6 l de formaldéhyde à 37% des 200 échantillons ul pour une concentration finale de 1% de formaldehyde. </li><li> Incuber les échantillons pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Centrifuger les échantillons à 4 ° C à 4000 xg pendant 3 min. </li><li> Jeter le surnageant. </li><li> Resuspendre les cellules de froid 1X DPBS contenant 80 ul / ml cocktail inhibiteur de protéase (PIC). </li><li> Centrifuger les échantillons à 4 ° C à 4000 xg pendant 3 min. </li><li> Jeter le surnageant. À cette étape, les échantillons peuvent être congelés à -80 ° C. Les prélèvements congelés, réticulé sont stables pendant plusieurs mois. </li></ol> 4. Sonication <ol><li> Reprendre le culot cellulaire dans 100 ul de tampon SDS RT lyse (50 mM Tris-HCl (pH 8,1), EDTA 10 mM et SDS à 1% avec PIC fraîchement ajoutée à 1 ul PIC/800 volume total ul). Lorsque resuspendues, ajouter un supplément de 100 ul de tampon RT lyse SDS afin de promouvoir la remise en suspension. Mélangez bien à la pipette et de l'inversion. </li><li> Incuber la suspension cellulaire sur la glace pendant 10 min. </li><li> Soniquer cellules lysées à l'ADN de cisaillement entre 200 et 500 paires de bases en utilisant une Bioruptor Diagenode ™ UCD200 (5 min x 8 fois: réglage de l'amplitude de 30 sec sec on/30 rabais sur élevée (320 watts) de puissance). Les échantillons doivent être entourés par un coulis de glace. Ne pas laisser les échantillons à chaud au-dessus de 4 ° C ou à congeler. Il ya de nombreux types de sonicateurs disponibles. Conditions sonication devrait être optimisé pour chaque sonicateur d'entraîner en cisaillement de l'ADN réticulé à une longueur d'environ 500 pb. </li><li> Centrifuger les échantillons soniqué à 4 ° C à 14000 xg pendant 10 min. </li><li> Transfert le surnageant dans un nouveau tube Eppendorf pré-refroidi sur la glace. </li><li> Divisez l'échantillon soniqué dans un maximum de 5 aliquotes. Nous avons déterminé empiriquement que l'on E8.5 embryon peut être divisé en 5 aliquotes. Des échantillons plus petits ou plus grands peuvent être redimensionnées en conséquence. À cette étape, l'échantillon peut être conservé à -80 ° C jusqu'à utilisation ultérieure. </li><li> Réserve une aliquote de l'utiliser comme entrée et conserver à -20 ° C jusqu'à l'étape 6 lorsque la croix-liens seront inversés. Diluer les aliquotes d'autres de 10 fois en tampon de dilution ChIP (16,7 mM Tris-HCl (pH 8,1), 1,2 mM EDTA, 1,1% de Triton X-100, 167 mM de NaCl et 0,01% SDS) contenant PIC fraîchement ajoutée à 1 μl/800 pi de tampon. </li></ol> 5. Pré-compensation et immunoprécipitation <ol><li> Pré-claire le surnageant dilué avec 75 ul de saumon-Sperm ADN / protéines A ou G-50 agarose coulis% à 4 ° C, avec rotation, pendant 1 heure. Utilisez soit la protéine A ou de perles protéines G devrait être déterminée par l'anticorps à utiliser pour la puce. Par exemple, billes de protéine A sont recommandés pour les anticorps de lapin, tandis que la protéine G perles sont recommandés pour les anticorps IgG de souris de chèvre ou une anticorps. Pour plus d'informations, voir les recommandations faites par le fabricant de billes. </li><li> Centrifuger à 4 ° C à 2500 xg pendant 1 min. </li><li> Transférer le surnageant dans un nouveau pré-refroidi tube Eppendorf. </li><li> Ajouter anticorps (4 mg / échantillon) à l'aliquote de pré-effacé et incuber une nuit à 4 ° C avec rotation. </li></ol> 6. Le lavage des complexes protéines-chromatine perles <ol><li> Ajouter 60 ul de sperme de saumon ADN / protéine A ou G agarose coulis dans chaque flacon et incuber à 4 ° C avec rotation pendant 1 heure. Utiliser le même type de billes utilisées pour la pré-compensation à l'étape 3 ci-dessus. </li><li> Centrifuger à 4 ° C à 1000 xg pendant 1 min. </li><li> Retirer délicatement le surnageant et le jeter. Gardez le complexe ADN-protéines-billes sur la glace. </li><li> Resuspendre et laver le culot comme indiqué ci-dessous avec une tampons de lavage, 2, 3 et 4. Lavez tampons 1-3 doivent être réfrigérés à 4 ° C et lavages avec ces tampons doivent être effectuées à 4 ° C. Tampon de lavage 4 devrait être à la température ambiante et se lave avec ce tampon devrait être effectuée à température ambiante. Chaque lavage est de 5 minutes avec une rotation à la température