Cancer des voies urinaires

Dans cette vidéo, nous montrons la section vibratome d’un rein de souris entier pour obtenir de fines tranches. Ces coupes de tissu tranchées peuvent être stockées à basse température jusqu’à une analyse plus approfondie en aval.

Dans cette vidéo, nous démontrons l’extraction de métabolites à partir d’un rein de donneur pré-récolté, à l’aide d’une sonde SPME. Les métabolites extraits peuvent être utilisés pour effectuer des analyses métabolomiques et lipidomiques afin d’évaluer la qualité de l’organe pour la transplantation.

Cette vidéo décrit la technique de coloration de l’ADN extracellulaire dans des coupes de tissus FFPE. L’ADN extracellulaire coloré peut être quantifié pour déterminer l’efficacité de tout traitement thérapeutique conduisant à la mort des cellules cancéreuses.

Dans cette vidéo, nous décrivons le protocole permettant de dériver des podocytes de reins humains à partir de cellules souches pluripotentes induites par différenciation cellulaire dans des conditions chimiques définies. Les podocytes générés peuvent être utilisés pour les tests de néphrotoxicité et la modélisation de la maladie.

Dans cette vidéo, nous démontrons l’isolement des cellules musculaires lisses détrusor à partir d’échantillons de vessie urinaire humaine à l’aide d’un traitement enzymatique séquentiel en deux étapes.

Cette vidéo démontre la caractérisation des courants cationiques des canaux ioniques de la mélastatine de type 4 (TRPM4) dans les cellules musculaires lisses du détrusor à l’aide de la technique de patch-clamp perforé médiée par l’amphotéricine B. La technique permet d’évaluer les propriétés biophysiques et pharmacologiques des canaux ioniques.

Cette vidéo décrit la méthode pour isoler les glomérules intacts des reins de souris. Les glomérules encapsulés et décapsulés ainsi obtenus peuvent en outre être utilisés pour la culture d’excroissances de cellules épithéliales pariétales à partir du rein murin.

Cette vidéo montre la préparation de blocs de sphéroïdes cancéreux par congélation éclair, une technique dans laquelle un échantillon de tissu d’intérêt est congelé à une température ultra-froide, en retenant les sphéroïdes à l’intérieur de la matrice.

Cette vidéo décrit une technique d’ultracentrifugation basée sur la densité pour isoler des exosomes à partir de milieux conditionnés récoltés à partir de cultures de cellules rénales embryonnaires humaines à l’aide d’un coussin de saccharose à 25 % (p/p) préparé dans de l’oxyde de deutérium. Les exosomes isolés peuvent être utilisés pour des applications en aval.

Cette vidéo décrit une méthode basée sur l’électroporation pour encapsuler des siRNA dans des exosomes. Les exosomes chargés de siRNA peuvent ensuite être utilisés pour des applications thérapeutiques.

Dans cette vidéo, nous montrons les étapes d’isolement et de purification des cellules épithéliales tubulaires rénales pour un large éventail d’études de biologie moléculaire et de culture cellulaire.

Dans cette vidéo, nous décrivons le protocole de réalisation d’une coloration périodique à l’acide de Schiff (PAS) pour évaluer les anomalies structurelles dans le glomérule rénal. La méthode de coloration PAS permet une évaluation appropriée de la physiopathologie du glomérule.

Cette vidéo présente la méthodologie utilisée pour réaliser des réseaux de protéines en phase inverse (RPPA) afin d’étudier les modèles d’expression des protéines à partir du lysat cellulaire. Dans le RPPA, le lysat contenant un mélange de protéines est imprimé sur des lames de nitrocellulose et les protéines d’intérêt sont analysées à l’aide d’anticorps marqués par fluorescence.

Dans cette vidéo, nous décrivons une méthode appelée pathologie d’expansion, une variante de la microscopie à expansion, dans laquelle les échantillons de tissus cliniques sont expansés chimiquement à l’aide d’un réseau de polymères pour l’examen microscopique des structures à l’échelle nanométrique.

