Isolement basé sur la SEC de vésicules extracellulaires dérivées de la microglie : une technique pour isoler des vésicules extracellulaires à partir de milieux de culture conditionnés par la microglie

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cellules microgliales libèrent des médiateurs immunitaires sous la forme de vésicules extracellulaires ou VE, y compris des corps apoptotiques plus grands et des vésicules de micro-taille plus petites, dans les milieux de croissance in vitro.

Pour isoler les VE, commencez par prendre des milieux conditionnés par la microglie. Ce milieu de culture contient des cellules microgliales ainsi que les VE libérées. Centrifugez le média pour granuler les cellules.

Récupérez le surnageant contenant les VE, les débris et les agrégats de protéines dans un tube frais. Centrifugez à nouveau pour éliminer les débris cellulaires et les grands corps apoptotiques.

Transférez le surnageant dans un tube d’ultracentrifugation. Centrifugeuse à grande vitesse.

Jetez le surnageant contenant le milieu usé et remettez en suspension la pastille d’EV et d’agrégat de protéines dans le tampon souhaité.

En même temps, prenez une colonne de chromatographie d’exclusion stérique avec un filtre approprié à sa base.

Emballez hermétiquement la colonne avec une matrice de filtration de gel composée de billes de gel sphériques qui forment un tamis poreux de taille de pores définie.

Chargez la suspension d’EV et d’agrégats de protéines au-dessus de la phase stationnaire.

Lorsque la suspension passe à travers la colonne, les véhicules électriques de plus grande taille se déplacent à travers les espaces interparticulaires entre les billes de gel, parcourant un chemin plus court. En revanche, les agrégats de protéines de plus petite taille se déplacent dans les pores, suivant un chemin plus long.

Par conséquent, les VE sortent en premier de la colonne.

Collectez les fractions contenant des VE et utilisez-les pour une analyse plus approfondie.

Transférez le milieu de culture conditionné à partir de cultures de microglies ou de macrophages dans un tube conique et centrifugez-le à 1 200 x g pendant 10 minutes pour granuler les cellules. Transférez le surnageant dans un nouveau tube conique et centrifugez pendant encore 20 minutes pour éliminer les corps apoptotiques.

Ensuite, transférez le surnageant dans un tube en polycarbonate de 10,4 millilitres. Placez le tube dans un rotor de 70,1 Ti et ultracentrifugez-le à 100 000 x g pendant 90 minutes à 4 degrés Celsius pour granuler les VE. Après la centrifugation, jetez le surnageant et remettez en suspension la pastille dans 200 microlitres de PBS filtré de 0,2 micromètre.

Pour isoler les VE, préparez une colonne de chromatographie d’exclusion de taille faite maison en lavant et en stérilisant une colonne de chromatographie sur verre et en plaçant un filtre de 60 micromètres au fond. Empilez la colonne avec une matrice de base de filtration sur gel d’agarose réticulé pour créer une phase stationnaire de 0,6 centimètre de diamètre et de 20 centimètres de hauteur.

Ensuite, rincez la phase avec 50 millilitres de PBS filtré de 0,2 micromètre. Si nécessaire, stockez la colonne à 4 degrés Celsius pour une utilisation ultérieure. Placez le granulé EV remis en suspension sur la phase stationnaire et collectez 20 fractions séquentielles de 250 microlitres tout en continuant à ajouter du PBS au sommet de la phase stationnaire. Les fractions peuvent être stockées à moins 20 degrés Celsius.

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Last updated: 18 July 2026