appropriée. Après chaque lavage, centrifuger à 4 ° C (température ambiante pendant tampon de lavage 4 lavages) à 1000 xg pendant 1 min, puis aspirer délicatement ou retirer le surnageant. </li></ol> Tampon 1: Faible tampon de lavage du sel (20 mM Tris-HCl (pH 8,1), 2 mM EDTA, 1% de Triton X-100, 150 mM de NaCl et 0,1% de SDS), 1 ml x 2 lavages. Tampon 2: High tampon de lavage du sel (20 mM Tris-HCl (pH 8,1), 2 mM EDTA, 1% de Triton X-100, 500 mM de NaCl et 0,1% de SDS), 1 ml x 2 lavages. Tampon 3: tampon LiCl laver le sel (10 mM Tris-HCl (pH 8,1), 1 mM EDTA, 1% IGEPAL-CA630, 0,25 M de LiCl et de l'acide désoxycholique 1% (sel de sodium)), 1 ml x 1 lavage. Tampon 4: tampon TE (10 mM Tris-HCl (pH 8,1), EDTA 1 mM), 1 ml x 2 lavages. 7. Élution du complexe chromatine-anticorps <ol><li> Reprendre le lavage de la chromatine des protéines complexes billes dans 250 ul de tampon d'élution fraîchement préparés (1% SDS, 0,1 M NaHCO 3). Vigoureusement l'échantillon de vortex pendant 5 secondes, puis incuber à température ambiante pendant 15 min avec rotation. </li><li> Centrifuger à 2500 xg pendant 1 min à température ambiante et le transfert de l'éluat dans un tube eppendorf de nouvelles. </li><li> Répétez les étapes 1 et 2 et de combiner les éluats dans le même tube eppendorf. Les éluats doivent être conservés à température ambiante. A l'issue de cette étape, les éluats peuvent être conservés à -20 ° C jusqu'à utilisation ultérieure. </li></ol> 8. Inverse de la Croix-lien et récupérer l'ADN <ol><li> Ajouter 20 ul NaCl 5 M pour 500 éluat ul (40 ug / ml pour le contrôle d'entrée). </li><li> Chauffer les éluats à 65 ° C dans un bain d'eau pendant 4 heures à la nuit. </li><li> 10 ul de chaque échantillon (y compris le contrôle d'entrée) peut être exécuté sur un gel agarose 2% à côté de marqueurs de taille allant de 0,1 à 1 kpb de vérifier la taille des fragments d'ADN. L'ADN apparaîtra comme un frottis et non une bande nette. Le reste des échantillons peut être laissé à 65 ° C tandis que le gel est en marche. </li><li> Récupérer l'ADN de chaque échantillon en utilisant un kit QIAquick Gel Extraction (Qiagen). Ajouter 600 ul de tampon QG (fourni dans le kit) pour optimiser l'ADN d'adsorption avec la membrane de silice dans une colonne spin QIAquick et 200 pi d'isopropanol dans un échantillon de 500 pl. Notez que le tampon QG contient un indicateur de pH permettant de déterminer facilement le pH de l'échantillon. Si la couleur de l'échantillon vire du jaune au violet (pH&gt; 7,5) après le mélange, ajouter 10 ul de 3 M NaAcetate (pH 5,2) à l'échantillon et mélanger. Cela réduit le pH du mélange pour maximiser liaison à l'ADN aux perles dans la colonne. </li><li> Avant de charger la colonne, vérifier le mélange afin de déterminer si tout précipité SDS est présent. Si SDS précipitations a eu lieu, l'échantillon doit être réchauffé dans un42 ° C jusqu'à ce bain d'eau, le précipité disparaît. </li><li> Charge 700 ul du mélange dans la colonne de centrifugation QIAquick (colonne violette dans le kit) et centrifuger à RT à 14000 xg pendant 1 min. Jeter le débit à travers de la colonne avant de procéder et répétez cette étape avec le reste de l'échantillon. </li><li> Ajouter 500 ul de tampon QG pour laver la colonne. Centrifuger à 14000 xg RT à 2 min. Jeter le débit à travers de la colonne avant de continuer. </li><li> Laver la colonne avec 700 ul d'un tampon de lavage PE (fourni dans le kit) à laquelle l'éthanol a été ajoutée selon les instructions du fabricant. Centrifuger à 14000 xg RT à 1 min. Jeter le débit à travers de la colonne avant de continuer. </li><li> Répéter l'étape de centrifugation pour éliminer complètement le reste de la mémoire tampon PE de la colonne. Jeter le débit à travers le tube de collecte. </li><li> L'ADN élue de la colonne dans un nouveau tube Eppendorf en ajoutant 60 ul de tampon EB (tampon d'élution fourni dans le kit). </li><li> Centrifuger à température ambiante à 14 000 xg pendant 1 min. L'ADN élue peut être conservé à -20 ° C jusqu'à ce que la détection. A 260 lectures de la matière récupérée en général indiquent des concentrations de 90-120 ng / ul, pour une récupération totale de ~ 6-7 ug par aliquote. Cependant, le ratio de 260/280 Un de ces échantillons est typiquement&gt; 