Name: Préparation de Synaptoneurosomes de Mouse Cortex en utilisant un gradient de densité discontinu de Percoll-sucrose (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: Apprenez à préparer des synaptoneurosomes actifs à partir du cortex de souris en utilisant un gradient de densité discontinu de Percoll-sucrose. Cette méthode minimise les dommages mécaniques et la toxicité pour étudier la traduction protéique synaptique.

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Nous tenons à remercier BK août de l&#39;Université de Wisconsin-Madison Facilité microscope électronique pour la microscopie électronique. Ce travail a été soutenu par des subventions du NIH R01-DA026067 et P30-HD03352 (pour la JSM).

1. Les préparatifs 1-4 <ol><li> Préparer tampon de 500 mL de milieu de gradient (GM) en mélangeant 50 ml d'une suspension de 2,5 M de saccharose, 2,5 mL d'un 1M Tris-HCl, pH 7,5 stock, et 0,1 mL d'une EDTA 0,5 M, pH 8,0 milli-actions avec Q eau au volume. Filtre stériliser la solution, et de stocker aliquot congelé. </li><li> Préparer un stock de 1000x de tétrodotoxine (TTX) en faisant une solution à 1 mM dans milli-Q H 2 O. Des aliquotes de TTX peuvent être stockés à -20 ° C. </li><li> Préparer tampon de stimulation 10x en faisant une solution de Tris 100 mM (pH 7,5), 5 mM Na 2 HPO 4, 4 mM de KH 2 PO 4, 40 mM NaHCO 3, et 800 mM de NaCl dans l'eau milli-Q. Stock peut être conservé à 4 ° C. </li><li> Pré-cool centrifugeuses à 4 ° C. </li><li> Préparer une solution stock de isosmotique Percoll (SIP) en ajoutant 9 volumes de Percoll (18 ml) à 1 volume de 2,5 M de saccharose (2 ml) dans de l'eau milli-Q et bien mélanger. </li><li> Préparer les 3, 10, 15, et les couches de gradient de 23% en additionnant les montants respectifs de la SIP à GM de tampon et de mélange de chaque: </li></ol><img alt="Tableau 0" src="/files/ftp_upload/3196/3196table0.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tableau 0"><ol start="7"><li> Verser couches de gradient par pipetage 2 ml de chacun des 23, 15, 10, et 3% des solutions de Percoll isosmotique dans les tubes avec des bouchons centrifugeuse Beckman utilisant un P1000 Gilson Pipetman. L'interface entre les couches doivent être clairement perceptible sans mélange des couches. Stocker les gradients à 4 ° C pendant au moins 20 min avant utilisation. Les gradients peuvent être stockées pendant jusqu'à 24 heures le même jour bien que l'utilisation est recommandée. [Le personnel de laboratoire inexpérimentés peuvent pratiquer des gradients de la préparation en ajoutant du colorant bleu pour les solutions isomotic Percoll pour la visualisation des interfaces couche.] </li></ol> 2. Une dissection de souris <ol><li> S'assurer que toutes élevage de souris et de l'euthanasie procédures sont exécutées conformément aux directives du NIH et de l'Université. Euthanasier les chiots (âge P13 à P21) par asphyxie de dioxyde de carbone ou par une méthode approuvée par le protocole d'animaux. </li><li> Pin de la souris sur une planche de dissection et de pulvérisation à l'arrière du cou et la tête avec de l'éthanol. En utilisant une paire de ciseaux pointus couper à travers la moelle épinière à la base du crâne, enlever la peau du haut du crâne, le crâne coupé latéralement entre l'os pariétal et l'os interpariétales ou entre le cerveau et les régions du cortex. Ensuite, couper le crâne de la base du nez (long de la suture sagittale), retirer soigneusement les os pariétal douce en tirant chaque hémisphère sur le côté et retirer le cortex avec une spatule. Insérer la spatule dans le cerveau au-dessus du cervelet et le cortex évider et le placer dans tampon glacé GM. Procéder immédiatement à l'étape d'homogénéisation. Ne laissez pas les cortex s'asseoir dans tampon glacé pour très longtemps que ce sera nuire à la formation des SNS. </li></ol> 3. Préparation de l'homogénat et SN 1-4 <ol><li> Rincez le cortex dans glacée GM tampon et de transfert à deux corticales à un Dounce verre homogénéisateur contenant 