Name: Méthodologie élastographie par résonance magnétique pour lévaluation des tissus Conçu croissance Construct (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 18 s
Description: Découvrez l'élastographie par résonance magnétique microscopique pour évaluer les propriétés mécaniques des tissus adipeux et ostéogéniques. Cette méthode non invasive permet de surveiller les constructions tissulaires sans les détruire.

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Cette recherche a été financée en partie par le NIH-RO3 EB007299-02 et NSF EPSCoR premier prix.

1. Préparation Construct tissus Le tissu de construire processus de préparation se compose de trois étapes principales: l&#39;expansion de la population de la cellule, l&#39;ensemencement de cellules sur un échafaudage biomatériau, et la différenciation par l&#39;utilisation de molécules de signalisation chimiques. La procédure pour la préparation construction est basée sur des méthodes menées par Dennis et al., Hong et al., Et Marion et Mao 8,9,10. <ol><li> Après la culture et l&#39;expansion de la lignée cellulaire, des semences, les cellules souches mésenchymateuses humaines (h MSC) sur une éponge de gélatine (4 mm de diamètre, 3,5 mm d&#39;épaisseur) à une densité de 1x10 6 cellules / ml pour les os et 3x10 6 cellules / ml pour formation de tissu adipeux. </li><li> Pour la différenciation des cellules souches mésenchymateuses h dans adipeux, appliquer les médias induction adipeux constitués de 1 uM de dexaméthasone, 0,5 uM isobutyl-méthylxanthine, 10 pg / ml d&#39;insuline humaine recombinante-, et 200 uM indométhacine dans un milieu à l&#39;expansion cellulaireUne fois les cellules confluentes apparaissent sur l&#39;échafaud. Après trois jours, de remplacer les médias avec 10 pg / ml de l&#39;insuline humaine recombinante-dans les médias d&#39;extension pour 24 heures, puis revenir à des médias à induction. Répétez le cycle trois fois et ensuite échanger seulement dans les médias d&#39;entretien tous les deux jours. </li><li> Pour induire l&#39;ostéogenèse, préparer des milieux d&#39;induction ostéogéniques en faisant une concentration finale de 0,1 uM de dexaméthasone, 50 uM de L-ascorbique-2phosphate, et 10 mM β-glycérophosphate dans le milieu de l&#39;expansion des cellules. Remplacez-le par Fresh Media ostéogéniques tous les deux jours. </li></ol> 2. Caractérisation actionneur Caractérisation de l&#39;actionneur est une étape essentielle pour l&#39;expérience des MRE. MRE repose sur la propagation des ondes de cisaillement mécaniques afin d&#39;évaluer les valeurs locales de propriétés mécaniques et, par conséquent, ces vibrations mécaniques doivent être générés et caractérisés dans le tissu d&#39;intérêt en utilisant un actionneur piézoélectrique. Un exa illustréemple du processus de caractérisation est représenté sur la figure 3. L&#39;objectif de cette procédure est d&#39;optimiser le mouvement de l&#39;actionneur afin de générer des ondes de cisaillement inoffensifs avec des amplitudes importantes (~ 250 microns). <ol><li> Avant l&#39;expérience, appliquer de 0,5% sur gel d&#39;agarose à enfermer la construction dans un tube à essai de 10 mm. La température du gel soit d&#39;environ 37 ° C à minimiser les dommages à la construction. </li><li> Après avoir laissé les agarose gel cinq minutes pour durcir à température ambiante, insérer la pointe du moteur piézo-électrique de flexion dans la surface du gel. </li><li> Fixer le tube contenant l&#39;échantillon et l&#39;actionneur à un support rigide, et orienter le faisceau de la vibromètre laser à effet Doppler vers la pointe de l&#39;actionneur mécanique. Ajuster le positionnement du système pour optimiser le signal réfléchi, utiliser un ruban réfléchissant si nécessaire. </li><li> Basé sur la fréquence de résonance attendue de l&#39;actionneur mécanique, réglez le générateur de fonction pour balayer la dgamme de fréquences esired (soit 20 à 2000 Hz dans cette expérience) en utilisant une tension de fonctionnement de 20 Vcc avec un signal de bruit blanc. </li><li> Afficher le spectre caractérisé sur le programme Polytec Vibrosoft pour identifier la fréquence de résonance du système et mettre le programme