Name: Les blessures du nerf Epargnée (SNI) Modèle dallodynie mécanique induite chez la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 44 s
Description: Apprenez à établir le modèle SNI chez la souris pour étudier la douleur neuropathique périphérique. Cette méthode permet de quantifier l'allodynie mécanique avec les filaments de von Frey et d'évaluer des traitements antalgiques potentiels.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ce travail a été soutenu par la Fondation Lundbeck, la Fondation Carlsberg et Dagmar Marshall de la Fondation.

1. mesures de von Frey de base avant la chirurgie Pour la procédure de test de von Frey, s'il vous plaît se référer à la section 5. 2. Anesthésie / préparation <ol><li> Anesthésier les animaux (injection intrapéritonéale d'un mélange de kétamine et 100mg/kg de 15 mg / kg de xylazine). </li><li> Placez l'animal dans un endroit tranquille jusqu'à totalement anesthésié (par exemple recouverte d'une serviette en papier). </li><li> Vérifiez réflexes en pinçant le bout de la queue et les pattes avec une paire de pincettes. Soyez sûr que les animaux ne réagissent pas avant de procéder. </li><li> Sous-cutanée d'injecter (zone arrière de l'épaule) 0.5ml solution saline isotonique avec des antibiotiques, par exemple, l'ampicilline (pour éviter la déshydratation et de prévenir l'infection, bien que cela est une procédure chirurgicale mineure). </li><li> Utiliser un rasoir électrique, raser le champ opératoire de légèrement en dessous de la zone du genou à la région de la hanche (pour les droitiers personnes du membre postérieur gauche est recommandé). </li><li> Appliquer une pommade ophtalmique pour les yeux avec un coton-tige-laine. </li><li> Placez l'animal sur son côté droit et placer le membre postérieur gauche sur une petite plate-forme de la tenir élevée. Fixer la jambe avec du ruban adhésif. </li><li> Désinfecter le champ opératoire avec une alternance de gommages d'éthanol et de l'extérieur de la bétadine site chirurgical. </li></ol> 3. Chirurgie <ol><li> Localisez le genou avec le pouce de votre main gauche et utiliser un scalpel pour faire une application. Une incision cm dans le sens longitudinal proximal au genou. </li><li> Ouvrez la peau par dissection en utilisant la pointe d'une paire de ciseaux stériles. </li><li> Séparez la couche musculaire par dissection juste à côté du vaisseau sanguin clairement visible, près de l'os cuisse (fémur). Si fait correctement, les couches musculaires se séparer facilement sans aucun saignement, révélant le nerf sciatique droite en dessous des muscles. Si le saignement se produit par exemple par des dommages à un vaisseau sanguin près du genou, stérile à usage coton bourgeons ou des morceaux de regard pour absorber le sang. Appuyez sur jusqu'à ce que le saignement s'arrête. </li><li> Placez la souris sous un microscope stéréo et séparer délicatement les muscles avec une paire de pinces stériles (n ° 2) de visualiser le nerf sciatique. Rétracteurs peut également être appliquée. </li><li> Identifier la zone où les branches du nerf saphène du nerf sciatique. Le nerf sural est la plus petite des trois branches, ramification vers la droite dans la jambe gauche. </li><li> Appliquer de suture (6-0 sutures) autour des deux autres branches qui sont toujours en cours en parallèle (les nerfs tibial et fibulaire commun), en faisant bien attention de ne pas toucher la branche saphène. Ceci est une étape critique que le nerf sural doit être laissé intact. </li><li> Faire un noeud serré chirurgicale. Si le premier nœud est serré, les contractions du membre sera observée. </li><li> Prenez les nerfs à couper en dessous de la suture avec une paire de pinces (n ° 5) et couper les nerfs dessus et en dessous une pince à épiler avec une petite paire de ciseaux. Par-dessus la première coupe de la paire de pinces à épiler, en tirant des nerfs est évité. </li><li> Couper les extrémités de suture avec une paire de ciseaux micro et fermer doucement la couche musculaire. Ajouter une goutte de la lidocaïne sur la plaie et suture avec noeuds chirurgicales. </li></ol> 4. Après la chirurgie <ol><li> Vérifiez si la pommade oculaire est encore suffisante. </li><li> Placez la souris dans une cage propre sous une serviette de papier dans une posture confortable. Si la chambre est froide, placez un pad thermique sous une partie de la cage (seulement sous une partie de la cage de l'animal doit être en mesure d'échapper à une zone de froid si on préfère). </li><li> S'assurer que l'eau facilement accessible et Chow. </li></ol> 5. von Frey tests (de base et à partir du jour après la chirurgie) <ol><li> Placez la souris en rouge cylindres de plastique de couleur placée sur une table treillis métallique deux jours et un jour avant la chirurgie. S'habituer pendant 15 min dans des bouteilles avant le test. La couleur rouge des cylindres permet aux souris de rapidement se détendre comme ils ne peuvent pas se voir et se trouvent dans une zone plus sombre. </li><li> Vérifiez que les souris sont calmes et appliquer von Frey filaments à la partie latérale de la patte: En commençant par le filament 0,02 g, appliquez d'abord la force à la patte gauche cinq fois sur une période totale de 30 secondes (environ 2 secondes par stimulus) et de évaluer la réaction de la souris après chaque application. Répétez l'opération avec le même filament et la patte gauche de toute autres souris, puis recommencer avec la patte droite de la première souris avant de passer à filament suivante, par exemple: <ul><li> Souris 1: patte gauche 5 fois avec filament 0,02 g </li><li> Souris 2: patte gauche 5 fois avec filament 0,02 g etc </li><li> Souris 1: patte droite 5 fois avec filament 0,02 g </li><li> Souris 2: patte droite 5 fois avec filament 0,02 g etc </li><li> Souris 1: patte gauche 5 fois avec filament 0,04 g </li><li> Souris 2: patte gauche 5 fois avec filament 0,04 g etc </li></ul></li><li> Réponse dans trois des cinq stimuli est considéré comme une réaction positive. Filaments-dessus SEUILSD peut être utilisée pour vérifier le niveau de seuil. Réponse = retrait de la patte soudaine, brutale broncher, patte soudaine lécher. </li></ol> 6. Les résultats représentatifs <img src="/files/ftp_upload/3092/3092fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Von Frey tests sur C57BL / 6 ans des souris âgées de 8-10 semaines a été effectuée un jour avant l'opération et à plusieurs reprises après la chirurgie. 4-8 animaux ont été inclus dans chaque groupe. Von Frey tests sur le côté opéré est représenté par le côté homolatéral et de contrôle non-exploité est représenté par controlatéral. Le lendemain de la chirurgie des animaux de développer une hypersensibilité significatif sur la patte exploité tandis que le non-exploité n'est que légèrement affectée par rapport à des souris une opération fictive. (* &lt;0,05, ** &lt;0,01, *** &lt;0,001 par rapport ipsilatéral à controlatéral).

