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Les synaptosomes sont des fractions neuronales isolées riches en vésicules synaptiques. Ces synaptosomes sont engloutis par les astrocytes - une population de cellules immunitaires dans le cerveau - par un processus connu sous le nom de phagocytose.
Pour étudier in vitro la phagocytose médiée par les astrocytes, il faut commencer par prendre une plaque de culture contenant une monocouche d’astrocytes. Maintenant, ajoutez une suspension de synaptosomes conjugués à l’indicateur de pH dans la plaque. Ce colorant indicateur a la propriété d’être fluorescent exclusivement à un pH bas. Incuber la plaque pendant la durée souhaitée.
Pendant l’incubation, la phosphatidylsérine ou PS présente sur la membrane externe du synaptosome lui permet de se lier aux récepteurs PS correspondants sur la membrane astrocytaire. Cela facilite l’installation des synaptosomes à la base. Aspirez le milieu épuisé ainsi que les synaptosomes non liés de la plaque.
Ensuite, complétez la plaque avec des facteurs favorisant la phagocytose et incuber. Par la suite, imagez la plaque à l’aide d’un microscope à fluorescence. Lorsqu’ils se lient à la surface, les astrocytes engloutissent les synaptosomes, ce qui les fait pénétrer dans les phagosomes. Une fois à l’intérieur des phagosomes, le faible pH provoque une fluorescence brillante des molécules de colorant indicatrices.
L’imagerie en temps réel révèle la présence de taches fluorescentes brillantes correspondant à l’indicateur de pH des synaptosomes conjugués engloutis par les astrocytes. Finalement, ces taches disparaissent, indiquant une dégradation réussie des synaptosomes.
Pour l’imagerie en direct de l’engloutissement des synaptoles, il faut d’abord retirer le surnageant de chaque puits d’une culture d’astrocytes confluents et laver rapidement les cellules trois fois avec 1 millilitre de DPBS par lavage. Après le dernier lavage, ajoutez 300 microlitres de milieu basique astrocytaire immunopané et 5 microlitres de synaptosomes conjugués à l’indicateur de pH, ainsi que tout facteur supplémentaire pouvant moduler la phagocytose des cellules gliales.
Permettez aux synaptosomes de se déposer au fond des puits et de se fixer aux récepteurs de phosphatidylsérine sur les astrocytes à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone. Après 40 minutes, jetez les surnageants et lavez rapidement mais doucement les puits trois fois avec 1 millilitre de DPBS par lavage.
Après le dernier lavage, ajoutez 500 microlitres de milieu frais complété par les facteurs d’intérêt aux puits appropriés et transférez la plaque sur un instrument d’imagerie en direct. Sélectionnez les positions d’imagerie, ajustez la mise au point, le temps d’exposition, la luminosité et la puissance des LED, et réglez le format d’image, l’intervalle de temps et le nombre total de cycles pour l’imagerie en direct selon les critères expérimentaux. Ensuite, commencez l’imagerie en direct des expériences de phagocytose.