d&#39;FFT et la vitesse de l&#39;axe des y. </li><li> Pour la mesure de déplacement, définir l&#39;actionneur pour fournir une sinusoïde en continu à la fréquence de résonance indiquée en utilisant une tension de fonctionnement de 200 Vpp, et noter le déplacement généré étant délivrée à la surface du gel. Définir Vibrosoft pour afficher la FFT avec le déplacement de l&#39;axe des y. </li></ol> 3. Acquisition d&#39;image <ol><li> Après avoir terminé la caractérisation d&#39;actionnement, mettre l&#39;échantillon et l&#39;actionneur dans le centre de l&#39;appareil d&#39;IRM. Pour les expériences construct tissus, utilisation d&#39;une bobine petite et plus sensible RF (10 mm de cette expérience) pour la transmission et la réception du signal RF. (La procédure indiquée utilise un T 9,4verticale aimant alésage équipés avec des gradients de trois axes, 100 g / cm). </li><li> Acquérir une image éclaireur pour l&#39;identification de l&#39;emplacement construction. </li><li> Définissez les paramètres pour l&#39;acquisition. Un type in vitro sagittale balayage ont un temps de répétition de 1000 ms, de temps d&#39;écho de 20-40 ms, épaisseur de tranche de 0,5-1,0 mm, et le champ de vision de 12x10 mm 2 avec une taille de matrice de 128x128 pixels. </li><li> Pour les paramètres d&#39;élastographie, régler la fréquence actionneur à la valeur déterminée par la caractérisation laser Doppler Vibromètre. Dans l&#39;étude actuelle, une paire bipolaire a été nécessaire avec une amplitude de gradient de 50 g / cm. Autres paramètres à ajuster comprennent le retard qui devrait être fixé à zéro millisecondes pour l&#39;acquisition initiale. </li><li> Changer le générateur de fonction pour mode rafale et d&#39;ajuster les paramètres du générateur de fonction pour correspondre à ceux dans les paramètres d&#39;acquisition élastographie, y compris la fréquence et le nombre de cycles. En outre, définir la fonctionGénérateur tion à l&#39;extérieur déclenché. </li><li> Pour une image sagittale, mis en mouvement la sensibilisation à faire dans le sens positif et tranche lancer le scan. Suite à l&#39;acquisition, vérifier l&#39;image et de changer la sensibilisation à la direction tranche négative. </li><li> Exécutez le programme MATLAB qui effectuera la division complexe pour la génération de l&#39;image de l&#39;onde de cisaillement. </li><li> Évaluer l&#39;image pour la présence d&#39;ondes de cisaillement et des artefacts possibles comme l&#39;emballage de phase. </li><li> Si aucun ajustement à l&#39;image sont nécessaires, ajuster la taille de tableau de paramètres à huit valeurs équidistantes allant de zéro secondes pour une période complète de la fréquence de résonance caractérisé. </li><li> Acquérir une analyse dans les deux tranches les orientations positives et négatives. </li><li> Une fois les images sont acquises, utilisez un programme MATLAB conçu pour générer des données d&#39;ondes de cisaillement d&#39;un tableau d&#39;images. </li></ol> 4. Traitement d&#39;image Expérience MRE <ol><li> Thétape e finale de l&#39;EDM est de calculer la rigidité de cisaillement à partir des images des ondes de cisaillement. Placer les données dans le programme MATLAB qui permettra d&#39;évaluer l&#39;ensemble de données en trois dimensions (2 spatiale, 1 temporelle). </li></ol> Note: en supposant par une onde de cisaillement plane, les équations de mouvement permettant de découpler l&#39;estimation de la valeur-module complexe de cisaillement en fonction du déplacement et son laplacien. L&#39;algorithme se rapproche spatiales dérivées secondes avec des différences finies et calcule le module de cisaillement sur une base pixel par pixel. De ce nombre complexe, de nombreux paramètres mécaniques peut être déduite comme la vitesse des ondes de cisaillement, l&#39;atténuation des ondes, la rigidité en cisaillement, l&#39;élasticité de cisaillement, la viscosité de cisaillement, etc L&#39;algorithme permet également la sélection des régions d&#39;intérêt pour lequel la moyenne et l&#39;écart-type de chaque paramètre est calculée. <ol start="2"><li> Les paramètres d&#39;imagerie doivent être précisés au début du programme. En outre, ee limite supérieure de la élastogramme