5 ml de tampon froid GM. </li><li> Homogénéisé doucement le cortex avec des coups de 5-10 au pilon en vrac (pilon "A"), suivi par des traits de 5-10 au pilon serrés (pilon "B"). Strokes devrait être rapide, mais assez lentement pour ne pas provoquer des bulles d'air. Une photo de l'homogénat après homogénéisation est dans le schéma 1. Le nombre de coups peut varier dépendant de l'homogénéisateur individuelles et pilons qui l'accompagne. Lorsque vous avez terminé les gradients devrait donner une forte bande SN, sinon, ajuster le nombre de coups. </li><li> Transférer le broyat à une conique 15 ml et centrifuger à 1000xg pendant 10 min à 4 ° C dans un rotor swing (Allegra 6KR centrifugeuse) afin de culot cellulaire des débris et des noyaux. Une image de l'homogénat filé est dans le schéma 1. </li><li> Couche 2 ml du surnageant par gradient de Percoll-sucrose, le plafond du tube, et centrifuger à 32 500 xg pendant 5 min à 4 ° C dans un rotor à angle fixe (Beckman J2-21 centrifugeuse, JA-17 du rotor) en utilisant des adaptateurs appropriés ( Voir le tableau Réactifs et équipement). </li><li> Pipette et jeter la solution ci-dessus la bande SN utilisant une pipette Pasteur en verre. Pipette hors du groupe SN à l'interface% 15/23, transfert à une forme conique et de stocker sur la glace. Chaque dégradé ou une corticale va produire 0,9 à 1,1 ml de SN. </li><li> Ajuster la concentration en sel de la SNS en ajoutant un dixième volume de tampon de stimulation 10x, ajouter 1000x CaCl 2 à une concentration finale de 12 nM, et ajouter 1 mM TTX achat d'actions à une concentration finale de 1 uM à supprimer une excitation non spécifiques. (Addition de CaCl 2 est facultative si elle va interférer avec les applications SN en aval). </li><li> Déterminer la concentration en protéines de la SNS en utilisant le kit Micro BCA Protein Assay. (Le dosage des protéines Bradford n'est pas recommandée en raison de l'inférence à partir du Percoll.) </li><li> SN peut être utilisé directement et rapidement pour la protéine traduction des études. Pour d'autres applications SN lysat peut être nettoyé ou concentré en utilisant l'Pierce SDS-PAGE de préparation d'échantillons Kit. </li></ol> 4. Les résultats représentatifs: Lorsque la souris du cortex a été homogénéisé et séparé sur discontinu Percoll-sucrose dégradés (Schéma 1), 6 bandes ou des fractions ont été observés (figure 1). Il a été précédemment montré pour le rat cortex cérébral 3,5 que les constituants des bandes de haut poids moléculaire ont été brisées et des membranes de la myéline et que le matériel granulé contient des mitochondries ou des organelles (tableau 1). Les 23% / 15% d'interface (bande 5) contenait le SNS enrichi. La bande à 23% de l'interface / 15%, contenant SN intacte, a été enlevé et examiné par microscopie électronique (EM), comme décrit précédemment. 2,6 ME a montré la présence de vésicules synaptiques et intacte la préservation des éléments pré-et postsynaptiques (figure 2). L'isolement des compartiments pré-et post-synaptiques est important d'examiner de signalisation et de la synthèse des protéines, qui se produit dans les deux compartiments. 7-13 Le gradient de Percoll-sucrose est une purification brut ainsi que nous avons vu mineures cellulaire, la contamination nucléaire et des organites dans la fraction SN, mais le la séparation globale a été bonne. Lorsqu'ils sont examinés par Western blot, les fractions de Percoll contenait les marqueurs protéiques s'attend à une augmentation de la pureté synaptique dans la bande de SN (figure 3, tableau 2). Marqueurs synaptiques et neuronales ont été maintenus dans la bande enrichi SN (bande 5), mais l'abondance des autres marqueurs a été significativement réduit. En particulier, la présence de la GFAP, un marqueur des cellules astrocytaires et néoplasiques d'origine gliale, et Lamin-B1, un marqueur nucléaire, ont été négligeables, alors que les marqueurs structurels et synaptiques ont été maintenus ou améliorés. En outre, il a été rétention des marqueurs pour les organelles, comme la mitochondrie et de Golgi, qui jouent un rôle dans la synthèse protéique. Les rendements typiques de la bande 250-500 ng SN ont été de protéines par ul, tel que déterminé par un dosage de protéines BCA. L'activité du SNS a été déterminée par la quantité de synthèse protéique de novo présenter comme surveillé par [35S]-Met incorporation (figure 4). 