<ol><li>Costigan, M., Scholz, J., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuropathic+pain%3A+a+maladaptive+response+of+the+nervous+system+to+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neuropathic pain: a maladaptive response of the nervous system to damage.</a> Annu. Rev. Neurosci. 32, 1-32 (2009).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87, 149-158 (2000).</li>
<li>Bourquin, A. -F., Süveges, M., Pertin, M., Gilliar, N., Sardy, S., Davidson, A. C., Spahn, D. R., Decosterd, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+and+analysis+of+mechanical+allodynia-like+behavior+induced+by+spared+nerve+injury+%28SNI%29+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Assessment and analysis of mechanical allodynia-like behavior induced by spared nerve injury (SNI) in the mouse.</a> Pain. 122, 14.e1-14.e14 (2006).</li>
<li>Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+assessment+of+tactile+allodynia+in+the+rat+paw%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw.</a> J. Neurosci. Methods. 53, 55-63 (1994).</li>
<li>Bennett, G. J., Xie, Y. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+peripheral+mononeuropathy+in+rat+that+produces+disorders+of+pain+sensation+like+those+seen+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A peripheral mononeuropathy in rat that produces disorders of pain sensation like those seen in man.</a> Pain. 33, 87-107 (1988).</li>
<li>Seltzer, Z., Dubner, R., Shir, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+behavioral+model+of+neuropathic+pain+disorders+produced+in+rats+by+partial+sciatic+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A novel behavioral model of neuropathic pain disorders produced in rats by partial sciatic nerve injury.</a> Pain. 43, 205-218 (1990).</li>
<li>Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+and+sensitive+method+for+measuring+thermal+nociception+in+cutanous+hyperalgesia%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutanous hyperalgesia.</a> Pain. 32, 77-88 (1988).</li>
<li>Erichsen, H. K., Blackburn-Munro, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+characterization+of+the+spared+nerve+injury+model+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Pharmacological characterization of the spared nerve injury model of neuropathic pain.</a> Pain. 98, 151-161 (2002).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Les étapes critiques Dommages au nerf sural doit être évitée afin d&#39;étudier les changements pathologiques dans les lésions du nerf saphène intacte suivants pour les nerfs tibial et fibulaire commun. Les dommages collatéraux du nerf sural peut conduire à la paralysie et peut donc être visualisé comme glisser du membre opéré postérieurs. Seul le côté latéral de la patte est innervée par le nerf sural épargnée et, par conséquent, seule cette zone développe une neuropathie. Test d&#39;autres domaines, innervée par les nerfs sectionnés, peut fortement biais de l&#39;évaluation de seuil mécanique modifiée. D&#39;éventuelles modifications D&#39;autres types de ligatures peuvent être complémentaires en termes d&#39;étudier les conditions suivantes douleur pathologique des lésions nerveuses périphériques, tels que les blessures constriction chronique [5] ou la ligature partielle du nerf [6]. Chaque procédure expérimentale dans les résultats des changements phénotypiques distinctes qui devraient être considérés avant de post-opératoires d&#39;essai. Par ailleurs, d&#39;autres tests sensoriels tels que l&#39;hyperalgésie thermique peut être appliquée [7], bien que ce phénotype est moins robuste SNI suivant. Les applications futures Cette technique peut être utilisée pour les tests de médicaments altérant le développement ou le maintien de l&#39;allodynie mécanique [8]. Analyse du nerf sciatique, les ganglions de la racine dorsale (DRG) et / ou la moelle épinière lombaire permettre à la recherche des mécanismes moléculaires responsables du phénotype induit. L&#39;expérimentation animale a été réalisée selon bonnes pratiques de laboratoire en pleine conformité avec la réglementation danoise et européenne. Toutes les expériences ont été approuvés par l&#39;expérimentation animale danoises Inspection du ministère de la Justice (2006/561-1206 nombre permission).