peut être ajusté pour optimiser le contraste dans l&#39;échantillon. </li></ol> Remarque: Le programme donne des résultats intermédiaires (vague après filtres passe-bas, vague après filtrage directionnel, temporelle FFT, les profils en ligne, etc) qui aident l&#39;utilisateur à évaluer la fidélité de la reprise. <ol start="3"><li> Certains paramètres peuvent être réglés sur la base de cette information, tels que les niveaux de filtres passe-bas, la fréquence temporelle de la requête, la direction de propagation de l&#39;onde, etc écart-type d&#39;un paramètre dans une région d&#39;intérêt est également un indicateur de la qualité du calcul. </li></ol> 5. Les résultats représentatifs Figure 4 notes du changement dans les propriétés mécaniques tout au long de quatre semaines de développement et de construction ostéogénique adipogénique. MRE a été réalisée à 730-820 Hz. Bien que les deux éponges ensemencées ont commencé à environ 3 kPa, osteogenic tissus dirigées donné lieu à une rigidité de 22 kPa, alors que, adipeux dirigé tissus a diminué dans la rigidité à 1 kPa. En outre, les constructions ostéogéniques ont montré une diminution notable de la taille en comparaison du début à la fin de l&#39;étude. D&#39;autres objets dérivés de l&#39;étude de l&#39;élastographie sont présentés dans le tableau 1. <img src="/files/ftp_upload/3618/3618fig1.jpg" alt="Figure 1"/> Figure 1. Le processus d&#39;acquisition d&#39;image pour l&#39;élastographie par résonance magnétique. Au cours d&#39;acquisition d&#39;image, une séquence d&#39;impulsions (a) commande la synchronisation (b) du générateur de fonction avec le impulsions de gradients bipolaire de l&#39;appareil d&#39;IRM. Suite à l&#39;acquisition des gradients bipolaire basculée dans des orientations positives et négatives, (c) une image d&#39;onde de cisaillement est produit en utilisant la division complexe. <img src="/files/ftp_upload/3618/3618fig2.jpg" alt="Figure 2"/> Schéma Figure 2. Du processus de MRE pour le moteur de tissusconstructions Luin. Tout d&#39;abord, les cellules (a) sont d&#39;abord développée et a étendu à la taille de la population essentielle pour le projet conçu. Puis les cellules sont ensemencées (b) sur un échafaudage bio-matériau et les réactifs chimiques sont appliqués au signal de différenciation. Échafaudages sont caractérisés avec MRE, dont la première étape (c) est la détermination de la fréquence de résonance de l&#39;actionneur couplé à l&#39;assemblage. Suivant, des images IRM (d) sont acquises pour générer une image d&#39;onde de cisaillement (e). Enfin, un algorithme est appliqué pour obtenir une élastogramme (f) que les cartes de la rigidité de la construction. Parallèlement, les constructions sont sectionnés pour l&#39;évaluation histologique (g) afin de valider la différenciation. <img src="/files/ftp_upload/3618/3618fig3.jpg" alt="Figure 3"/> Figure 3. Procédure de caractérisation de l&#39;actionneur. L&#39;échafaudage gélatine est délimitée par un gel d&#39;agarose à 0,5%. Pour caractériser le mouvement d&#39;être transféré dans l&#39;échantillon un bruit blanc est d&#39;abord envoyé dans le système(1a) et le mouvement qui en résulte est détectée en utilisant un laser à effet Doppler Vibromètre (1b). Une fois la fréquence de résonance est déterminée, un signal continu sinusoïde à résonance (2a) est envoyé pour déterminer le déplacement (2b) transférée à l&#39;environnement de la gélatine. <img src="/files/ftp_upload/3618/3618fig4.jpg" alt="Figure 4"/> Figure 4. Construire la carte de développement sur ​​une période de quatre semaines. Adipogéniques (A) et ostéogénique (O) des constructions sont indiqués de gauche à droite avec une amplitude correspondant et images des ondes de cisaillement, élastogramme, et la rigidité de cisaillement moyenne. La palette de couleurs pour les élastogramme correspond avec le schéma de couleurs du graphique à barres et barres d&#39;erreur représentent l&#39;écart-type au sein de la région chaque construction d&#39;intérêt. <img src="/files/ftp_upload/3618/3618Table1.jpg" alt="Tableau 1"/&gt; Tableau 1. Les propriétés mécaniques des constructions adipeux et ostéo sur une période de quatre semaines de croissance.

