JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:05 min • July 8th, 2025
Prenez une tranche de cerveau de souris transfectée immobilisée dans une chambre d’enregistrement électrophysiologique perfusée avec de l’aCSF oxygéné.
Cette tranche contient les terminaisons axonales des neurones thalamiques exprimant des canaux ioniques sensibles à la lumière fusionnés à une protéine fluorescente.
Visualisez les axones des neurones thalamiques fluorescents et sélectionnez un neurone pyramidal.
Avancez une pipette enregistreuse contenant une électrode dans une solution intracellulaire vers le neurone sélectionné avec une légère pression positive.
La pression positive crée une fossette sur la membrane neuronale au contact.
Relâchez la pression pour former un joint à haute résistance.
Réglez le potentiel de membrane sur une valeur négative constante.
Appliquez une impulsion de pression négative pour rompre la membrane, ce qui permet d’obtenir une configuration à cellules entières.
Illuminez les terminaisons axonales, activant les canaux sensibles à la lumière et dépolarisant les membranes neuronales, déclenchant des potentiels d’action.
Des neurotransmetteurs excitateurs sont libérés, se liant aux récepteurs du neurone enregistré, provoquant un afflux de cations.
Enregistrez les courants post-synaptiques excitateurs résultants, indiquant une connexion synaptique directe entre les neurones.
Pour effectuer un enregistrement par patch clamp de cellules entières, transférez doucement une tranche de cerveau contenant le complexe hippocampique dans la chambre d’enregistrement. Perfuser en continu la chambre d’enregistrement avec 34 degrés Celsius ACSF bouillonné de carbogène à 2 à 3 millilitres par minute. Examinez brièvement l’expression de la GFP chronos dans les terminaisons axonales de la région d’intérêt avec un éclairage LED bleu à un grossissement de 4x.
Passez à un objectif d’immersion 63x et ajustez la mise au point. Vérifiez les axones exprimant Chronos GFP et choisissez un neurone pyramidal pour l’enregistrement par patch. Ensuite, remplissez une pipette avec une solution interne à base de gluconate de potassium. Montez-le dans le support de pipette sur la tête. Patchez la cellule en configuration de pince de tension.
Approchez-vous du neurone identifié et appuyez délicatement la pointe de la pipette sur le soma. La pression positive doit produire une fossette à la surface de la membrane. Ensuite, relâchez la pression pour créer un joint giga ohm. Une fois scellé, réglez la tension de maintien à moins 65 millivolts.
Brisez la membrane avec une forte impulsion de pression négative. Enregistrer en pince de courant ou de tension les réponses postsynaptiques à la stimulation de champ entier de 475 nanomètres LED de fibres afférentes exprimant le chronos. Stimulez avec des trains de 10 stimulations d’une durée de 2 millisecondes à 20 hertz.
Cet article décrit une méthode d'enregistrement en configuration whole-cell par électrode à patch sur des neurones pyramidaux dans des tranches de cerveau de souris. La technique consiste à utiliser des canaux ioniques sensibles à la lumière afin de visualiser et de stimuler l'activité neuronale.
Cette méthode permet une interrogation précise de la connectivité synaptique dans des circuits neuronaux pertinents pour la maladie, en appuyant la validation de cibles grâce à la confirmation fonctionnelle des voies neuronales. En combinant une stimulation optogénétique à une lecture électrophysiologique, elle fournit des preuves quantitatives et causales des mécanismes des circuits, renforçant ainsi la confiance prédictive dans le choix préclinique des cibles. L'approche réduit les risques associés aux hypothèses sur les cibles en établissant des liaisons synaptiques directes avant le criblage de composés.
La méthode s'intègre aux flux de travail de la phase précoce de découverte, où la validation ciblée au niveau du circuit précède l'identification des composés candidats, offrant ainsi des connaissances mécanistiques avant les campagnes de criblage de composés.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026