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Commencez par un tube transportant des particules liées à la membrane dérivées de cellules, appelées vésicules extracellulaires, ou VE, qui présentent des compositions antigéniques uniques.
Introduire des nanoparticules magnétiques, les MNP, contenant des anticorps de capture conjugués à des fragments Fab marqués par fluorescence.
Incuber pour faciliter l’interaction entre les MNP avec des antigènes spécifiques des VE, formant des complexes MNP-EV.
Ajoutez de l’immunoglobuline-G pour bloquer les sites de liaison Fc, puis introduisez des anticorps de détection marqués par fluorescence pour colorer d’autres antigènes sur les particules capturées.
Chargez ce mélange sur une colonne magnétique prélavée placée dans un séparateur magnétique.
Le champ magnétique retient les particules capturées par les MNP dans la colonne. Remplacez le tampon pour éliminer les anticorps non liés.
Récupérez la colonne du séparateur magnétique, éluez les particules capturées par MNP avec un tampon et fixez-les pour préserver leur intégrité structurelle.
Analysez les particules immunocapturées par cytométrie en flux ; les signaux de fluorescence distincts des antigènes colorés sont corrélés avec les caractéristiques antigéniques uniques des VE.
Commencez par combiner 60 microlitres de MNP par condition et 5 microlitres de fragments Fab marqués spécifiques de l’isotype de l’anticorps de capture d’intérêt dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre. Incuber la solution à température ambiante pendant 30 minutes en mélangeant continuellement. Ensuite, pré-mouiller un concentrateur 100k avec 300 microlitres de PBS et faire tourner le concentrateur dans une microcentrifugeuse.
A la fin de la centrifugation, purifier les complexes marqués sur une colonne de 100k, suivie d’une autre centrifugation, en remettant en suspension la pastille dans 200 microlitres de PBS frais. Pour capturer les particules d’intérêt, incubez les MNP marqués par anticorps avec la particule d’intérêt pendant la période d’incubation et la température appropriées.
Ensuite, bloquez toute liaison FC non spécifique avec l’espèce appropriée d’anticorps IgG, utilisez un vortex doux et incubez la solution de particules pendant 3 à 5 minutes à température ambiante. Ensuite, ajoutez la concentration recommandée par le fabricant de chaque anticorps de détection aux particules ou des anticorps de contrôle d’isotype à l’échantillon de contrôle d’isotype pour une incubation supplémentaire de 20 minutes à température ambiante.
Pour séparer les particules capturées par le MNP de l’anticorps non lié, placez d’abord une colonne de séparation magnétique dans un aimant séparateur et pré-mouillez la colonne avec 500 microlitres de tampon de lavage. Laissez le tampon de lavage s’écouler à travers la colonne. Ensuite, ajoutez les complexes de particules MNP à la colonne, en recueillant le flux dans un conteneur à déchets.
Lorsque toute la solution complexe a traversé la colonne, lavez la colonne trois fois avec 500 microlitres de tampon de lavage. Ensuite, transférez la colonne dans un tube de 12 x 75 millimètres. Après trois minutes, ajoutez 200 microlitres de PBS, en laissant les billes s’éluer par gravité.
Lorsque tout le PBS a traversé la colonne, ajoutez 200 microlitres de PBS frais dans le tube et fixez les particules avec 200 microlitres de paraformaldéhyde à 4 %. Ensuite, chargez du PBS filtré de 0,22 micron sur un cytomètre en flux et ajustez la tension PMT sur le cytomètre jusqu’à ce que le PBS filtré affiche zéro à très peu d’événements. Ensuite, exécutez les particules capturées par MNP à l’aide d’un faible débit avec un filtre en ligne de 0,04 micron pour le fluide de gaine placé en série derrière le filtre de gaine standard de 0,2 micron afin d’éliminer davantage les faux événements.