2 activité basale translationnelle a été augmenté 1,56 fois quand SN ont été stimulées avec 50 uM glutamate/10 uM de glycine (Glu) ou 5,12 fois quand il est activé avec l'inhibiteur de la juglone Pin1. L'inhibition de Pin1 est connu pour entraîner dans la synthèse de protéine accrue. 2 pour confirmer que l'augmentation de [35S]-Met était due à l'incorporation synthèse protéique de novo, nous avons ajouté 40 anisomycine uM, un inhibiteur de la synthèse des protéines, et a vu une diminution marquée de l'incorporation en présence et en absence de Glu par rapport aux niveaux de base. Aussi, lors de l'addition de 2% de Triton-X 100, ce qui perturbe l'intégrité de la SNS, la traduction a été basale diminué de 75%. 2 En outre, lorsque l'on examine les bandes (B4-B6) qui a montré l'enrichissement marqueur le plus synaptique, Le SNS ou de la bande 5 était la plus forte activité de synthèse protéique de novo (figure 5). Ainsi, le discontinu de Percoll-sucrose gradients produire rapidement une très active et enrichie SN bande qui peut être utilisée pour étudier la traduction des protéines. La procédure de gradient discontinu de Percoll-sucrose est plus avantageuse que d'autres méthodes, car les dommages mécaniques est causée par des conditions plus sévères. Par rapport à la méthode de filtration, dans lequel effacé homogénat cortical est passé à travers une série de filtres qui diminuent en taille, la méthode 3,14-15 Percoll formes plus SN avec une plus grande activité. Comme le montre la figure 6, lorsque une aliquote de SNS préparé par la méthode de filtration a été passée sur un gradient Percoll-sucrose il ya beaucoup moins de SN à l'interface% 15/23 et une plus grande quantité de membranes cassé. Lorsque la synthèse protéique de novo a été mesurée par l'incorporation S35-rencontre, le SNS préparé par la méthode de filtration ont été beaucoup moins actif (figure 7). Afin de maximiser l'activité traductionnelle, nous utilisons des souris qui sont entre l'âge de P14 et P18. SN peuvent être préparés à partir de souris adultes, mais nous avons observé significativement augmenté l'activité traductionnelle avec SN préparé à partir de souris juvénile (figure 8). <img alt="Tableau 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tableau 1"> Tableau 1. Constituants des bandes du discontinu de Percoll-gradient fractionnements du cortex de souris homogénéisé. 3,5 <img alt="Tableau 2" src="/files/ftp_upload/3196/3196table2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tableau 2"> Tableau 2. Résumé de l'analyse des boulons Ouest du discontinu Percoll-sucrose constituants bande de dégradé. Concentrations de protéines relative pour chacune des fractions bande isolée en utilisant un Percol discontinuL-saccharose gradient ont été déterminées par Western blot. Aucune protéine présente (-), 0 ≥ 0,2 (+), 0,2 ≥ 0,8 (++), ou&gt; 0,8 fois (+++) = supérieur protéine présente dans le représentant surnageant (S, centrifugé cortex homogénat), de n 3. <img alt="Schéma 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196scheme1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Schéma 1"> Schéma 1: Schéma d'une préparation de SN utilisant un gradient de densité discontinu de Percoll-sucrose cortex cérébral de souris ont été disséqués, homogénéisés et centrifugés à faible vitesse pour enlever non homogénéisé tissus, cellules, organites entiers, tels que des noyaux et des membranes.. Le gradient discontinu doivent être clairement définies couches. La photo en médaillon montre un exemple des couches, qui ont été teints bleus à titre indicatif seulement afin de visualiser les couches. Le surnageant est posée au sommet d'une discontinuité du gradient Percoll-sucrose et centrifugés à vitesse moyenne. Le groupe SN est ensuite récupéré à partir du gradient et est prêt à utiliser. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Fractionnement sur ​​un homogénat discontinu de Percoll-sucrose dégradé. Souris cortex a été homogénéisé et séparé sur un discontinu de Percoll-sucrose gradient donnant lieu à 6 bandes ou des fractions. Le purifiée, actif SN (*) ont été trouvés dans la bande 5. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Les préparations SN donnent un mélange hétérogène de SNS qui conservent des éléments pré-et postsynaptiques. Une micrographie électronique d'une préparation SN préparé à partir de souris C57BL / 6 (âge P13 à P21) a été réalisée comme décrit précédemment et montre avec SN conservé des éléments pré-et postsynaptiques. 2 , 6 points rouges flèches pour les densités post-synaptiques. La barre d'échelle est de 1 um. <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 3"> Figure 3. Analyses par Western blot des préparatifs SN a montré que des marqueurs synaptiques et neuronales ont été maintenues dans le SNS purifié (bande 5), mais l'abondance des autres marqueurs a été significativement réduit. Immunoblots de surnageant (S, centrifugé homogénat cortical) et les bandes 1-6 de une discontinus gradient Percoll-sucrose ont été sondées pour β-actine (structurelle, le contrôle du chargement), la GFAP (astrocytes), GP73 (Golgi), HSC70 (cytoplasmiques et nucléaires), Lamin-B1 (nucléaire), Prohibitin (mitochondrial), PSD95 (densité post-synaptique ), SNAP25 (synaptique), la synaptophysine (synaptique) et β3-tubuline (neurone-spécifique). Les bandes ont été visualisées en utilisant une tempête 860 Phosphorimager, représentatif de n = 3. <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig4.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 4"> Figure 4. SNS sont actifs et présentent la synthèse protéique de novo via [35S]-Met constitution. SN ont été pré-équilibrée à 37 ° C pendant 10 min. Puis la SNS ont été traités ou prétraités pendant 15 min avec 40 uM anisomycine ou 1 uM juglone à 37 ° C suivie d'une addition de [35S]-Met, 20 pl Express Pro label Mix S35 Tag facile, plus ou moins Glu à 37 ° C pendant 30 min. Les échantillons ont été préparés en utilisant l'Pierce SDS-PAGE de préparation d'échantillons Kit, sur un gel de polyacrylamide 15%, séché et quantifiée en utilisant un Dynamique Moléculaire Tempête 860 phosphorimager, représentatif de n = 3, ± SEM. <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig5.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 5"> Figure 5. La bande 5 du discontinu de Percoll-sucrose gradient contenait les plus hauts niveaux de synthèse protéique de novo. Bandes 4, 5 et 6 et le surnageant (S, centrifugé homogénat cortical) ont été pré-équilibrée à 37 ° C pendant 10 min. Ensuite, [35S]-Met, Mix Pro Label express S35 Tag facile, a été ajouté, plus ou moins Glu à 37 ° C pendant 30 min. Les échantillons ont été préparés en utilisant l'Pierce SDS-PAGE de préparation d'échantillons Kit, sur un gel de polyacrylamide 15%, séché et quantifiée en utilisant un Dynamique Moléculaire Tempête 860 phosphorimager, représentatif de n = 3, ± SEM. <img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig6.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 6"> Figure 6. SN préparés à partir d'une méthode de filtration des membranes contiennent plus de cassé et SN moins entier que SN préparé à partir de la méthode du gradient Percoll-sucrose discontinu. SN ont été préparés par le passage du cortex homogénéisée par une série de filtres avec la diminution de la taille des pores, comme décrit précédemment. 3,14-15 Une aliquote de la SNS préparé par la méthode de filtration a été centrifugé pendant une discontinu Percoll-sucrose gradient et comparée à un montant équivalent de matériel en utilisant la méthode du gradient discontinu de Percoll-sucrose. <img alt="Figure 7" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig7.