Name: Séquençage de la microflore bactérienne dans le sang périphérique: notre expérience avec des patients infectés par le VIH (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 50 s
Description: Découvrez le séquençage de l'ADN bactérien dans le sang périphérique de patients infectés par le VIH. Cette méthode permet d'identifier les espèces bactériennes transloquées et leur impact sur l'activation immunitaire systémique.

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Manipulation des échantillons sanguins infectés au VIH nécessite quelques recommandations importantes. Tous les échantillons de sang doivent être transportés dans robustes conteneurs étanches. Des précautions doivent être prises lors de la collecte du spécimen pour éviter toute contamination de l'extérieur du conteneur et de tout document accompagnant le spécimen. Toutes les personnes de traitement du sang infectés doivent porter des gants. Les gants doivent être changés et lavés les mains après l'achèvement du traitement des échantillons. Traitement des échantillons de sang infectés par le VIH doit être effectuée sous une hotte de classe II du cabinet Biohazard. Les aides mécaniques de pipetage doit être utilisé. L'utilisation de seringues ou autres objets tranchants (y compris par exemple les pipettes en verre ou tubes capillaires) doit être limitée aux situations dans lesquelles il n'ya pas d'alternative. Surfaces de laboratoire doivent être décontaminés avec un désinfectant chimique approprié après un déversement de sang et quand les activités de travail sont terminés. Les matériaux contaminés utilisés doivent être décontaminés avant réutilisation ou doivent être éliminés correctement via la route des déchets cliniques. Chaque incident d'exposition professionnelle à du sang potentiellement infectieux ou des liquides (ie, ceux nécessitant des précautions universelles) doivent être traités comme une urgence médicale comme les interventions doivent être initiées rapidement pour être efficace. Le protocole nécessite 5 jours pour son achèvement. Le calendrier est détaillé dans la Figure 1. Les espèces bactériennes sont identifiés en utilisant les méthodes décrites dans la Figure 2. 1. Prélèvement d'échantillons <ol><li> 9 ml de sang total est prélevé dans des tubes contenant de l'EDTA. </li><li> Les tubes sont centrifugés à 2000 rpm pendant 10 minutes à température ambiante pour obtenir un plasma. </li><li> Le plasma est recueilli dans une solution stérile de 2 ml Eppendorf tube. </li></ol> 2. Extraction d'ADN d'échantillons de plasma <ol><li> Suffisamment désinfecter le capot, des pipettes et le matériel nécessaire pour l'expérience en vue de garantir la stérilité. </li><li> Placer tous les matériaux sous les lumières UV pendant au moins 30 minutes. </li><li> Essuyez les gants avec un désinfectant. </li><li> Tremper un essuie quelques dans l'éthanol et les placer sous le capot. Chaque fois qu'un pourboire est jeté essuyer la pipette sur les serviettes de papier humide. </li></ol> L'ADN est extrait en utilisant un kit commercial en suivant les instructions du fabricant (Easy-DNA Kit, Invitrogen, Carlsbad CA, USA). <ol start="5"><li> 350 uL de plasma sont placés dans un tube stérile de 2 ml Eppendorf. </li><li> 350 uL d'eau ultrapure filtrée sont utilisées comme contrôle négatif. </li><li> Ajouter 10 uL de lysozyme (1mg/ml) pour les échantillons. </li><li> Incuber pendant 30 minutes à 37 ° C. </li><li> Ajouter 500 ul de solution de lyse et mélanger délicatement pour les échantillons. </li><li> Incuber pendant 7 minutes à 65 ° C. </li><li> Ajouter 900 ul de chloroforme pour les échantillons. </li><li> Vortex vigoureusement jusqu'à les échantillons sont uniformément visqueux. </li><li> Ajouter 200 pi de solution de précipitations et vortexer