<ol><li>Xu, H., Othman, S. F., Magin, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+tissue+engineering+using+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biosci.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Monitoring tissue engineering using magnetic resonance imaging.</a> J. Biosci. Bioeng. 106, 515-527 (2008).</li>
<li>Xu, H., Othman, S. F., Hong, L., Peptan, I. A., Magin, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+microscopy+for+monitoring+osteogenesis+in+tissue-engineered+construct+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Phys.+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance microscopy for monitoring osteogenesis in tissue-engineered construct in vitro.</a> Phys. Med. Biol. 51, 719-732 (2006).</li>
<li>Othman, S. F., Xu, H., Royston, T. J., Magin, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+magnetic+resonance+elastography+%28microMRE%5BTitle%5D)+AND+%22Magn.+Reson.+Med%22%5BJournal%5D)">Microscopic magnetic resonance elastography (microMRE.</a> Magn. Reson. Med. 54, 605-615 (2005).</li>
<li>Muthupillai, R., Lomas, D. J., Rossman, P. J., Greenleaf, J. F., Manduca, A., Ehman, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+elastography+by+direct+visualization+of+propagating+acoustic+strain+waves%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance elastography by direct visualization of propagating acoustic strain waves.</a> Science. 269, 1854-1857 (1995).</li>
<li>Othman, S. F., Curtis, E. T., Plautz, S. A., Pannier, A. P., Xu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+resonance+elastography+monitoring+of+tissue+engineered+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22NMR+Biomed%22%5BJournal%5D)">Magnetic resonance elastography monitoring of tissue engineered constructs.</a> NMR Biomed. , Forthcoming (2011).</li>
<li>Oliphant, T. E., Manduca, A., Ehman, R. L., Greenleaf, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex-valued+stiffness+reconstruction+for+magnetic+resonance+elastography+by+algebraic+inversion+of+the+differential+equation%5BTitle%5D)+AND+%22Magn.+Reson.+Med%22%5BJournal%5D)">Complex-valued stiffness reconstruction for magnetic resonance elastography by algebraic inversion of the differential equation.</a> Magn. Reson. Med. 45, 299-310 (2001).</li>
<li>Ringleb, S. I., Chen, Q., Lake, D. S., Manduca, A., Ehman, R. L., An, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+shear+wave%3A+comparison+to+a+dynamic+shear+material+test%5BTitle%5D)+AND+%22Magn.+Reson.+Med%22%5BJournal%5D)">Quantitative shear wave: comparison to a dynamic shear material test.</a> Magn. Reson. Med. 53, 1197-1201 (2005).</li>
<li>Hong, L., Peptan, I., Clark, P., Mao, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+adipose+tissue+engineering+by+human+marrow+stromal+cell+seeded+gelatin+sponge%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Ex vivo adipose tissue engineering by human marrow stromal cell seeded gelatin sponge.</a> Ann. Biomed. Eng. 33, 511-517 (2005).</li>
<li>Dennis, J. E., Haynesworth, S. E., Young, R. G., Caplan, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteogenesis+in+marrow-derived+mesenchymal+cell+porous+ceramic+composites+transplanted+subcutaneously%3A+effect+of+fibronectin+and+laminin+on+cell+retention+and+rate+of+osteogenic+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Osteogenesis in marrow-derived mesenchymal cell porous ceramic composites transplanted subcutaneously: effect of fibronectin and laminin on cell retention and rate of osteogenic expression.</a> Cell Transplant. 1, 23-32 (1992).</li>
<li>Marion, N. W., Mao, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+stem+cells+and+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal stem cells and tissue engineering.</a> Methods Enzymol. 420, 339-361 (2006).</li>
<li>Rydberg, J., Grimm, R., Kruse, S., Felmlee, J., McCracken, P., Ehman, R. L. Fast spin-echo magnetic resonance elastography of the brain. Proceedings of the International Society of Magnetic Resonance in Medicine, Glasgow, Scotland, , 1647-1647 (2001).</li>
<li>Kruse, S. A., Grim, R. C., Lake, D. S., Manduca, A., Ehman, R. L. Fast EPI based 3D MR elastography of the brain. Proceedings of the International Society for Magnetic Resonance in Medicine, Seattle, Washington, , 3385-3385 (2006).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont aucun conflit d&#39;intérêts à déclarer.