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 7"> Figure 7. SN préparés à partir d'une méthode de filtration contiennent moins de novo activité de synthèse de protéines que le SN préparés BOFm la méthode du gradient discontinu de Percoll-sucrose. SN ont été préparés par le passage du cortex homogénéisée par une série de filtres avec des pores diminue comme décrit précédemment, 3,14-15 et par les méthodes de gradient discontinu de Percoll-sucrose. SN des deux préparations ont été pré-équilibrée à 37 ° C pendant 10 min. Ensuite, [35S]-Met, Mix Pro Label express S35 Tag facile, a été ajouté, plus ou moins Glu à 37 ° C pendant 30 min. Les échantillons ont été préparés en utilisant l'Pierce SDS-PAGE de préparation d'échantillons Kit, sur un gel de polyacrylamide 15%, séché et quantifiée en utilisant un Dynamique Moléculaire Tempête 860 phosphorimager, représentatif de n = 3, ± SEM. <img alt="Figure 8" src="/files/ftp_upload/3196/3196fig8.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 8"> Figure 8. SN de jeunes souris (P14) ont une plus grande activité translationnelle que les anciennes souris (P85). SN ont été préparés à partir de différentes souris âgées utilisant la méthode du gradient discontinu de Percoll-sucrose, pré-équilibrée à 37 ° C pendant 10 min, traitées ou non traitées avec Glu dans le présence de [35S]-Met (Express Pro label Mix S35 Tag facile) pendant 30 min, snap congelés, et plus tard nettoyé avec le SDS-PAGE Pierce Prep Kit échantillon. Le SNS ont ensuite été exécutés sur un 12% gel SDS-polyacrylamide, séché et imagé sur une tempête de dynamique moléculaire 860 phosphorimager, représentatif de n = 3, ± SEM. SN du P14 souris ont été au moins 3 fois plus actif que P85 souris.

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<li>Cell separation composition, kit and method. US patent. , 019713 (1997).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

La préparation gradient discontinu de Percoll-sucrose décrite ici est une méthode rapide et fiable d&#39;isoler actifs SN, qui peut être utilisé dans une variété d&#39;expériences de la transmission synaptique. Cette méthode de gradient, qui est basé sur la méthode développée par Dunkley et al., 3,4 est une procédure cerveau subcellulaire fractionnement qui isole à la fois pré-et post-synaptiques à la membrane des vésicules dérivées qui sont associés à un autre. Sans autre purification de ces SNS sont compati...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nom du réactif </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th><th> Commentaires (optionnel) </th></tr><tr><td> Kit Micro BCA Protein Assay </td><td> Pierce </td><td> 23235 </td><td></td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> Fisher </td><td> C79-500 </td><td></td></tr><tr><td> Gaz CO 2 </td><td> Airgas (UW-MDS) </td><td> CD 50 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> RPI </td><td> E57020 </td><td></td></tr><tr><td> EtOH </td><td> Fisher </td><td> A407SK-4 </td><td></td></tr><tr><td> HCl </td><td> Fisher </td><td> A142-212 </td><td></td></tr><tr><td> Percoll </td><td> GE Healthcare </td><td> 17-0891-01 </td><td></td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> Fisher </td><td> P285-500 </td><td></td></tr><tr><td> PierceSDS-PAGE de préparation d&#39;échantillons Kit </td><td> Pierce </td><td> 89888 </td><td></td></tr><tr><td> NaCl </td><td> RPI </td><td> S23020 </td><td></td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> Fisher </td><td> BP328-500 </td><td></td></tr><tr><td> Na 2 PHO 4 </td><td> Fisher </td><td> S381-500 </td><td></td></tr><tr><td> Saccharose </td><td> RPI </td><td> S24060 </td><td></td></tr><tr><td> Tris Base </td><td> RPI </td><td> T60040 </td><td></td></tr><tr><td> Tetrodotoxine </td><td> Sigma </td><td> T5651 </td><td></td></tr><tr><td> Express Pro label Mix S35 Tag Facile </td><td> Perkin Elmer </td><td> NEG772 