vigoureusement. </li><li> Centrifuger les échantillons à 10500 rpm pendant 10 minutes à température ambiante pour séparer les phases et la forme de l'interface. </li><li> Transférer la phase aqueuse supérieure dans un tube à centrifuger frais contenant 1 ml d'éthanol à 100%. </li><li> Centrifuger les échantillons à 10500 rpm pendant 10 minutes à 4 ° C. </li><li> Enlever l'éthanol. </li><li> Ajouter 1 ml d'éthanol à 70%. </li><li> Centrifuger les échantillons à vitesse maximale pendant 10 minutes à 4 ° C. </li><li> Enlever l'éthanol. L'éthanol résiduelle doit être éliminée avec un pipettator. </li><li> Reprendre le culot dans 50 ul d'eau ultrapure. </li><li> Lire la concentration d'ADN avec un spectrophotomètre. </li></ol> 3. ARNr 16S par PCR L'amplification par PCR est effectuée comme décrit précédemment 9. <ol><li> Amplifier l'ADN dans un mélange réactionnel de 100 uL composé de 10 pi de tampon PCR 10X, 5 pi de 25 mM de MgCl2, 5 pi de 2 mM dNTP total, 1 pl de 50 uM apprêt RW01 (AACTGGAGGAAGGTGGGGAT), 1 pl de 50 uM apprêt DG74 (AGGAGGTGATCCAACCGCA), 34 uL d'H20 et 0,5 uL de Taq polymérase (AmpliTaq Gold, Applied Biosystem, Foster City, CA, USA). </li><li> Transférer le mélange PCR dans les filtres afin d'éviter toute contamination possible par Taq polymérase bactérienne. </li><li> Filtres à centrifuger (Microcon, Millipore, Billerica, MA, USA) pendant 30 minutes à 500 FCR à 4 ° C. </li><li> Aliquoter le mélange PCR selon le nombre d'échantillons qui doivent être amplifiés (positifs et négatifs contrôles PCR, les échantillons et de l'eau extraite). </li><li> Utiliser les conditions suivantes thermocycleur: 94 ° C pendant 10 minutes, 40 fois 1 minute à chaque fois à 94 ° C, 55 ° C et 72 ° C, et 10 min à 72 ° C. </li><li> Visualisez le produit de PCR sur un gel agarose 2%. Utiliser 100 pb échelle d'ADN. Taille du produit PCR est d'environ 360 pb (figure 3). </li></ol> 4. Purification de produits PCR Seuls les échantillons positifs par PCR doit être purifiée. La purification est réalisée à l'aideun fabricant de kit commercial suivant les instructions du (PCR Purelink MICROKIT, Invitrogen, Carlsbad CA, USA). <ol><li> Ajouter 4 volumes de tampon de liaison contenant de l'isopropanol pour 1 volume de produit de PCR. </li><li> Transfert de produits PCR avec Binding Buffer à une colonne. </li><li> Centrifuger pendant 1 minute à 10000 rcf à température ambiante. </li><li> Laver la colonne avec le tampon de lavage contenant de l'éthanol. </li><li> Centrifuger pendant 1 minute à 10000 rcf à température ambiante. </li><li> Centrifuger à vitesse maximale pendant 1 minute à température ambiante pour sécher la membrane de silice et d'enlever tout le tampon de lavage résiduelle avec de l'éthanol. </li><li> Ajouter 10 uL d'eau ultrapure. </li><li> Incuber pendant 1 minute à température ambiante. </li><li> Centrifuger à vitesse maximale pendant 2 minutes à température ambiante pour recueillir l'ADN purifié. </li></ol> 5. Le clonage Lysogénie Broth (LB) la préparation des plaques <ol><li> Dissoudre 25 gr de mélange de LB dans environ 800 ml d'eau. </li><li> Amener le volume final à 1 L. </li><li> Ajouter 15 gr de Bactoagar. </li><li> Autoclave pendant 20 minutes. </li><li> Après autoclavage, agiter énergiquement par rotation de la solution dans le flacon pour mélanger agar fondu. </li><li> Refroidir la solution à 50 ° C. </li><li> Ajouter l'ampicilline (50 ug / ml) et agiter jusqu'à ce qu'il soit dissout. </li><li> Verser dans les boîtes à une profondeur d'environ 3mm. </li><li> Laisser les plaques à température ambiante. </li><li> Fais X-Gal (40mg/ml) et IPTG (100 mM) sur chaque plaque LB et incuber à 37 ° C jusqu'à utilisation. </li></ol> Transformation des cellules compétentes La transformation est réalisée à l'aide des instructions d'un fabricant kit commercial