Administration de plasmides d’ADN dans l’urothélium de la vessie de souris : une procédure basée sur l’électroporation pour administrer efficacement des plasmides d’ADN dans les cellules urothéliales de la vessie murine afin de générer des modèles génétiquement modifiés

0 vues3:56 min • April 30th, 2023

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Pour commencer, préparez une souris femelle anesthésiée en position couchée. Assurez-vous que sa vessie est complètement vide. Par l’ouverture urétrale, insérez un cathéter lubrifié. La lubrification facilite le passage de l’urètre pour l’entrée dans la vessie.

Après le cathétérisme, faites une incision abdominale et disséquez la musculature interne pour exposer la vessie. Ensuite, pipetez une suspension de plasmides d’ADN mélangés à un colorant approprié dans l’extrémité externe du cathéter. Ces plasmides d’ADN codent pour un gène rapporteur fluorescent.

Fixez une seringe au cathéter et poussez-la pour administrer la solution plasmidique dans la vessie. Les molécules de colorant injectées colorent la vessie, confirmant ainsi l’administration réussie de la solution plasmidique. Retirez le cathéter et resserrez l’orifice urétral externe pour empêcher l’écoulement de la solution plasmidique.

Maintenant, pincez la vessie à l’aide de deux électrodes reliées à un générateur d’électroporation. Appliquez des impulsions électriques de tension appropriée pendant une période souhaitée sur la vessie. L’exposition de l’urothélium de la vessie, la muqueuse la plus interne de la vessie, aux champs électriques appliqués entraîne la formation de pores temporaires dans la membrane cellulaire urothéliale.

L’augmentation de la perméabilité membranaire permet l’administration efficace des plasmides d’ADN injectés dans les cellules. Après l’électroporation, suturez l’incision chirurgicale. Laissez la souris récupérer. Les cellules urothéliales transfectées avec les plasmides d’ADN expriment des protéines rapporteures fluorescentes.

Pour chaque vessie à transfecter, préparez au moins 20 microlitres de plasmide d’ADN à 1 microgramme par microlitre. Ensuite, ajoutez 1 microlitre de Trypan Blue aux 20 microlitres de solution plasmidique dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre et pipetez pour bien mélanger. Pour délivrer le plasmide, appliquez de l’éthanol à 70 % sur l’abdomen. Faites une incision verticale de 1 centimètre pour ouvrir la peau abdominale au-dessus de la vessie.

Ensuite, coupez la couche musculaire pour exposer la vessie. Pipetez au moins 20 microlitres de solution de plasmide et de Trypan Blue dans l’extrémité externe du cathéter et fixez-le à la seringue. Ensuite, injectez la solution plasmidique dans la vessie. Si la vessie devient bleue, l’injection est réussie. Laissez un peu de liquide dans le cathéter pour éviter de créer des bulles d’air dans la vessie.

Ensuite, saisissez l’orifice urétral externe et retirez le cathéter et la seringue. Utilisez une ficelle pour resserrer l’orifice urétral externe. Faites deux boucles avec la ficelle puis attachez avec deux nœuds. Il s’agit d’une étape cruciale qui nécessite la coopération de deux personnes. Assurez-vous que les nœuds sont bien serrés afin que les plasmides ne s’échappent pas.

Maintenant, allumez le générateur d’électroporation. Pincez la vessie avec deux électrodes et appuyez sur la pédale pour effectuer l’électroporation. Pour maintenir la vessie soutenue, on peut pincer l’arrière de l’incision abdominale avec une pince à épiler. Évitez tout contact entre la pince à épiler et les électrodes, car cela pourrait générer une étincelle.

Lorsque c’est fait, suturez l’ouverture abdominale et cutanée avec une suture chirurgicale stérile. Retirez la ficelle et appliquez des clips. Appliquez de l’iode sur la plaie, puis retirez l’animal du système isoflurane. Administrer l’analgésique de buprénorphine par voie sous-cutanée pour soulager la douleur post-chirurgicale. Gardez l’animal sur le coussin chauffant et remettez-le dans la cage familiale après sa récupération complète.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026