Dans cette procédure, le processus de MRE pour les constructions de l&#39;ingénierie tissulaire est démontré, de la préparation cellulaire à la génération d&#39;un élastogramme. En appliquant une méthode d&#39;évaluation non destructive mécanique à la canalisation du génie tissulaire, il est maintenant possible d&#39;évaluer les changements dans les constructions d&#39;ingénierie tout au long de multiples étapes de développement. En outre, s&#39;ajoute à d&#39;autres méthodes d&#39;ERM MR pour les tissus de surveillance...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du produit </td><td> Type </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> MSCGM-Bullet Kit </td><td> Réactif </td><td> Lonza </td><td> PT-3001 </td><td> Conserver à 4 ° C </td></tr><tr><td> DPBS 1X </td><td> Réactif </td><td> Invitrogen </td><td> 21600-010 </td><td></td></tr><tr><td> 0,05% de trypsine-EDTA </td><td> Réactif </td><td> Gibco, Invitrogen </td><td> 25300-054 </td><td> Conserver à -20 ° C </td></tr><tr><td> Dexaméthasone </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D2915 </td><td></td></tr><tr><td> 3-isobutyl-1-méthylxanthine </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> I5879 </td><td> Conserver à -20 ° C </td></tr><tr><td> L&#39;insuline bovine du pancréas </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> I6634 </td><td> Conserver à -20 ° C </td></tr><tr><td> Indométhacine </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> I7378 </td><td></td></tr><tr><td> Β-glycérophosphate </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G9891 </td><td></td></tr><tr><td> Acide L-ascorbique-2-phosphate </td><td> Réactif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A8960 </td><td></td></tr><tr><td> Gelfoam </td><td> Échafaud </td><td> Pharmacia &amp; Upjohn Co. </td><td> 09-0315-08 </td><td></td></tr><tr><td> Les cellules souches mésenchymateuses </td><td> Lignée cellulaire </td><td> Lonza </td><td> PT-2501 </td><td></td></tr><tr><td> 9.4T MR scanner </td><td> Équipement </td><td> Agilent </td><td></td><td> 400MHz WB </td></tr><tr><td> 10mm Litz Coil </td><td> Équipement </td><td> Doty scientifique </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Laser Doppler Vibromètre </td><td> Équipement </td><td> Polytec </td><td> PDV-100 </td><td></td></tr><tr><td> Vibrosoft (20) </td><td> Logiciel </td><td> Polytec </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Générateur de fonctions </td><td> Équipement </td><td> Agilent </td><td> AFG 3022B </td><td></td></tr><tr><td> Amplificateur </td><td> Équipement </td><td> Piezo inc </td><td> EPA-104-115 </td><td></td></tr><tr><td> Piezo flexion du moteur </td><td> Équipement </td><td> Piezo inc. </td><td> T234-A4Cl-203X </td><td></td></tr><tr><td> Computer-Linux </td><td> Équipement </td><td> Processeur: Intel Core 2 Duo E8400 Mémoire: 2G </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Computer-Windows </td><td> Équipement </td><td> Processeur: Intel Core 2 Duo E8400 Mémoire: 2G </td><td></td><td></td></tr><tr><td> MATLAB </td><td> Logiciel </td><td> The Mathworks, Inc </td><td></td><td> 2009b </td></tr></tbody></table>