<table border="1"><tbody><tr><td> Anesthésie: kétamine et de xylazine </td><td> Scalpel </td></tr><tr><td> Pommade ophtalmique </td><td> Paire de pinces nr. 2 </td></tr><tr><td> Rasoir électrique </td><td> Paire de pinces nr. 5 </td></tr><tr><td> Gants </td><td> Paire de ciseaux pour dissection </td></tr><tr><td> 70% (v / v) d&#39;éthanol </td><td> Ciseaux Micro </td></tr><tr><td> Ouate bourgeons / regards </td><td> 6,0 Prolène non résorbable </td></tr><tr><td> Microscope stéréo </td><td> 2 x porte-aiguilles </td></tr><tr><td> Ruban adhésif </td><td> Heat pad </td></tr><tr><td colspan="2"> von Frey filaments (0,02 - 2,0 g pour les souris) (Stoelting) </td></tr></tbody></table>

les blessures du nerf epargnée (sni) modèle d&#39;allodynie mécanique induite chez la souris

The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

La douleur neuropathique périphérique est une affection chronique grave des douleurs qui peuvent résulter d&#39;un traumatisme des nerfs sensoriels dans le système nerveux périphérique. La blessure épargné nerveuses (SNI) du modèle induit des symptômes de la douleur neuropathique comme l&#39;allodynie mécanique à savoir la douleur due à des stimuli tactiles qui n&#39;ont normalement pas provoquer une réaction douloureuse [1]. Le modèle de souris SNI implique la ligature de deux des trois branches du nerf sciatique (nerf tibial et le nerf fibulaire commun), tandis que le nerf sural est laissé intact [2]. Les résultats des lésions dans l&#39;hypersensibilité marquée dans la zone latérale de la patte, qui est innervé par le nerf sural épargné. Le côté non opéré de la souris peut être utilisée comme contrôle. Les avantages du modèle SNI sont la robustesse de la réponse et qu&#39;il ne nécessite pas de compétences d&#39;experts de microchirurgie. Le seuil de réponse à la douleur mécanique est déterminée par des essais avec des filaments de von Frey de force de flexion croissante, qui sont répétitivement pressé contre la surface latérale de la patte [3], [4]. Une réaction à la douleur positif est défini comme retrait de la patte soudain broncher et / ou de patte léchage induit par le filament. Une réponse positive dans trois des cinq stimuli répétitifs est défini comme le seuil de douleur. Tel que démontré dans le protocole vidéo, souris C57BL / 6 expériences allodynie profonde dès le jour suivant la chirurgie et de maintenir ce pendant plusieurs semaines.

