Méthode in vitro pour identifier des cellules immunitaires innées et adaptatives résidant dans des poumons murins

0 vues5:54 min • July 8th, 2025

Prélever du tissu pulmonaire murin haché dans un tampon de digestion et incuber à une température physiologique.

Les enzymes tampons décomposent la matrice tissulaire, relâchant les cellules.

Triturez pour dissocier la masse cellulaire et filtrez la suspension à l’aide d’une passoire pour isoler les cellules individuelles.

Centrifugeuse pour éliminer le surnageant avec les débris tissulaires. Incuber les cellules avec un tampon de lyse pour lyser les globules rouges.

Centrifugeuse pour éliminer le surnageant contenant des débris cellulaires. Remettez les cellules en suspension et transférez-les dans une microplaque.

Ajoutez des anticorps pour bloquer les récepteurs Fc, empêchant ainsi la coloration de fond.

Introduire un cocktail d’anticorps marqués au fluorophore ciblant des marqueurs de surface spécifiques sur les cellules immunitaires innées - monocytes, macrophages, cellules dendritiques, cellules tueuses naturelles, neutrophiles, éosinophiles et cellules immunitaires adaptatives - lymphocytes B et T.

Fixer et perméabiliser les cellules. Ajouter des anticorps marqués au fluorophore spécifiques d’un marqueur intracellulaire sur les monocytes, les macrophages, les cellules dendritiques et les éosinophiles.

À l’aide de la cytométrie en flux, classez les cellules immunitaires marquées.

Transférez le poumon dans une boîte de Pétri. Hachez-le à l’aide de deux scalpels fins, puis placez-le dans un tube conique de 50 millilitres. Ajouter 5 millilitres de tampon de digestion pour laver l’assiette. Fixez le couvercle du tube et digérez le poumon pendant 30 minutes sur un agitateur orbital à une vitesse de 150 rotations par minute à 37 degrés Celsius. Arrêtez la réaction en ajoutant 10 millilitres de tampon BSA froid.

Après la digestion, mélangez et dissolvez les morceaux de poumon à l’aide d’une aiguille de calibre 18. Placez une crépine filtrante de 70 micromètres sur un nouveau tube conique de 50 millilitres et transférez le mélange pulmonaire digéré dans la crépine.

Utilisez le côté en caoutchouc d’un piston de seringue de 10 millilitres pour écraser les morceaux de poumon restants sur le filtre et lavez-le avec un tampon BSA. Centrifuger la suspension unicellulaire à 350 g pendant 8 minutes à 7 degrés Celsius. Jetez le surnageant et remettez les cellules en suspension dans 1 millilitre de tampon de lyse ACK. Mélangez la suspension à l’aide d’une pipette de 1 millilitre et incubez-la pendant 90 secondes à température ambiante.

Ajoutez 10 millilitres de tampon BSA froid au mélange réactionnel et centrifugez-le à 350 g pendant 7 minutes à 4 degrés Celsius. Jetez le surnageant. Remettez la pastille en suspension dans un tampon de coloration et comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre. Remettre les cellules en suspension à une concentration de 5 millions de cellules par millilitre pour la coloration de surface.

Transférez 1 million de cellules de 200 microlitres par puits dans une plaque de 96 puits et centrifugez la plaque à 350 g pendant 7 minutes à 4 degrés Celsius. Préparez une solution de bloc de cytométrie en flux en diluant l’anticorps anti-16/32 dans un tampon de coloration.

Remettre les cellules en suspension dans 50 microlitres de la solution de bloc de cytométrie en flux. Incuber la suspension pendant 15 à 20 minutes à 4 degrés Celsius, ou sur de la glace. Ensuite, ajoutez 150 microlitres de tampon de coloration dans la plaque et centrifugez-la à 350 g pendant 5 minutes à 4 degrés Celsius.

Préparez la solution d’anticorps de surface en diluant les anticorps de surface dans un tampon de coloration. Remettez les cellules en suspension dans 50 microlitres de la solution d’anticorps de surface et incubez la plaque à 4 degrés Celsius dans l’obscurité. Ensuite, lavez les cellules deux fois avec un tampon de coloration.

Préparez le tampon de fixation et de perméabilisation en mélangeant trois parties de diluant de fixation et de perméabilisation et une partie de tampon de coloration. Remettez les cellules en suspension dans 50 microlitres du tampon pré-préparé par puits de la plaque de 96 puits, et incubez-les pendant 20 à 25 minutes à 4 degrés Celsius dans l’obscurité.

Diluez le tampon de perméabilisation avec de l’eau déminéralisée purifiée pour préparer un tampon de perméabilisation et utilisez-le pour laver les cellules. Préparez une solution d’anticorps intracellulaires en diluant avec 1 millilitre de tampon de perméabilisation. Remettez les cellules en suspension dans 50 microlitres de la solution d’anticorps intracellulaire diluée par puits de la plaque de 96 puits et incubez pendant 40 minutes à 4 degrés Celsius dans l’obscurité.

Laver les cellules avec un tampon de perméabilisation, puis avec un tampon de coloration. Après le lavage final, remettez les cellules en suspension dans 200 microlitres de tampon de coloration. Acquérir un minimum de 1,5 million de cellules par échantillon sur le cytomètre en flux.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026