JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurosciences
0 vues • 3:58 min • June 17th, 2025
Fixez une souris transgénique anesthésiée dans un cadre stéréotaxique avec son crâne exposé.
Cette souris exprime la Cre recombinase dans les cellules gliales.
Positionnez le bras stéréotaxique qui maintient le tube capillaire sur le crâne et alignez-le au-dessus du bregma.
Ajustez les axes stéréotaxiques pour un ciblage précis.
Percez un trou sur le site cible, en vous assurant que la dure-mère reste intacte. Retirez les fragments d’os.
Rincer le tube capillaire avec un tampon. Aspirez une bulle d’air, puis chargez le virus adéno-associé portant des gènes de reprogrammation neuronale inactive et de protéine fluorescente.
Abaissez le tube capillaire à la profondeur cible et injectez la solution virale dans la région riche en cellules gliales.
Rétractez soigneusement le tube pour éviter le reflux.
Fermez l’incision et permettez la récupération.
Les virus internalisés délivrent des gènes inactivés flanqués de loxP au noyau glial. La cre recombinase les inverse, activant les gènes de reprogrammation neuronale et conduisant à la conversion neuronale. Les interneurones reprogrammés expriment la protéine fluorescente sous le promoteur spécifique du neurone.
Pour injecter des facteurs de reprogrammation, placez une souris anesthésiée dans le cadre stéréotaxique, administrez une analgésie appropriée au début de l’opération, puis amenez l’extrémité du capillaire en verre de l’aiguille d’injection juste au-dessus du bregma. Assurez-vous que l’embout capillaire est parfaitement droit dans les plans A-P et M-L. Réinitialisez les valeurs M-L et A-P à 0,0 sur le compteur de coordonnées numériques.
Pour vous assurer que la tête de l’animal est dans une position parfaitement plate, utilisez le compteur de coordonnées numériques pour mesurer la valeur de la coordonnée D-V lorsque le bras A-P est à plus 2,0 et moins 2,0, ainsi que lorsque le bras M-L est à plus 2,0 et moins 2,0. Ajustez la hauteur de la barre de dent et des barres d’oreille en conséquence. Ensuite, soulevez légèrement la seringue et percez un trou à l’aide d’une perceuse dentaire aux coordonnées d’injection.
Commencez à forer sur le site, en travaillant de manière circulaire et douce. Ensuite, placez un morceau de gaze de coton sur l’incision ouverte et rincez la seringue avec une solution saline. Après le rinçage, prélevez une bulle d’air, puis 1 microlitre de solution contenant le vecteur viral. Assurez-vous que la solution virale peut être facilement visualisée sous la bulle d’air.
Ensuite, abaissez la seringue en progressant lentement jusqu’à la profondeur souhaitée et assurez-vous que la trajectoire est exempte de fragments d’os. Par la suite, injectez 1 microlitre de la solution virale à raison de 0,4 microlitre par minute. Lorsque l’injection est faite, attendez deux minutes pour la diffusion avant le retrait de la seringue.
Après la diffusion, rétractez lentement la seringue jusqu’à ce que l’extrémité du capillaire soit complètement retirée du cerveau. Ensuite, suturez soigneusement l’incision et retirez l’animal du cadre stéréotaxique. Surveiller l’animal dans un poste postopératoire jusqu’à ce qu’il reprenne conscience.
Les animaux sont gardés jusqu’à 12 semaines après l’injection du virus pour permettre aux cellules gliales résidentes de se reprogrammer en neurones matures.
Cet article décrit une méthode permettant de reprogrammer des cellules gliales en neurones à l'aide de virus associés aux adénovirus dans un modèle murin transgénique. Le protocole implique des injections stéréotaxiques précises pour délivrer des vecteurs viraux activant des gènes de reprogrammation neuronale.
Cette méthode permet la conversion directe in vivo de cellules gliales en neurones fonctionnels, offrant une approche mécanistique pour la validation de cibles dans les modèles de maladies neurodégénératives. En démontrant une délivrance et une activation précises de facteurs de reprogrammation dans un contexte cellulaire défini, elle contribue à réduire les risques associés aux hypothèses thérapeutiques impliquant la modulation du destin cellulaire. La technique fournit une plateforme reproductible pour évaluer l'engagement de la cible et les résultats phénotypiques dans les flux de travail de découverte préclinique.
La méthode s'inscrit dans la continuité entre la découverte précoce et le stade préclinique en permettant une modulation axée sur une hypothèse de l'identité cellulaire au sein d'un système nerveux intact, soutenant ainsi les décisions d'aller ou de ne pas aller plus loin fondées sur la validation de la cible et la conversion phénotypique.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026