Une technique de coloration d’organe entier pour l’imagerie tridimensionnelle du rein

0 vues3:43 min • July 8th, 2025

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Prenez un rein de souris fixe. Les lipides dans les tissus provoquent la diffusion de la lumière, et les pigments provoquent l’absorption de la lumière, rendant les cellules opaques.

Traitez les tissus avec CUBIC-L pour la délipidation et la décoloration. L’alcool aminé contenu dans CUBIC-L élimine les lipides et les pigments, minimisant la diffusion de la lumière et augmentant la transparence.

Les molécules détergentes de CUBIC-L perméabilisent également les cellules.

Introduire un cocktail d’anticorps primaires qui se lie à la tyrosine hydroxylase cytoplasmique dans les neurones des nerfs sympathiques et à l’actine musculaire alpha-lisse dans les cellules musculaires lisses des vaisseaux.

Ajoutez des anticorps secondaires marqués au fluorophore qui se lient aux anticorps primaires.

Effectuer une post-fixation tissulaire pour préserver le traitement par anticorps.

Immergez le tissu dans CUBIC-R+ qui remplace l’eau et correspond à l’indice de réfraction des protéines, minimisant davantage la diffusion de la lumière et augmentant la transparence.

Sous un microscope à fluorescence à feuillet de lumière, des feuillets de lumière éclairent le tissu, excitant les fluorophores.

Capturez la lumière émise par le fluorophore et reconstruisez une image tridimensionnelle, montrant la distribution du nerf sympathique autour des artères du rein.

Pour commencer, effectuez la fixation par immersion immédiatement après la fixation par perfusion et le prélèvement rénal en immergeant le rein dans du paraformaldéhyde à 4 % à 4 degrés Celsius pendant 16 heures. Donnez trois lavages à l’aide de PBS pendant deux heures chacun. Effectuez le processus de décoloration et de délipidation en immergeant le rein fixe dans sept millilitres de 50 % de CUBIC-L dans un tube à fond rond de 14 millilitres avec une légère agitation à température ambiante.

Après six heures, plongez le rein dans sept millilitres de CUBIC-L dans un tube à fond rond de 14 millimètres avec une légère agitation à 37 degrés Celsius pendant cinq jours. Actualisez CUBIC-L tous les jours. Une fois la décoloration et la délipidation terminées, utilisez une cuillère distributrice pour la manipulation de l’échantillon et lavez le rein trois fois avec du PBS à température ambiante pendant deux heures.

Immunocoloration du rein délipidé dans des anticorps primaires dilués dans une solution tampon de coloration avec agitation douce dans un agitateur d’incubateur à 37 degrés Celsius pendant sept jours. Ensuite, lavez le rein avec 0,5 % de Triton X-100 dans du PBS, également connu sous le nom de PBST, à température ambiante pendant une journée. Pour la coloration secondaire des anticorps, traitez le rein avec des anticorps secondaires dans le tampon de coloration dans l’obscurité en secouant doucement à 37 degrés Celsius pendant sept jours. Fixez la tache avec un lavage PBST à température ambiante pendant une journée.

Après la fixation, immergez le rein dans du formaldéhyde à 1 % dans du PB pendant trois heures et lavez-le avec du PBS à température ambiante pendant six heures. Effectuez l’appariement de l’indice de réfraction en immergeant le rein dans sept millilitres de 50 % de CUBIC-R+ dans un tube à fond rond de 14 millilitres avec agitation pendant une journée, suivie d’un traitement avec sept millilitres de CUBIC-R+ avec agitation à température ambiante pendant deux jours.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026