Le modèle du nerf Epargnée blessures animal est décrit ici comme un modèle murin de douleur neuropathique périphérique suivantes dénervation partielle du nerf sciatique par lesioning les branches du tibia et du nerf péronier commun, laissant le nerf saphène reste intacte. Modification du comportement résultant d&#39;allodynie mécanique est quantifiée par des filaments de von Frey.

Les blessures du nerf Epargnée (SNI) Modèle d&#39;allodynie mécanique induite chez la souris

La douleur neuropathique périphérique est une affection douloureuse chronique sévère qui peut résulter d'un traumatisme des nerfs sensoriels du système nerveux périphérique. Les fibres épargnées...

L'objectif général de cette procédure est d'établir un modèle murin de douleur neuropathique suite à une lésion nerveuse périphérique. Cela est réalisé en anesthésiant tout d'abord la souris, en plaçant la patte arrière dans la position appropriée et en exposant le nerf sciatique. Ensuite, une lésion nerveuse définie est induite en suturant deux branches du nerf sciatique, laissant la troisième branche intacte.Dans cette vidéo, les nerfs tibial et péronier commun sont suturés et sectionnés, tandis que le nerf sorel est préservé. Toutefois, d'autres combinaisons peuvent être appliquées après une lésion nerveuse. Le Misa est placé dans un récipient cylindrique sur une table en treillis métallique et laissé s'habituer ; le Misa est ensuite testé à l'aide du test de Von Frey, qui permet une mesure quantitative de l'allodinie mécanique induite.Les filaments de Von Frey calibrés sont appliqués en ordre croissant sur la région latérale du pore opéré. Afin de détecter le seuil mécanique du membre postérieur opéré par rapport au membre non opéré, une réponse douloureuse est définie par un retrait rapide du pore, des sursauts et/ou un léchage du pore suite à la stimulation par le filament. En fin de compte, le développement d'une allodynie mécanique dans la patte opérée par rapport au côté non opéré peut être visualisé en traçant le seuil mécanique en fonction du temps, ce qui permet d'étudier diverses voies moléculaires ou traitements médicamenteux après une lésion du nerf périphérique.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des lésions des nerfs périphériques, telles que les voies moléculaires impliquées dans le développement de la douleur neuropathique. En outre, des médicaments visant à entraver le développement de la douleur ou à atténuer les symptômes douloureux peuvent également être testés. Deux jours avant la chirurgie, placer les souris dans des cylindres en plastique de couleur rouge positionnés sur une table en treillis métallique, dans une pièce calme. Habituer les souris aux cylindres pendant 15 minutes avant le test. Au bout de 15 minutes, vérifier que les souris sont calmes, puis appliquer les filaments de von Frey par ordre croissant, en commençant par le filament de 0,02 gramme. Appliquer d'abord la force sur la zone latérale du pore gauche cinq fois sur une période totale de 30 secondes, et évaluer la réaction de la souris après chaque application. Répéter avec le même filament sur le pore gauche de l'autre souris, puis recommencer avec le pore droit avant de passer au filament suivant.Une réaction positive à la douleur est définie par un retrait soudain de la patte, un écartement des orteils et/ou un léchage excessif de la patte induit par le filament ; une réponse positive à trois stimuli sur cinq stimulations répétitives est définie comme le seuil de la douleur. Anesthésier les animaux par injection intrapéritonéale d'un mélange de kétamine et de xylazine, puis placer les animaux dans un endroit calme jusqu'à ce qu'ils soient complètement anesthésiés. Vérifier les réflexes en pinçant l'extrémité de la queue et la paume des pattes avec une paire de pinces, en s'assurant que les animaux ne réagissent pas avant de poursuivre.Ensuite, injecter par voie sous-cutanée 0,5 millilitre de solution saline isotonique contenant des antibiotiques afin d'éviter la déshydratation et de prévenir les infections. À l'aide d'un rasoir électrique, raser le champ opératoire de la région légèrement en dessous du genou jusqu'à la région de la hanche pour une personne droitière. Pour les personnes travaillant sur le membre hind gauche, cette