suivante (TOPO TA cloning kit, Invitrogen, Carlsbad CA, USA). <ol><li> Préparer le mélange de réaction de clonage (1-4 uL de PCR produit frais, 1 ml de solution de sel, 1 pl de vecteur et de l'eau si nécessaire). </li><li> Mélanger délicatement la réaction et incuber pendant 5-10 minutes à température ambiante. </li><li> Placez la réaction sur la glace. </li><li> Ajouter 2 ul de la réaction de clonage dans un flacon de cellules compétentes et mélanger doucement. </li><li> Incuber dans la glace pendant 30 minutes. </li><li> Choc thermique des cellules pendant 30 secondes à 42 ° C. </li><li> Transférer immédiatement le tube dans la glace. </li><li> Ajouter 250 ul de milieu. </li><li> Boucher le tube hermétiquement et secouer le tube horizontal à 37 ° C pendant 1 heure. </li><li> Fais 50 ul de chaque transformation sur une plaque préchauffée sélective. </li><li> Incuber une nuit à 37 ° C. </li></ol> Après incubation, les colonies blanches et bleues se développent sur les plaques. Colonies blanches sont positifs pour l'insertion des produits de PCR et des colonies bleues sont négatifs pour l'insertion des produits de PCR. 6. L'analyse par séquençage Réaction de séquençage <ol><li> Un mélange est faite en utilisant ces réactifs: 2,5 ul d'ADN, une primaire ul (5pmol / ul) 1,1 BigDye ul (Applied Biosystem, Foster City, CA, USA). </li><li> Conditions Thermocycleur: 96 ° C pendant 1 minutes, 25 fois pour 96 ° C pendant 10 sec, 55 ° C pendant 15 sec et 60 ° C pendant 4 min. </li></ol> Purification sur colonne <ol><li> Pour chaque réaction, préparer une colonne MicroSpin (Qiagen, Milan, Italie). </li><li> Inverser la colonne et de vortex pour mélanger la résine. </li><li> Aligner le fond de colonne, desserrer le couvercle ¼ de tour, et la colonne dans un microtube. </li><li> Centrifugeuse 3200 rpm pendant 1 minute. </li><li> Transfert colonne à un microtube propre. </li><li> Soigneusement pipette la réaction de séquençage complet PCR dans le centre de la colonne. </li><li> Centrifugeuse 3200 rpm pendant 1 minute. </li><li> ADN purifié sera eluite dans le tube (20 pi d'eau ultra-pure). </li></ol> L'analyse par séquençage <ol><li> Charger l'échantillon purifié (20 pi) dans 96 multipuits assiette. </li><li> Charger la plaque dans le séquenceur. Séquenceurs d'ADN automatisé générer un chromatogramme en quatre couleurs montrant les résultats de l'exécution de séquençage. </li><li> Entrée de la séquence nucléotidique comme une requête contre les banques de séquences publiques. La recherche est effectuée sur les bases de données NCBI et les serveurs, avec Basic Alignment Tool Recherche locale (BLAST). </li><li> Considérons seulement les bactéries avec des homologies 98-100%. </li></ol> 7. Les résultats représentatifs <img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Chronologie de la procédure. <img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Diagrammes de flux de la procédure d'identification bactérienne entière. <img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig3.jpg" alt="Figure 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3"> Figure 3. Gel à 2% d'agarose montrant large gamme de 16S ARNr produits de PCR. Voie 1 contient une échelle d'ADN de 100 pb, piste 2 contient le contrôle PCR positive, piste 3 montre le contrôle négatif de PCR. Lane 4 montre des échantillons provenant d'un patient séropositif, et la piste 5 contient de l'eau. Voie 6 shOWS échantillons à partir d'un individu sain et une réaction négative par PCR; piste 7 contient de l'eau. Seuls les patients VIH positifs affiche une amplification PCR positive. Eau ultrapure utilisée comme contrôle négatif pendant l'étape d'extraction, indique qu'aucune contamination s'est produite. <img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig4.jpg" alt="Figure 