méthodologie élastographie par résonance magnétique pour l&#39;évaluation des tissus conçu croissance construct

Magnetic Resonance Elastography Methodology for the Evaluation of Tissue Engineered Construct Growth

Traditionnel essais mécaniques se traduit souvent par la destruction de l&#39;échantillon, et dans le cas de tissu à long terme conçu de construire des études, l&#39;utilisation de l&#39;évaluation destructrice n&#39;est pas acceptable. Une alternative proposée est l&#39;utilisation d&#39;un procédé d&#39;imagerie appelée élastographie par résonance magnétique. L&#39;élastographie est une méthode non destructive pour déterminer le résultat d&#39;ingénierie en mesurant les valeurs locales des propriétés mécaniques (c.-à-module complexe de cisaillement), qui sont des marqueurs essentiels pour identifier la structure et la fonctionnalité d&#39;un tissu. Comme un moyen non invasif d&#39;évaluation, le suivi des constructions d&#39;ingénierie avec des modalités d&#39;imagerie telles que l&#39;imagerie par résonance magnétique (IRM) a vu un intérêt croissant dans la dernière décennie 1. Par exemple, les par résonance magnétique (MR) des techniques de diffusion et de relaxométrie ont été en mesure de caractériser les changements dans les propriétés chimiques et physiques au cours du développement de l&#39;ingénierie tissulaire 2. La méthode proposée dansle protocole suivant utilise microscopique élastographie par résonance magnétique (μMRE) en tant que technique MR non invasive permettant de mesurer les propriétés mécaniques de petite tissus mous 3. MRE est réalisé en couplant un actionneur mécanique sonore avec le tissu d&#39;intérêt et l&#39;enregistrement de la propagation des ondes de cisaillement avec un scanner MR 4. Récemment, μMRE a été appliqué dans l&#39;ingénierie tissulaire pour acquérir des informations essentiel de la croissance qui est traditionnellement mesurée à l&#39;aide des techniques macroscopiques mécaniques destructeurs 5. Dans la procédure suivante, l&#39;élastographie est obtenue par l&#39;imagerie de constructions d&#39;ingénierie avec une version modifiée de Hahn spin-séquence d&#39;écho associée à un actionneur mécanique. Comme le montre la figure 1, la séquence modifiée se synchronise avec l&#39;acquisition de l&#39;image de transmission des ondes de cisaillement extérieures; ultérieurement, le mouvement est sensibilisée par l&#39;utilisation de paires oscillant bipolaires. Après la collecte d&#39;images avec un mouvement positif et négatif sensitization, la division complexe des données de produire une image d&#39;onde de cisaillement. Puis, l&#39;image est évaluée en utilisant un algorithme d&#39;inversion pour générer une carte rigidité au cisaillement 6. Les résultats des mesures à chaque voxel a été démontré fortement corrélés (R 2&gt; 0.9914) avec les données recueillies à l&#39;aide l&#39;analyse mécanique dynamique 7. Dans cette étude, l&#39;élastographie est intégré dans le processus de développement du tissu pour le suivi des lignées de cellules souches mésenchymateuses (CSM h) la différenciation dans des constructions adipogéniques et ostéogénique comme le montre la figure 2.