1,8, ce qui suggère que l'ARN est présent dans l'échantillon. Ainsi, le montant exact de l'ADN récupéré peut être inférieur. </li></ol> 9. Analyse d'ADN récupéré <ol><li> SDS peut interférer avec l'activité du PCR Taq polymérase. SDD devrait être complètement éliminé avant d'effectuer la PCR. Incuber l'ADN sur la glace pour précipiter tout résidu de SDS et centrifuger à 4 ° C à 14000 xg pendant 1 min. Transférer le surnageant dans une nouvelle étape eppendorf tube.This est fortement recommandée. </li><li> Les éluats d'ADN peuvent être détectés soit par PCR conventionnelle ou par quantitative PCR en temps réel (Q-PCR) avec des amorces spécifiques pour chaque séquence à analyser. Ul 5-10 éluat ADN total peut être utilisé pour une PCR ou Q-PCR réaction. PCR avec le contrôle d'entrée peut être réalisé avec une dilution de 50 à 10 fois de l'ADN par rapport à la quantité d'autres échantillons. PCR et Q-PCR conditions varient, cependant, la quantité limitée de matériel de départ nécessite d'autres cycles de PCR. Pour la PCR de détection classique, nous recommandons de commencer avec 40 cycles et en ajustant au besoin. </li></ol> 10. Les résultats représentatifs Nous avons utilisé ce protocole pour effectuer puce de deux E8.5 E9.5 et d'embryons (Figure 2). Les résultats démontrent que la myogénine est présent sur le promoteur myogénine dans E8.5 E9.5 et d'embryons. ChIP ADN purifiés ont été analysés par PCR conventionnelle (figure 2A) et par quantitative PCR en temps réel (figure 2B). En revanche, il n'y avait aucune indication de myogénine liant au promoteur myogénine dans le sac vitellin, où myogénine n'est pas exprimé. L'interféron γ-(IFN), le promoteur qui contient des séquences correspondant du site myogénine contraignant, a été utilisé comme un contrôle de la séquence négative. Comme prévu, myogénine n'était pas lié au promoteur IFN dans aucun des échantillons de tissus testés. En E8.5 et 9,5 embryons, myogénine est spécifiquement exprimé dans les somites (figure 3; 6,10), qui sont les précurseurs du muscle squelettique. Ainsi, les résultats indiquent que la myogénine est lié au promoteur myogénine dans les somites sur E8.5 E9.5 et. <img src="/files/ftp_upload/2677/2677fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. E8.5 dissection embryon. (A) Isolé corne utérine (panneau supérieur; plus fort grossissement indiqué dans panneau inférieur). (B) corne utérine coupé avec des ciseaux pour séparer les différents sites d'implantation des embryons contenant individuel. (C) Les embryons dépassant du tissu utérin pendant la dissection. Les flèches marquent embryons encore couverts par les tissus extra-embryonnaires. (D) Deux E8.5 embryons de la même portée. L'embryon sur la gauche n'a pas commencé le processus de transformation. L'embryon sur la droite est en train de tourner. Extrême droite - représentant l'embryon E9.5. <img src="/files/ftp_upload/2677/2677fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Dosage de ChIP démontrant myogénine liant au promoteur myogénine dans E8.5 E9.5 et d'embryons. (Haut) L'analyse PCR conventionnelle de 5 ul d'ADN purifié à partir d'expériences puce en utilisant un anticorps myogénine ou non IgG spécifiques a été réalisée avec des amorces qui amplifient une partie du promoteur myogénine -79 à 69 par rapport au site que le début de la transcription contient un site myogénine contraignante situé à -12 ou amorces qui amplifient une partie du promoteur IFN qui contient une séquence correspondant au site myogénine contraignante situé ~ 1075 pb en amont du site d'initiation de la transcription. Les séquences des amorces utilisées étaient 5'IFN-GCT GAC TCA AGA CCC CGA GGC-3 'et 5'-TGA GGA TGG AGG GGC AGG CC-3'. (Bas) quantitative en temps réel l'analyse par PCR des mêmes échantillons utilisés dans (A). L'données sont tracées en% de l'entrée + / - écart-type. <img src="/files/ftp_upload/2677/2677fig3.jpg" alt="Figure 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3"> Figure 3. Myogenin est spécifiquement exprimé dans les somites et les embryons des E8.5 E9.5. Monter toute l'hybridation in situ de la myogénine montre expression de l'ARNm spécifique dans les somites. Barre de taille dans l'image E8.5 - 200 um. Barre de taille dans l'image E9.5 - 500 um.