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><th> Équipement </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th><th> Commentaires (optionnel) </th></tr><tr><td> Des outils de dissection </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dounce homogénéisateur, 7 ml (livré avec deux pilons en verre étiqueté «A» et «B») </td><td> Wheaton </td><td></td><td></td></tr><tr><td> P1000 Gilson Pipetman </td><td> Gilson </td><td> F123602 </td><td></td></tr><tr><td> Allegra 6KR Centrifugeuse </td><td> Beckman Coulter </td><td> 366830 </td><td></td></tr><tr><td> GH 3.8 Rotor, rotor swing </td><td> Beckman Coulter </td><td> 360581 </td><td></td></tr><tr><td> Beckman J2-21 Centrifugeuse </td><td> Beckman </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Beckman tubes avec des bouchons </td><td> Beckman </td><td> 355672 </td><td></td></tr><tr><td> Blanc adaptateurs fortifiée </td><td> Beckman </td><td> 342327 </td><td></td></tr><tr><td> Bleu adaptateurs fortifiée </td><td> Beckman </td><td></td><td></td></tr><tr><td> JA-17 Rotor, Rotor angulaire </td><td> Beckman </td><td> 369691 </td><td></td></tr></tbody></table> Table des anticorps utilisés pour Western blot: <table border="1"><tbody><tr><th> Nom de l&#39;anticorps </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th><th> Espèce Hôte </th><th> Facteur de dilution </th></tr><tr><td> β-actine </td><td> Sigma </td><td> A5441 </td><td> la souris </td><td> 1:2000 </td></tr><tr><td> GFAP </td><td> Santa Cruz </td><td> sc-65343 </td><td> la souris </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> GP73 </td><td> Santa Cruz </td><td> Sc-134509 </td><td> lapin </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> HSC70 </td><td> Santa Cruz </td><td> SC-7298 </td><td> la souris </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> Laminβ </td><td> Santa Cruz </td><td> Sc-6261 </td><td> de chèvre </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> Prohibitin </td><td> Santa Cruz </td><td> sc-28259 </td><td> lapin </td><td> 1:200 </td></tr><tr><td> PSD95 </td><td> Millipore </td><td> MAB1596 </td><td> la souris </td><td> 5 ug / uL </td></tr><tr><td> SNAP25 </td><td> Abcam </td><td> ab5666-100 </td><td> lapin </td><td> 1:2000 </td></tr><tr><td> Synaptophysine </td><td> Millipore </td><td> MAB368 </td><td> la souris </td><td> 1:500 </td></tr><tr><td> β-3-tubuline </td><td> Santa Cruz </td><td> sc-80016 </td><td> la souris </td><td> 1:200 </td></tr></tbody></table>

préparation de synaptoneurosomes de mouse cortex en utilisant un gradient de densité discontinu de percoll-sucrose

Preparation of Synaptoneurosomes from Mouse Cortex using a Discontinuous Percoll-Sucrose Density Gradient

Synaptoneurosomes (SNS) sont obtenus après homogénéisation et fractionnement de cortex cérébral de la souris. Ils sont refermés vésicules ou des terminaux isolés que rompre avec terminaisons axonales lorsque le tissu cortical est homogénéisé. Le SNS conserver des caractéristiques pré-et post-synaptiques, ce qui les rend utiles dans l&#39;étude de la transmission synaptique. Ils conservent la machinerie moléculaire utilisée dans la signalisation neuronale et sont capables d&#39;absorption, le stockage et la libération de neurotransmetteurs. La production et l&#39;isolement de SNS active peut être problématique médias utilisant comme Ficoll, qui peuvent être cytotoxiques et nécessitent une centrifugation prolongée due à haute densité, et la filtration et des méthodes de centrifugation, ce qui peut entraîner une faible activité en raison de dommages mécaniques de la SNS. Cependant, l&#39;utilisation des gradients de densité discontinu de Percoll-sucrose pour isoler SN fournit une méthode rapide pour produire de bons rendements de SNS translation active. La méthode du gradient Percoll-sucrose est rapide et en douceur car il emploie des conditions isotoniques, a fait tourner la centrifugation moins nombreux et plus courts et évite les étapes de centrifugation que les SRS granulés et causer des dommages mécaniques.