Cette vidéo décrit la procédure de génération d’un modèle murin expérimental de xénogreffe, qui peut être utilisé pour étudier la progression du carcinome à cellules urothéliales.

Dans cette vidéo, nous décrivons la transplantation orthotopique d’organoïdes tumoraux de vessie en culture dans la vessie murine pour étudier le rôle de l’environnement de l’organe sur le développement des tumeurs.

Cette vidéo montre la procédure de génération d’un modèle murin d’obstruction urétérale unilatérale. La procédure consiste à couper l’un des uretères de la souris pour obstruer l’écoulement de l’urine.

Dans cette vidéo, nous décrivons la procédure intravésicale consistant à administrer des cellules cancéreuses dans la vessie d’un modèle murin. Cette procédure permet de générer un modèle de tumeur orthotopique de la vessie qui peut être utilisé pour développer des stratégies thérapeutiques.

Dans cette vidéo, nous décrivons une procédure basée sur un cathéter pour vider et rincer la vessie d’un modèle murin. La souris préparée peut ensuite être utilisée pour d’autres procédures expérimentales.

Cette vidéo démontre l’administration du plasmide d’ADN dans l’urothélium de la vessie de souris à l’aide d’une combinaison de techniques de cathétérisme urétral et d’électroporation. La procédure décrite permet de générer des modèles de cancer de la vessie chez la souris.

Dans cette vidéo, nous présentons le protocole d’injection hydrodynamique de plasmides dans le bassinet du rein de souris pour la transfection d’acides nucléiques. Cette technique permet l’administration de plasmides spécifiques à un organe en utilisant le principe de la pression hydrostatique élevée, qui pousse avec force les plasmides dans le site spécifique sans causer de lésions tissulaires.

Dans cette vidéo, nous développons un modèle murin orthotopique de carcinome à cellules rénales. Ce modèle aboutit à des tumeurs primaires reproductibles dans le rein injecté et à des tumeurs métastatiques dans le poumon, permettant d’évaluer la progression de la maladie et le traitement.

Cette vidéo démontre la micro-injection intraveineuse de néphrotoxines dans la veine de la queue d’un embryon de poisson-zèbre pour étudier leurs effets chimiques sur la fonction rénale.

Dans cette vidéo, nous démontrons l’administration intrarénale de médicaments chez le rat via l’artère rénale. Cette méthode est bénéfique pour améliorer le ciblage des médicaments, la puissance des médicaments et la minimisation de la toxicité systémique.

Cette vidéo présente l’aspiration de fluides à partir de glomérules de souris à l’aide de la technique de microponction médiée par deux photons. La technique permet d’accéder aux glomérules de la souris vivante et permet ainsi de mieux comprendre la physiologie rénale.

Dans cette vidéo, nous décrivons la procédure d’extraction rénale de l’espace rétropéritonéal de la souris. Le rein extrait peut ensuite être microdisséqué pour obtenir un rein intact sans capsule rénale et la couche de graisse environnante.

Cette vidéo décrit la préparation d’un rein de rat décellularisé. L’échafaudage vasculaire acellulaire obtenu peut servir de plate-forme prometteuse pour l’ingénierie tissulaire des greffes d’organes.

Cette vidéo montre la dissection et la préparation d’un support plat du rein de poisson-zèbre adulte. Le support plat préparé peut être visualisé au microscope pour l’analyse des échantillons.

Dans cette vidéo, nous démontrons la dépigmentation du rein de poisson-zèbre adulte et sa préparation ultérieure pour les procédures de coloration. Après la coloration, le rein de poisson-zèbre adulte peut être utilisé pour étudier la régénération rénale, la caractérisation phénotypique de modèles de maladies rénales et la fonctionnalité du néphron.

Cette vidéo décrit une méthode d’étude du développement d’organes à l’aide d’un dispositif amélioré de xénotransplantation sur membrane chorioallantoïdienne (CAM) à partir d’embryons aviaires. Cette méthode permet le développement d’organes embryonnaires et d’organoïdes entièrement vascularisés.