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 4"> Figure 4. Gel à 0,7% d'agarose montrant plasmidique extrait avec la procédure miniprep. Voie 1 contient une échelle 1 ADN Kilobase, piste 2 contient la colonie de contrôle bleu, les voies 3 à 12 contiennent des colonies blanches. Le plasmide de la colonie bleue ne contient pas la notice du produit PCR. Tous les 10 colonies blanches contiennent plasmide avec l'insert correct. <img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig5.jpg" alt="Figure 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 5"> Figure 5. Indique l'exemple d'analyse par séquençage des bactéries dans le plasma d'un VIH-positifs individuels. Nos résultats montrent que la translocation microbienne dans l'infection à VIH implique une flore polimicrobic, qui n'est pas vu dans le VIH-négatifs sujets, suggérant l'échec substantiel de l'immunité intestinale dans le contrôle de la translocation bactérienne.

<ol><li>Hooper, L. V., Macpherson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+adaptations+that+maintain+homeostasis+with+the+intestinal+microbiota%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immune adaptations that maintain homeostasis with the intestinal microbiota.</a> Nat Rev Immunol. 10, 159-169 (2010).</li>
<li>Macpherson, A. J., Harris, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+between+commensal+intestinal+bacteria+and+the+immune+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Interactions between commensal intestinal bacteria and the immune system.</a> Nat Rev Immunol. 4, 478-485 (2004).</li>
<li>Kanauchi, O., Mitsuyama, K., Araki, Y., Andoh, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+intestinal+flora+in+the+treatment+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Pharm+Des%22%5BJournal%5D)">Modification of intestinal flora in the treatment of inflammatory bowel disease.</a> Curr Pharm Des. 9, 333-346 (2003).</li>
<li>Brenchley, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+translocation+is+a+cause+of+systemic+immune+activation+in+chronic+HIV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Microbial translocation is a cause of systemic immune activation in chronic HIV infection.</a> Nat Med. 12, 1365-1371 (2006).</li>
<li>Brenchley, J. M., Price, D. A., Douek, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV+disease%3A+fallout+from+a+mucosal+catastrophe%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">HIV disease: fallout from a mucosal catastrophe.</a> Nat Immunol. 7, 235-239 (2006).</li>
<li>Jiang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+levels+of+bacterial+DNA+correlate+with+immune+activation+and+the+magnitude+of+immune+restoration+in+persons+with+antiretroviral-treated+HIV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Plasma levels of bacterial DNA correlate with immune activation and the magnitude of immune restoration in persons with antiretroviral-treated HIV infection.</a> J Infect Dis. 199, 1177-1185 (2009).</li>
<li>Marchetti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+translocation+is+associated+with+sustained+failure+in+CD4%2B+T-cell+reconstitution+in+HIV-infected+patients+on+long-term+highly+active+antiretroviral+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22AIDS%22%5BJournal%5D)">Microbial translocation is associated with sustained failure in CD4+ T-cell reconstitution in HIV-infected patients on long-term highly active antiretroviral therapy.</a> AIDS. 22, 2035-2038 (2008).</li>
<li>Marchetti, G. Role of Microbial Translocation and Immune Hyperactivation in Disease Progression of HIV+ Patients with Preserved CD4 Count in the Absence of ART. The 17th Conference on Reteroviruses and Opportunistic Infections (CROI), San Francisco, CA, USA, , (2010).</li>