Une méthode pour préparer translation active, synaptoneurosomes intacte (SNS) de la souris cortex cérébral est décrite. La méthode utilise un gradient de densité discontinu de Percoll-sucrose permettant la préparation rapide de SNS active.

Préparation de Synaptoneurosomes de Mouse Cortex en utilisant un gradient de densité discontinu de Percoll-sucrose

Les synaptoneurosomes (SN) sont obtenus après homogénéisation et fractionnement du cortex cérébral de souris. Ce sont des vésicules refermées ou des terminaisons isolées qui ...

L'objectif général de cette procédure est de préparer des synaptosomes activement traduits à partir du cortex cérébral de souris, en utilisant un gradient de densité de saccharose discontinu. Ceci est réalisé en premier lieu en collectant et en homogénéisant les cortices de souris, puis en centrifugeant l'homogénat. Ensuite, appliquer l'homogénat centrifugé, ou surnageant, sur les gradients de saccharose préparés.La dernière étape consiste à centrifuger et à recueillir la fraction de synaptosomes. En fin de compte, les analyses par immunoblot et les expériences d'incorporation de méthionine S 35 montrent que la fraction de synaptosomes est enrichie au niveau synaptique et active sur le plan traductionnel. Les principaux avantages de cette technique par rapport aux méthodes existantes telles que la centrifugation et la filtration sont que, premièrement, les dommages mécaniques sont évités grâce à l'utilisation de gradients de densité, et deuxièmement, la toxicité est faible pour les cellules et leurs constituants.En général, les personnes novices dans cette méthode éprouveront des difficultés avec ce protocole, car le chronométrage joue un rôle clé. Une fois les cortis prélevés, la procédure doit être réalisée rapidement. Pour commencer, préparez les couches de gradient à 3, 10, 15 et 23 % en ajoutant les quantités respectives de SIP, comme indiqué dans le manuscrit associé, au tampon GM et mélangez soigneusement.Préparez des couches en gradient en pipetant deux millilitres de chacune des solutions isosmotiques de Percoll à 23, 15, 10 et 3 % dans des tubes de centrifugation Beckman avec bouchons. À l’aide d’une pipette P1000, l’interface entre les couches doit être clairement visible, sans mélange des couches. Conservez les gradients à quatre degrés Celsius pendant au moins 20 minutes avant utilisation.Avant de commencer cette procédure, préparez les autres solutions nécessaires comme décrit dans le manuscrit associé. Euthanasiez la souris à l’âge de P13 à P21 et préparez-la pour la dissection en vaporisant de l’éthanol à 70 % sur la nuque et la tête. Ensuite, utilisez une paire de ciseaux pointus pour sectionner la moelle épinière à la base du crâne.Ensuite, retirez la peau située au sommet du crâne. Incisez le crâne latéralement entre l'os pariétal et l'os interpariétal, ou entre les régions du cerveau et du cortex. Puis, incisez le crâne depuis la base jusqu'au nez en suivant la suture sagittale.À cette étape, retirez soigneusement l'os pariétal tendre en tirant chaque hémisphère sur le côté. Ensuite, insérez la spatule dans le cerveau au-dessus du cervelet afin de prélever le cortex. Placez-le dans du tampon GM glacé et répétez à nouveau les procédures pour collecter davantage de cortices.À présent, rincez les corticaux dans du tampon GM glacé. Ensuite, transférez deux corticaux dans un homogénéisateur en verre contenant cinq millilitres de tampon GM froid. Homogénéisez délicatement les corticaux avec cinq à dix mouvements du pilon A, le pilon lâche, suivis de cinq à dix mouvements du pilon B, le pilon ajusté.Le nombre de mouvements varie selon l'homogénéisateur utilisé. Transférez l'homogénat dans un tube conique de 15 millilitres. Faites-le centrifuger à 1000 ×g.Centrifuger pendant 10 minutes à quatre degrés Celsius dans une centrifugeuse Allegra six KR afin de former un culot contenant les débris cellulaires et les noyaux. Déposer