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<li>Chakraborty, T., Brennan, T. J., Li, L., Edmondson, D., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inefficient+homooligomerization+contributes+to+the+dependence+of+myogenin+on+E2A+products+for+efficient+DNA+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Inefficient homooligomerization contributes to the dependence of myogenin on E2A products for efficient DNA binding.</a> Mol Cell Biol. 11, 3633-3641 (1991).</li>
<li>Cserjesi, P., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myogenin+induces+the+myocyte-specific+enhancer+binding+factor+MEF-2+independently+of+other+muscle-specific+gene+products%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Myogenin induces the myocyte-specific enhancer binding factor MEF-2 independently of other muscle-specific gene products.</a> Mol Cell Biol. 11, 4854-4862 (1991).</li>
<li>Braun, T., Arnold, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+four+human+muscle+regulatory+helix-loop-helix+proteins+Myf3-Myf6+exhibit+similar+hetero-dimerization+and+DNA+binding+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">The four human muscle regulatory helix-loop-helix proteins Myf3-Myf6 exhibit similar hetero-dimerization and DNA binding properties.</a> Nucleic Acids Res. 19, 5645-5651 (1991).</li>
<li>Serna, dela, L, I., Ohkawa, Y., Berkes, C. A., Bergstrom, D. A., Dacwag, C. S., Tapscott, S. J., Imbalzano, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MyoD+targets+chromatin+remodeling+complexes+to+the+myogenin+locus+prior+to+forming+a+stable+DNA-bound+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">MyoD targets chromatin remodeling complexes to the myogenin locus prior to forming a stable DNA-bound complex.</a> Mol Cell Biol. 25, 3997-4009 (2005).</li>
<li>Blais, A., Tsikitis, M., Acosta-Alvear, D., Sharan, R., Kluger, Y., Dynlacht, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+initial+blueprint+for+myogenic+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">An initial blueprint for myogenic differentiation.</a> Genes Dev. 19, 553-569 (2005).</li>
<li>Cao, Y., Kumar, R. M., Penn, B. H., Berkes, C. A., Kooperberg, C., Boyer, L. A., Young, R. A., Tapscott, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+and+gene-specific+analyses+show+distinct+roles+for+Myod+and+Myog+at+a+common+set+of+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Global and gene-specific analyses show distinct roles for Myod and Myog at a common set of promoters.</a> EMBO J. 25, 502-511 (2006).</li>
<li>Ohkawa, Y., Yoshimura, S., Higashi, C., Marfella, C. G., Dacwag, C. S., Tachibana, T., Imbalzano, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myogenin+and+the+SWI%2FSNF+ATPase+Brg1+maintain+myogenic+gene+expression+at+different+stages+of+skeletal+myogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Myogenin and the SWI/SNF ATPase Brg1 maintain myogenic gene expression at different stages of skeletal myogenesis.</a> J Biol Chem. 282, 6564-6570 (2007).</li>
<li>Davie, J. K., Cho, J. H., Meadows, E., Flynn, J. M., Knapp, J. R., Klein, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target+gene+selectivity+of+the+myogenic+basic+helix-loop-helix+transcription+factor+myogenin+in+embryonic+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Target gene selectivity of the myogenic basic helix-loop-helix transcription factor myogenin in embryonic muscle.</a> Dev Biol. 311, 650-664 (2007).</li>
<li>Metivier, R., Penot, G., Hubner, M. R., Reid, G., Brand, H., Kos, M., Gannon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrogen+receptor-alpha+directs+ordered%2C+cyclical%2C+and+combinatorial+recruitment+of+cofactors+on+a+natural+target+promoter%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Estrogen receptor-alpha directs ordered, cyclical, and combinatorial recruitment of cofactors on a natural target promoter.</a> Cell. 115, 751-763 (2003).</li>
<li>Ausubel, F. M., Brent, R., Kingston, R. E., Moore, D. D., Seidman, J. G., Smith, J. A., Struhl, K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAusubel%2C+FM+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22">Current Protocols in Molecular Biology</a>. , John Wiley & Sons, Inc. (2010).</li>
</ol>