<li>Greisen, K., Loeffelholz, M., Purohit, A., Leong, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PCR+primers+and+probes+for+the+16S+rRNA+gene+of+most+species+of+pathogenic+bacteria%2C+including+bacteria+found+in+cerebrospinal+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">PCR primers and probes for the 16S rRNA gene of most species of pathogenic bacteria, including bacteria found in cerebrospinal fluid.</a> J Clin Microbiol. 32, 335-351 (1994).</li>
</ol>

<p class="jove_content"&gt; Par la présente nous montrent un protocole PCR / séquençage de caractériser la translocation de bactéries dans le sang périphérique d&#39;individus infectés par le VIH.</p&gt;<p class="jove_content"&gt; Résultats les plus fiables sont obtenus en utilisant le plasma recueilli dans des tubes contenant de l&#39;EDTA-. Après prélèvement de sang, le plasma doit être séparé par centrifugation dans les 2 / 3 heures, pour éviter l&#39;hémolyse et la dégradation de fragment d&#39;ADN. Les échantillons sont stockés d&#39;abord...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nom de réactif </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th><th> Commentaires (optionnel) </th></tr><tr><td> Easty-DNA Kit </td><td> Invitrogen </td><td> K 180001 </td><td></td></tr><tr><td> Chloroforme </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C2432 </td><td></td></tr><tr><td> Éthanol </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> E7203 </td><td></td><tr/><tr><td> UltraPure Waer </td><td> Invitrogen </td><td> 10977049 </td><td></td></tr><tr><td> Le lysozyme </td><td> Fluka </td><td> 62970 </td><td> 10 ug / ml dans l&#39;eau distillée </td></tr><tr><td> AmpliTaq Gold </td><td> Applied Biosystem </td><td> 26478701 </td><td></td></tr><tr><td> Microcon 100 </td><td> Millipore </td><td> 42413 </td><td></td></tr><tr><td> Des amorces de PCR </td><td> Invitrogen </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Agarose </td><td> Eppendorf </td><td> C1343 </td><td></td></tr><tr><td> Échelle d&#39;ADN </td><td> Invitrogen </td><td> 15628019 </td><td></td></tr><tr><td> Purelink PCR kit micro </td><td> Invitrogen </td><td> K310050 </td><td></td></tr><tr><td> LB agar, la poudre </td><td> Invitrogen </td><td> 22700025 </td><td></td></tr><tr><td> Bactoagar </td><td> Invitrogen </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ampicilline </td><td> Invitrogen </td><td> 11593027 </td><td> 10 mg / mL dans l&#39;eau distillée </td></tr><tr><td> X-gal </td><td> Invitrogen </td><td> 15520034 </td><td> 40mg/mL dans le DMF </td></tr><tr><td> IPTG </td><td> Invitrogen </td><td> 15529019 </td><td> 100 mM dans de l&#39;eau distillée </td></tr><tr><td> TOPO TA Cloning kit </td><td> Invitrogen </td><td> K450002 </td><td></td></tr><tr><td> Purelink rapide kit Plasmid Miniprep </td><td> Invitrogen </td><td> K210010 </td><td></td></tr><tr><td> Big Dye </td><td> Applied Biosystem </td><td> 4337455 </td><td></td></tr><tr><td> DyeEx 2,0 tour kit </td><td> Qiagen </td><td> 63204 </td><td></td></tr></tbody></table>

séquençage de la microflore bactérienne dans le sang périphérique: notre expérience avec des patients infectés par le vih

Sequencing of Bacterial Microflora in Peripheral Blood: our Experience with HIV-infected Patients

