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Prenez des dilutions en série d’un anticorps ciblant l’hémagglutinine du virus de la grippe, ou HA, une glycoprotéine composée d’une tête globulaire et d’une tige.
Ajouter les dilutions sur des cellules de mammifères transfectées exprimant l’HA lié à la surface. Les anticorps se lient aux régions de la tige de l’HA, formant des complexes immuns.
Introduire des lymphocytes T modifiés exprimant des récepteurs Fc et codant pour un rapporteur de luciférase sous le contrôle du facteur de transcription NFAT.
Pendant l’incubation, l’anticorps lié à l’HA se lie au récepteur Fc, tandis que la tête HA se lie à l’acide sialique, déclenchant l’activation des lymphocytes T et augmentant la concentration de calcium cytosolique.
Cette activation déclenche une cascade de signalisation qui aboutit à la déphosphorylation de NFAT, déclenchant sa translocation nucléaire.
NFAT se lie à ses éléments de réponse dans le génome, entraînant l’expression de la luciférase.
Ajoutez un substrat bioluminescent perméable aux cellules. La luciférase oxyde le substrat, produisant un signal.
La diminution de la luminescence avec la diminution de la concentration d’anticorps confirme l’activation des lymphocytes T médiée par les anticorps spécifiques de la tige HA.
Pour évaluer la capacité d’anticorps spécifiques d’intérêt à cibler les cellules exprimant l’hémagglutinine, remplacez le surnageant des cultures cellulaires infectées par le virus par 25 microlitres de milieu de test de cytotoxicité cellulaire dépendante des anticorps, ou ADCC.
Ensuite, dans une plaque séparée à 96 puits, effectuez des dilutions 4 fois des anticorps d’intérêt dans un milieu ADCC triple et frais à partir de 10 microgrammes par millilitre selon le schéma, et en prenant soin d’inclure le bruit de fond et aucun contrôle d’anticorps.
Lorsque tout l’anticorps a été dilué, transférez 25 microlitres de l’anticorps dilué dans les puits correspondants appropriés dans la plaque cellulaire expérimentale et placez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire. Après 15 minutes, ajoutez 7,5 fois 10 aux cellules Jurkat effectrices 4èmes modifiées, en exprimant le récepteur Fc approprié par puits dans 25 microlitres de milieu ADCC pour un volume final de 75 microlitres de milieu ADCC par puits.
Remettez la plaque dans l’incubateur de culture cellulaire pendant 6 heures, en décongelant le tampon de substrat de luciférase dans un bain-marie à 37 degrés Celsius pendant la dernière heure de l’incubation. Lorsque le tampon est prêt, ajoutez 75 microlitres de tampon de substrat de luciférase à tous les puits sauf le puits de contrôle d’arrière-plan, et lisez la plaque sur un luminomètre. L’induction de la cytotoxicité à médiation cellulaire dépendante des anticorps dans les cultures cellulaires transfectées ou infectées peut alors être calculée.