zone peut être la plus pratique. Appliquer un onguent sur les yeux à l'aide d'un coton-tige.Placez l’animal sur son côté droit et posez la patte postérieure gauche sur une petite plateforme afin de la maintenir surélevée ; fixez la patte à l’aide de ruban adhésif. Une fois l’animal positionné, désinfectez le champ opératoire à l’aide de mouvements alternés d’éthanol et de Bétadine, en partant du site chirurgical vers l’extérieur, puis laissez sécher. Localisez le genou à l’aide du pouce de la main gauche et utilisez un scalpel pour pratiquer une petite incision dans le sens longitudinal, juste au-dessus du genou. Ouvrez la peau par dissection émoussée à l’aide de la pointe d’une paire de ciseaux.Ensuite, placer la souris sous un microscope stéréo et localiser le vaisseau sanguin clairement visible près du fémur. Puis séparer la couche musculaire par une dissection émoussée. Si l'opération est effectuée correctement, les couches musculaires se sépareront facilement sans saignement, mettant ainsi à nu le nerf sciatique situé juste en dessous des muscles.Si un saignement apparaît en raison d'un dommage à un vaisseau sanguin voisin, utilisez des bâtonnets de coton ou des morceaux de gaze pour absorber le sang en exerçant une pression jusqu'à l'arrêt du saignement. Écartez soigneusement les couches musculaires séparées à l’aide d’une pince n°2. Pour visualiser le nerf sciatique, appliquez des rétracteurs si nécessaire et identifiez l’endroit où le nerf sural se ramifie à partir du nerf sciatique.Le nerf sural est le plus petit des trois rameaux qui se divisent vers la droite dans la patte gauche. Chez les souris C57BL/6, appliquer un point de suture 6-0 serré autour des deux autres rameaux, qui continuent à courir en parallèle, en prenant bien soin de ne pas toucher le rameau sural.Saisir les nerfs à couper sous le point de suture à l’aide d’une pince n°5, puis sectionner les nerfs d’abord au-dessus, puis en dessous de la pince avec une petite paire de ciseaux, afin d’éviter de tirer sur les nerfs. Une fois les nerfs sectionnés, couper les extrémités du fil de suture avec une paire de ciseaux, puis refermer doucement la couche musculaire. L’anneau de suture n’est généralement pas nécessaire.Ajouter une goutte de lidocaïne sur la plaie et suturer avec des nœuds chirurgicaux. Vérifier si la pommade oculaire est encore suffisante, puis placer la souris dans une cage propre avec une serviette en papier. En position confortable, fournir de l’eau et de la nourriture facilement accessibles.Si la pièce est froide, placez un tapis chauffant sous une partie de la cage après un jour de récupération postopératoire, puis recueillez les mesures von Frey chez les souris opérées et les souris soumises à une intervention factice comme décrit pour la collecte des mesures de base. Ici, les résultats du test von Frey effectué sur des groupes de quatre à six souris sont présentés, tant un jour avant la chirurgie que quotidiennement pendant deux semaines après l'intervention. Le jour suivant la chirurgie, les animaux développent une hypersensibilité mécanique significative au niveau de la patte opérée ou ipsilatérale, tandis que la patte non opérée ou controlatérale reste inchangée.Le seuil du côté controlatéral est légèrement réduit par rapport aux souris témoins, ce qui indique qu'une allodynée post-infarctus pourrait survenir dans une moindre mesure chez les souris opérées. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment localiser et manipuler les branches du nerf S chez une souris anesthésiée. L'essai de fray permet en outre une lecture fonctionnelle quantitative pour évaluer la réponse d'animaux transgéniques ou de médicaments après une lésion partielle du nerf périphérique.

the-spared-nerve-injury-sni-model-induced-mechanical-allodynia

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

Grâce à la simplicité de la chirurgie et le résultat robuste du comportement, de constriction chronique du nerf sciatique est l'un des modèles animaux pré-éminents de la douleur neuropathique. Dans les 24 heures suivant la chirurgie, hypersensibilité à la douleur est établi et peut être mesurée quantitativement l'aide d'un von Frey esthésiomètre (essais mécaniques) et le compteur analgésie plantaire (essai thermique).