Expériences sur les animaux ont été effectuées en conformité avec les directives et règlements établis par l&#39;Université du Massachusetts Medical IACUC école.

Dans le protocole décrit ChIP, nous montrons que le régulateur de myogénine myogénique est associé avec le promoteur myogénine dans les tissus musculaires squelettiques précurseur présent dans seule E8.5 E9.5 et d&#39;embryons. Des études antérieures ont largement caractérisé myogénine liant à la boîte E contenant des séquences, à commencer par la première des expériences in vitro de retard sur gel en utilisant in vitro, traduits ou l&#39;ADN des bactéries produites myogénine et radiomarqués c...

<table><tbody><tr><td>Kit d'essai ChIP</td><td>Upstate, Millipore</td><td>17-295</td><td></td></tr><tr><td>Collagénase de type II</td><td>Invitrogen</td><td>17101015</td><td>Dilution par du PBS 1 x</td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;milieu de culture de Dulbecco (DMEM) </td><td>GIBCO, par Life Technologies</td><td>12100-061</td><td>Teneur élevée en glucose</td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;soluté tamponné au phosphate 1X (DPBS)</td><td>GIBCO, par Life Technologies</td><td>14190-144</td><td>Sans chlorure de calcium, sans chlorure de magnésium</td></tr><tr><td>sérum de veau fœtal (SVF)</td><td>Mediatech, Inc.</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>Kit d'extraction de gel</td><td>QIAquick</td><td>28704</td><td>kit de 50 réactions</td></tr><tr><td>Solution mère de pénicilline/streptomycine</td><td>GIBCO, par Life Technologies</td><td></td><td>5000 &amp;#x03BC;concentration en g/ml</td></tr><tr><td>Cocktail d'inhibiteurs de protéases</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8340</td><td></td></tr><tr><td>ADN de sperme de saumon /agarose Protéine A</td><td>EMD Millipore</td><td>16-157</td><td></td></tr><tr><td>anticorps anti-myogénine</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>sc-576</td><td></td></tr><tr><td>IgG de lapin normal</td><td>EMD Millipore</td><td>12-370</td><td></td></tr><tr><td>Platinum PCR Supermix</td><td>Invitrogen</td><td>11306-016</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq Q-PCR master mix</td><td>Promega Corp.</td><td>A6001</td><td></td></tr></tbody></table>

assay immunoprécipitation de la chromatine des gènes spécifiques de tissus en utilisant des embryons de souris en début de

Chromatin Immunoprecipitation Assay for Tissue-specific Genes using Early-stage Mouse Embryos

Immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) est un outil puissant pour identifier les protéines: les interactions chromatine qui se produisent dans le contexte de cellules vivantes 1-3. Cette technique a été largement exploitée dans les cellules de culture de tissus, et dans une moindre mesure, dans les tissus primaires. L&#39;application de ChIP pour les tissus de rongeurs embryonnaire, surtout en période précoce du développement, est compliquée par la quantité limitée de tissu et de l&#39;hétérogénéité des cellules et de tissus dans l&#39;embryon. Nous présentons ici une méthode pour effectuer une puce en utilisant jours dissocié embryonnaire 8.5 (E8.5) embryon. Chromatine cisaillé à partir d&#39;un seul embryon E8.5 peut être divisé en jusqu&#39;à cinq aliquotes, qui permet au matériel de l&#39;enquêteur suffisants pour les contrôles et des enquêtes de protéines spécifiques: les interactions chromatine. Nous avons utilisé cette technique pour commencer à documenter des protéines: les interactions chromatine lors de la spécification du tissu-spécifique des programmes d&#39;expression génique. L&#39;hétérogénéité des types de cellules dans un embryon limite nécessairement l&#39;application de cette technique car le résultat est la détection de protéines: les interactions chromatine sans distinguer selon que les interactions se produisent dans tous, un sous-ensemble, ou un seul type cellulaire (s). Cependant, l&#39;examen du tissu-spécifique des gènes pendant ou après l&#39;apparition de tissu-spécifique l&#39;expression des gènes est possible pour deux raisons. Tout d&#39;abord, immunoprécipitation de facteurs tissulaires spécifiques des isolats nécessairement chromatine du type cellulaire où le facteur est exprimé. Deuxièmement, immunoprécipitation de coactivateurs et les histones contenant modifications post-traductionnelles qui sont associés à l&#39;activation des gènes ne devraient être disponibles sur les gènes et les séquences régulatrices de gènes dans le type cellulaire où le gène est ou a été activé. La technique devrait être applicable à l&#39;étude de la plupart des tissus spécifiques événements d&#39;activation des gènes. Dans l&#39;exemple décrit ci-dessous, nous avons utilisé E8.5 et E9.5 embryons de souris pour examiner les facteurs liant à un promoteur du gène spécifique du muscle squelettique. Somites, qui sont les précurseurs de tissus à partir de laquelle les muscles squelettiques du tronc et des branches vont se former, sont présents à E8.5-9.5 4,5. Myogenin est un facteur de régulation nécessaire à la différenciation du muscle squelettique 6-9. Les données démontrent que la myogénine est associée à son propre promoteur de E8.5 E9.5 et d&#39;embryons. Parce que la myogénine est exprimé uniquement dans les somites, à ce stade de développement 6,10, les données indiquent que les interactions avec les myogénine son propre promoteur sont déjà produites dans les cellules précurseurs des muscles squelettiques dans E8.5 embryons.

Nous démontrons une immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) méthode pour identifier les interactions de facteurs au tissu-spécifique des gènes pendant ou après l&#39;apparition de tissu-spécifique l&#39;expression des gènes dans les tissus embryonnaires de souris. Ce protocole devrait être largement applicable pour l&#39;étude de l&#39;activation de gènes spécifiques de tissus comme il se produit pendant le développement embryonnaire normal.

Assay immunoprécipitation de la chromatine des gènes spécifiques de tissus en utilisant des embryons de souris en début de

L'immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) est un outil puissant pour identifier les interactions protéine-chromatine qui se produisent dans le contexte de cellules vivantes 1-3. Ce ...

L'objectif général de cette procédure est d'isoler des embryons de souris E 8,5 pour une utilisation dans des tests de chromatine, d'immunoprécipitation ou sur puce. Cela est réalisé en isolant d'abord les embryons de souris et en préparant des suspensions de cellules uniques. La deuxième étape de la procédure consiste à réticuler chimiquement les protéines liées à l'ADN avec l'ADN génomique, suivie d'une sonication pour fragmenter l'ADN.La troisième étape de la procédure consiste à immunoprécipiter les complexes protéine-chromatine et à isoler l'ADN purifié. La dernière étape de la procédure consiste à analyser l'ADN immunoprécipité purifié par PCR conventionnelle ou par PCR quantitative en temps réel. En définitive, on peut obtenir des résultats montrant les interactions des protéines avec les séquences régulatrices de gènes spécifiques de la différenciation au cours de l'initiation du programme de différenciation dans les tissus et organes en développement.Ce semestre peut aider à répondre à de bonnes questions concernant l'initiation du programme de différenciation durant l'embryogenèse, grâce à l'identification de facteurs régulateurs interagissant avec les séquences régulatri

chromatin-immunoprecipitation-assay-for-tissue-specific-genes-using

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La différenciation de l'ESC coïncide avec un type de cellule des changements spécifiques dans la structure et la composition de la chromatine. La détection de ces changements fournit de précieuses indications sur les mécanismes qui définissent stemcellness et la différenciation cellulaire. Immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) représente une méthode utile pour disséquer les mécanismes moléculaires qui sous-tendent la différenciation des cellules souches.