Le tractus gastro-intestinal sain est physiologiquement colonisé par une grande variété de microbes commensaux qui influencent le développement de l&#39;1,2 humorales et cellulaires du système immunitaire muqueux. Microbiote est protégé par le système immunitaire par une barrière forte muqueuses. Infections et antibiotiques sont connus pour altérer la barrière normale tractus gastro-intestinal et la composition des bactéries résidentes, ce qui peut entraîner des possibles anomalies immunitaires 3. VIH provoque une brèche dans la barrière gastro-intestinaux avec défaillance progressive de l&#39;immunité des muqueuses et des fuites dans la circulation systémique des bioproduits bactériennes, telles que des lipopolysaccharides et des fragments d&#39;ADN bactérien, qui contribuent à l&#39;activation immunitaire systémique 4-7. Translocation microbienne est impliqué dans le VIH / SIDA immunopathogenèse et réponse au traitement 4,8. Nous avons cherché à caractériser la composition des bactéries translocation dans le sang périphérique des patients infectés par le VIH. Pour poursuivre notre but, nous avons créé une réaction PCR pour le gène 16S panbacteric ribosomial suivie d&#39;une analyse par séquençage. Brièvement, le sang total à la fois de sujets infectés par le VIH et sain est utilisé. Étant donné que les individus sains normaux présents homéostasie intestinale aucune translocation de la microflore est attendu chez ces patients. Après la collecte de sang total par ponction veineuse et la séparation du plasma, l&#39;ADN est extrait du plasma et utilisés pour effectuer un large éventail de réaction PCR pour le gène 16S panbacteric ribosomial 9. Après purification des analyses de produits PCR, le clonage et le séquençage sont effectuées.

Notre expérience montrera comment effectuer une analyse par séquençage des espèces bactériennes translocation dans le sang périphérique des patients VIH positifs.

Séquençage de la microflore bactérienne dans le sang périphérique: notre expérience avec des patients infectés par le VIH

Le tractus gastro-intestinal sain est colonisé physiologiquement par une grande variété de microbes commensaux qui influencent le développement de la réponse humorale...

Séquençage de la microflore bactérienne transloquée dans le sang périphérique. Notre expérience auprès de patients infectés par le VIH. Je suis Marti junior, et je travaille en tant que maître de conférences à la Clinique des maladies infectieuses et de médecine tropicale de l'Université de Milan en Italie. Nous allons maintenant vous présenter des expériences visant à détecter et à séquencer l'ADN bactérien provenant du sang périphérique de patients infectés par le VIH.Le tube digestif sain est colonisé par une grande variété de micro-organismes commensaux qui influencent le développement du système immunitaire humorale et cellulaire. La microflore est protégée du système immunitaire par une barrière muqueuse solide, sauf dans plusieurs situations cliniques telles que les infections, les traitements aux antibiotiques, les complications postopératoires, ainsi que chez les patients atteints de carcinome, de pancréatite ou de malnutrition. Une altération du tube digestif se produit.L'infection par le VIH provoque une altération de la barrière gastro-intestinale, entraînant une défaillance progressive de l'immunité muqueuse et une fuite dans la circulation systémique de bioproduits bactériens, tels que le lipopolysaccharide et des fragments d'ADN bactérien, qui contribuent à l'activation immunitaire systémique, illustrant les phases expérimentales de détection et de séquençage de l'ADN bactérien. Présents dans le sang périphérique de patients infectés par le VIH, nous aurons Camilla ti, une interne en maladies infectieuses Esther, moi, un étudiant en doctorat, et ju MariaI, une chercheuse postdoctorale, tous participant à la clinique de maladies infectieuses et de médecine tropicale à l'Université de Milan. Notre expérience vise à identifier les espèces bactériennes présentes dans des échantillons de sang périphérique provenant de patients infectés par le VIH.Nous allons utiliser du sang total provenant de sujets infectés par le VIH ainsi que de sujets sains, étant donné que les individus en bonne santé présentent une homéostasie intestinale normale. Nous ne nous attendons pas à observer de