délicatement deux millilitres du surnageant pour chaque gradient de saccharose, en utilisant un gradient par cortex entier, puis boucher les tubes. Ensuite, centrifuger les échantillons dans un rotor à angle fixe à 32 500 × g pendant cinq minutes à quatre degrés Celsius dans une centrifugeuse Beckman J 2 21.Une fois terminé, en utilisant des embouts adaptés, le gradient doit présenter une bande SN bien définie ; prélevez et jetez la solution située au-dessus de la bande SN. À l’aide d’une pipette en verre, prélève la bande SN à l’interface 15-23 % ; un gradient donne généralement environ 0,9 à 1,1 millilitre de SNs. Ensuite, transférez-la dans un tube conique et conservez-la sur de la glace.Ensuite, ajustez la concentration en sel du SNS en ajoutant un dixième de volume de tampon de stimulation 10 fois concentré. Éventuellement, ajoutez du chlorure de calcium 1000 fois concentré afin d'obtenir une concentration finale de 12 ano molaire. Puis, ajoutez le stock de TTX à 1 millimolaire pour obtenir une concentration finale de 1 micromolaire, afin de supprimer l'excitation non spécifique.L'étape suivante consiste à utiliser le SNS dans l'application en aval appropriée, comme les études sur la traduction des protéines. Pour d'autres applications, le lysat de SN peut être purifié ou concentré à l'aide du kit de préparation d'échantillons Pierce SDS page. La concentration en protéines du SNS peut être déterminée à l'aide du kit d'analyse des protéines micro BCA.Voici un exemple de six bandes ou fractions. Lorsque le cortex de souris a été homogénéisé et séparé sur des gradients de saccharose au pérol discontinus, les SNS enrichis se trouvaient dans la bande cinq à l'interface 23 à 15 % ; cette bande a été prélevée et examinée par microscopie électronique. Un exemple de vésicules synaptiques intactes et de préservation des éléments pré-synaptiques et post-synaptiques est montré ici sur le immunotransfert.Une augmentation des marqueurs synaptiques et une diminution des impuretés dans la bande SN d'un gradient de saccharose discontinu permettent de confirmer que l'augmentation de l'incorporation de méthionine S 35 après ajout de glutamate est due à une synthèse protéique de novo. Un inhibiteur de la synthèse protéique, l'anesa mycin à 40 micromolaire, a été ajouté. Cette figure montre la diminution marquée de l'incorporation de méthionine S 35 en présence d'anso mycin, avec ou sans glutamate, par rapport aux niveaux basaux.Ainsi, les gradients discontinus de saccharose au peral produisent rapidement des SNS très actifs et relativement purs, pouvant être utilisés pour étudier la traduction des protéines. Cette figure montre que la bande cinq du gradient discontinu de saccharose au per core contient les niveaux les plus élevés de synthèse protéique *de novo*. Les SNS préparés en faisant passer un homogénat de cortex à travers une série de filtres à taille de pore décroissante, puis en centrifugeant sur un gradient discontinu de saccharose au per core à des fins de comparaison, contiennent davantage de membranes rompues et moins de SNS intacts que les SNS préparés selon la méthode du gradient discontinu de saccharose au perol. Les SNS préparés selon la méthode du gradient discontinu de saccharose au peral présentent une activité de synthèse protéique *de novo* plus élevée que les SNS préparés selon la méthode de filtration.Les SNS préparées à partir de souris plus jeunes présentent une activité traductionnelle plus élevée que celles provenant de souris âgées. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment isoler les neurozones synaptiques activement traduites en homogénéisant les cortices de souris, en centrifugeant l'homogénat dans un rotor à godets tournants, en centrifugeant le surnageant sur un gradient de saccharose Percoll dans un rotor à angle fixe, puis en collectant la bande de neurozone synaptique obtenue.

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