Immunoprécipitation de la chromatine des cellules souches embryonnaires humaines

La question de savoir comment les organismes de réglementation et des états de la chromatine chromatine affecte le génome in vivo est essentielle à notre compréhension de la façon dont les premières décisions du destin cellulaire sont faites dans l'embryon en développement. ChIP-Seq-la méthode la plus populaire pour étudier les caractéristiques de la chromatine au niveau-est globale définie ici pour les embryons de xénope.

Snapshot échelle du génome des régulateurs de la chromatine et les États dans<em&gt; Xenopus</em&gt; Embryons par Chip-Seq

Nous démontrons une méthode pour greffer des cellules cultivées dans des sites définis d’embryons de souris précoces afin de déterminer leur potentiel in vivo. Nous introduisons également une méthode d’électroporation optimisée qui utilise des capillaires en verre de diamètre connu, permettant l’administration précise d’ADN exogène dans quelques cellules des embryons.

Méthodes de transfert localisé précisément de cellules ou de l&#39;ADN dans des embryons de souris après l&#39;implantation précoce

Ce protocole présente un procédé pour effectuer, une seule cellule dans l'analyse quantitative in situ de l'expression des protéines à l'étude de la spécification lignée dans des embryons de pré-implantation de la souris. Les procédures nécessaires pour la collecte des blastocystes, entiers montage détection par immunofluorescence de protéines, l'imagerie d'échantillons sur un microscope confocal, et la segmentation nucléaire et l'analyse d'images sont décrites.

Analyse quantitative de l&#39;expression des protéines pour l&#39;étude de Lineage Spécification dans Souris préimplantatoire d&#39;embryons

L'objectif de ce protocole est de décrire un déficitaire et d'acquérir de-méthode de la fonction qui est applicable pour identifier néogénine comme un récepteur spécifique de stade qui mène à trophectoderme et la différenciation cellulaire interne de masse dans des embryons de souris préimplantatoire.

Déficitaires et approche Gain de fonction d&#39;enquêter sur les cellules précoce destin déterminants dans les embryons de souris préimplantatoire

Ce travail décrit un protocole pour l'immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) en utilisant une ligne de cellules T mûres de souris. Ce protocole est approprié pour étudier la répartition des marques d'histones spécifiques sur des sites promoteurs spécifiques ou génométriques.

Immunoprécipitation à la chromatine (ChIP) dans les lignes de cellules T de souris

Nous décrivons ici une immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) et le protocole de préparation de bibliothèque de ChIP-seq pour générer des profils épigénomique global d’échantillons embryonnaires de poulet de faible abondance.

Chromatine protocole d’immunoprécipitation (puce) pour les échantillons embryonnaires de faible abondance

Nous décrivons ici le protocole standard pour la détection de l’activité β-galactosidase dans des embryons de souris tout au début et à la méthode paraffine sectionnement et contre-coloration. Il s’agit d’une procédure simple et rapide pour contrôler l’expression des gènes au cours du développement qui peut également être appliquée à des coupes de tissus, organes ou cellules en culture.

Suivi de l’Expression génique par la détection d’activité β-galactosidase dans des embryons de souris entière

Nous décrivons une technique de profilage des microARN chez les premiers embryons de souris. Ce protocole surmonte le défi de l’entrée de cellules faibles et de l’enrichissement de l’ARN. Ce test peut être utilisé pour analyser les changements dans l’expression miRNA au fil du temps dans différentes lignées cellulaires de l’embryon de souris précoce.

Préparation de petites bibliothèques d’ARN pour le séquençage à partir d’embryons de souris précoces

Cet article établit un pipeline pour des suspensions de cellules uniques et de noyaux de haute qualité d’embryons de souris gaztrulants pour le séquençage de cellules uniques et de noyaux.

Séquençage de l’ARN unicellulaire d’embryons entiers de souris mutantes : de l’épiblaste à la fin de la gastrulation

Apprenez l'immunoprécipitation de la chromatine sur des embryons de souris E8.5 pour étudier l'activation des gènes spécifiques de tissus. Cette méthode permet d'analyser les interactions protéine-ADN régulatrices.

Assay immunoprécipitation de la chromatine des gènes spécifiques de tissus en utilisant des embryons de souris en début de

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