microflore transloquée chez ces patients. Le sang total sera prélevé chez les patients, suivi d'une séparation du plasma.L'ADN sera ensuite extrait afin de réaliser une réaction de PCR à large spectre ciblant le gène ribosomique 16 s du PCIC. Une purification des produits de PCR, suivie d'une analyse par clonage et séquençage, sera effectuée. La première étape de notre expérience consiste à prélever du sang par ponction veineuse, puis à séparer le plasma.Environ neuf millilitres de sang total sont prélevés dans des tubes contenant de l'EDTA. Les tubes sont placés dans une centrifugeuse à 2000 tr/min pendant 10 minutes. Une centrifugation à température ambiante permet la séparation du plasma.L'extraction de l'ADN sera désormais effectuée à partir de nos échantillons de plasma. Désinfectez correctement la hotte, les pipettes et le matériel nécessaire à l'expérience afin de garantir l'asepsie. Placez tout le matériel sous les lampes UV pendant au moins 30 minutes. Éteignez les lampes UV, essuyez les gants avec un désinfectant, imbibez quelques essuie-tout d'éthanol et placez-les sous la hotte chaque fois qu'une pointe est jetée. Pendant la procédure d'extraction de l'ADN, essuyez la pipette sur les essuie-tout humides.Vous êtes maintenant prêt pour l'extraction de l'ADN. L'ADN est extrait à l'aide d'un kit commercial, en suivant les instructions du fabricant. En bref, 350 microlitres de plasma sont placés dans un tube Eppendorf de deux millilitres.De l'eau ultra-pure est utilisée comme témoin négatif. 10 microlitres de lysosome à une concentration finale de 1 mg par mL sont ajoutés aux échantillons. Les échantillons sont ensuite incubés pendant 30 minutes.À 37 degrés Celsius, la solution A, le chloroforme et la solution B sont ensuite ajoutés aux échantillons selon les instructions suivant la centrifugation. Trois phases distinctes apparaîtront. Le surnageant est recueilli et ajouté à l'éthanol absolu, permettant la précipitation de l'ADN ; la concentration d'ADN est ensuite mesurée à l'aide d'un spectrophotomètre.L'étape suivante consiste en une amplification par réaction de PCR à large spectre du gène ribosomique PRIC 16 s. La PCR est réalisée dans une pièce dédiée. Un mélange de PCR est préparé à l'aide de ces réactifs. Le mélange de PCR est filtré pendant 30 minutes à 500 ×g et à quatre degrés Celsius afin d'éviter toute contamination possible par la polymérase bactérienne tap. Le mélange de PCR est ensuite divisé en aliquotes, selon le nombre d'échantillons à amplifier. Pensez à prévoir des aliquotes pour les contrôles de réaction négatif et positif.Le THERMOCYCLAGE est programmé selon les conditions suivantes : 94 degrés Celsius pendant cinq minutes, puis 94 degrés Celsius, 55 degrés Celsius, 72 degrés Celsius pendant une minute, répété 40 cycles, suivis de 72 degrés Celsius pendant 10 minutes. La durée moyenne est de trois heures.Les produits de PCR sont visualisés sur un gel d'agarose à 2 %. Il s'agit d'un gel d'agarose à 2 % montrant les produits de PCR. La première lame contient un marqueur de 100 paires de bases.La deuxième piste, un témoin positif de PCR. La troisième piste contient un témoin négatif de PCR. La quatrième piste montre des échantillons provenant d'un patient séropositif au VIH et la cinquième piste contient une piste d'eau.La six contient des échantillons provenant d'un individu sain et d'une réaction PCR négative. La bande sept contient de l'eau. La PCR IFICATION est l'étape suivante.Les produits de PCR sont purifiés à l'aide d'un kit commercial, en suivant les instructions du fabricant. De nombreuses colonnes contenant des filtres sont utilisées pour cette étape. Les résultats de PCR sont enregistrés sur une feuille de travail.Nous allons maintenant procéder au clonage en utilisant la sélection bleu-blanc, une