Constriction chronique du nerf sciatique et les essais hypersensibilité à la douleur chez le rat

Cette vidéo montre comment tester la fonction nerveuse sensorielle dans un modèle murin en dénervant chirurgicalement un côté et en laissant l’autre comme témoin. La réponse à la stimulation mécanique confirme le rôle des nerfs sensoriels.

Test de la fonction nerveuse sensorielle dans un modèle de souris dénervée chirurgicalement

Le modèle de la section du nerf tibial est un modèle bien toléré, validé et reproductible de l'atrophie du muscle squelettique. Le protocole chirurgical de modèle est décrit et démontré dans C57Black6 souris.

Tibial Nerve Transection - un modèle standardisé pour dénervation induit l&#39;atrophie musculaire chez les souris

La douleur neuropathique est une conséquence d'une lésion ou d'une maladie affectant le système somatosensoriel. Le «modèle de manchette» de la douleur neuropathique chez les souris se compose de l'implantation d'un brassard de polyéthylène autour de la branche principale du nerf sciatique. L'allodynie mécanique est testée en utilisant des filaments de von Frey.

Le nerf sciatique menottes modèle de douleur neuropathique chez les souris

Nous présentons un protocole chirurgical détaillant comment effectuer une axotomie par coupure ou écrasement sur le nerf facial chez la souris. L’axotomie du nerf facial peut être utilisée pour étudier la réponse physiologique aux lésions nerveuses et tester des techniques thérapeutiques.

Visage axotomie des nerfs chez la souris: Un modèle pour étudier motoneurone réponse à une blessure

La chirurgie modifiée est une méthode simplifiée pour le modèle de lésion nerveuse épargnée par la souris ou le rat qui ne nécessite qu’une seule ligature et une incision pour blesser les nerfs péroniers et suraux communs.

Modèle modifié de chirurgie de lésion nerveuse épargnée de douleur neuropathique chez la souris

Le test mécanique d’évitement des conflits est utilisé comme une lecture non réflexive de la sensibilité à la douleur chez la souris qui peut être utilisée pour mieux comprendre les réponses affectives-motivationnelles dans une variété de modèles de douleur murine.

Test mécanique d’évitement des conflits pour mesurer le comportement de la douleur chez la souris

La ligature partielle du nerf sciatique induit une douleur neuropathique chronique de longue durée, caractérisée par des réponses exagérées aux stimuli thermiques et mécaniques. Ce modèle murin de douleur neuropathique est couramment utilisé pour étudier des thérapies innovantes pour la gestion de la douleur. Cet article décrit en détail l’intervention chirurgicale pour améliorer la standardisation et la reproductibilité.

Ligature partielle du nerf sciatique : un modèle murin de douleur neuropathique chronique pour étudier l’effet antinociceptif de nouvelles thérapies

Les lésions de constriction chronique du nerf infraorbitaire distal chez la souris induisent des changements dans le comportement spontané (augmentation de l’activité de toilettage du visage) et le comportement nocifensif en réponse à la stimulation tactile (hyperréactivité à la stimulation des cheveux de von Frey) qui sont des signes de douleur continue et d’allodynie et servent de modèle pour la douleur neuropathique du trijumeau.

Lésion de constriction chronique du nerf sous-orbitaire distal (DIoN-CCI) chez la souris pour étudier la douleur neuropathique du trijumeau

Ce protocole présente un modèle de rat reproductible utilisant des nerfs sensoriels pour imiter la douleur du névrome humain et évaluer les traitements chirurgicaux, offrant ainsi un outil précieux pour la recherche translationnelle sur le névrome.

Nouveau modèle chirurgical de rongeur pour l’étude des options de traitement de la douleur du névrome à l’aide de la réinnervation musculaire ciblée par le nerf saphène

Apprenez à établir le modèle SNI chez la souris pour étudier la douleur neuropathique périphérique. Cette méthode permet de quantifier l'allodynie mécanique avec les filaments de von Frey et d'évaluer des traitements antalgiques potentiels.

Les blessures du nerf Epargnée (SNI) Modèle d'allodynie mécanique induite chez la souris

Explorer plus de vidéos