technique moléculaire permettant de détecter l'insertion réussie d'un ADN dans un vecteur. Le vecteur est ensuite introduit dans des cellules compétentes. Bactéries.Les cellules compétentes sont cultivées en présence de xal. Si la lation est réussie, la colonie bactérienne sera blanche. Sinon, la colonie sera bleue.Xal est utilisé pour indiquer si une cellule exprime l'enzyme bêta-galactosidase et pour visualiser la transformation des colonies d'E. coli. L'IPTG induit l'expression de la bêta-galactosidase. Xal et l'IPTG sont étalés sur des boîtes contenant de l'ampicilline. Un mélange de clonage contenant les produits de PCR, SALT et un vecteur d'expression est préparé selon les instructions du fabricant.Les cellules d'E. coli sont placées sur de la glace. Le mélange de clonage est ensuite ajouté aux cellules, qui sont soumises à un choc thermique. Les plaqettes sont ensuite incubées toute une nuit à 37 degrés Celsius. Après incubation, des colonies blanches et bleues se développent sur les plaqettes.Les colonies blanches sont positives pour les produits de PCR. Les colonies bleues indiquant une insertion sont négatives pour l'insertion du produit de PCR. Dix colonies blanches et une colonie bleue sont sélectionnées.Chaque colonie est placée dans deux millilitres de milieu de croissance LB liquide. Les colonies en présence d'ampicilline sont incubées toute la nuit à 37 degrés Celsius. Après incubation, les colonies ayant poussé toute la nuit sont utilisées pour l'extraction du plasmide à l'aide d'un kit de minipréparation commercial.Des microcolonnes contenant des filtres sont utilisées pour l'étape suivant l'extraction du plasmide. Les plasmides sont ensuite visualisés sur un gel d'AROS à 0,7 %. Il s'agit d'un gel d'AROS à 0,7 % montrant les produits d'une minipréparation. La première voie contient une échelle d'un kilobase.La deuxième bande contient la colonie témoin bleue. Les bandes trois à douze contiennent des colonies blanches. Les résultats sont enregistrés à l'aide d'une feuille de travail. Le séquençage suit, puis les plasmides sont amplifiés.Un mélange est préparé en utilisant ces réactifs. Le mélange de PCR est divisé en aliquotes selon le nombre d'échantillons à amplifier. L'amplification thermocyclique est programmée selon les conditions suivantes : 96 degrés Celsius pendant une minute, 96 degrés Celsius pendant 10 secondes, 50 degrés Celsius pendant cinq secondes, 60 degrés Celsius pendant quatre minutes.Pendant 25 cycles. La durée moyenne est d'environ une heure. Après l'amplification, les produits de PCR sont purifiés à l'aide de colonnes contenant un filtre.Les produits purifiés sont chargés sur une plaque, qui est ensuite placée dans un séquenceur. Une fois la séquence obtenue, elle est soumise à une recherche BLAST et les espèces bactériennes de chaque colonie sont identifiées. Les colonies présentant une homologie de séquence de 98 % à 100 % sont considérées comme positives.Il s'agit d'un exemple de séquençage bactérien dans le plasma d'un individu séropositif. Nos résultats montrent que la translocation microbienne dans la maladie à VIH implique une flore polymicrobienne. Nous avons ainsi démontré que les patients infectés par le VIH présentent une flore microbienne microbienne polymicrobienne élevée dans la circulation systémique.L'ADN bactérien dans le sang périphérique était en dessous de la limite de détection pour nos individus sains séronégatifs pour le VIH, ce qui reflète peut-être l'intégrité du tractus gastro-intestinal. Notre recherche est désormais centrée sur la compréhension et l'investigation du rôle possible de la microflore dans le sang périphérique, dans la physiopathologie immunitaire du VIH et, éventuellement, la réponse au traitement.

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