La procédure démontre la méthodologie de l&#39;élastographie par résonance magnétique pour le suivi des résultats d&#39;ingénierie du tissu adipeux et les constructions de tissus ostéogéniques d&#39;ingénierie grâce à une évaluation non invasive locale des propriétés mécaniques en utilisant microscopique élastographie par résonance magnétique (μMRE).

Méthodologie élastographie par résonance magnétique pour l&#39;évaluation des tissus Conçu croissance Construct

Les essais mécaniques traditionnels entraînent souvent la destruction de l'échantillon et, dans le cas d'études à long terme sur des constructions d'ingénierie tissulaire, l'utilisation...

Pour examiner les constructions tissulaires conçues, les essais mécaniques traditionnels, qui entraînent souvent la destruction de l'échantillon, ne sont pas acceptables. Cette méthode utilise l'élastographie par résonance magnétique microscopique, ou micro-IRM-E, comme technique non invasive pour mesurer les propriétés mécaniques de petits tissus mous. Tout d'abord, des cellules sont ensemencées sur un support biomatériel afin de générer un tissu.Le tissu est suspendu dans un gel aros, et l'extrémité d'un actionneur est placée dans le gel. Ensuite, pour caractériser le mouvement de l'actionneur, celui-ci est transféré à l'échantillon et détecté à l'aide d'un laser. Doppler viter.L'échantillon et l'actionneur sont transférés vers un aimant pour la résonance magnétique. Des images d'élastographie sont acquises. L'analyse des images obtenues montre la variation de la rigidité au cisaillement pour les deux types de constructions, ostéogéniques et adipo-géniques.Nous avons tout d'abord eu l'idée de cette technique en observant la magnétographie par rémanence magnétique pour l'utilisation en diagnostic de maladies, et nous nous sommes rendu compte qu'elle pouvait être étendue au génie t

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Cet article présente une démonstration et un résumé des protocoles de fabrication de fantômes de gélatine qui imitent les tissus mous, ainsi que la caractérisation viscoélastique correspondante à l’aide de l’indentation et de l’élastographie par résonance magnétique.

Caractérisation viscoélastique de fantômes de gélatine imitant les tissus mous à l’aide de l’indentation et de l’élastographie par résonance magnétique

Ce protocole fournit des méthodes pour générer des tissus cardiaques et musculaires squelettiques modifiés en 3D et décrit leur utilisation dans les modalités de dépistage préclinique des médicaments. Les méthodes décrites utilisent un système de détection magnétique pour faciliter l’évaluation simultanée de 24 tissus en parallèle.

Tests précliniques de médicaments dans des tissus musculaires 3D évolutifs

L’objectif de cette étude était de développer un nouveau modèle numérique tridimensionnel pour le diagnostic précoce de la fibrose hépatique, qui inclut la rigidité de chaque voxel dans le foie du patient et peut donc être utilisé pour calculer le rapport de distribution du foie du patient à différents stades de la fibrose.

Un modèle numérique tridimensionnel pour le diagnostic précoce de la fibrose hépatique basé sur l’élastographie par résonance magnétique

Nous présentons une plateforme de test de rigidité dynamique et réversible fabriquée à l’aide d’un élastomère de silicone ultra-doux (polydiméthylsiloxane, PDMS) avec des particules de fer intégrées. Ce nouveau test convient à l’étude des changements physiques émergents dépendants du temps dans les phénotypes cellulaires, y compris le guidage par contact. Ici, nous mesurons l’alignement des cardiomyocytes du rat néonatal sur le raidissement de la matrice à l’aide de magnétiques.

Élastomères magnéto-rhéologiques microstructurés pour entraîner des changements dans l’alignement des cardiomyocytes

Il ya eu un regain d'intérêt dans le développement de valves polymères. Ici, les objectifs sont de démontrer la faisabilité de la modification d'un duplicateur d'impulsion commerciale pour accueillir géométries tri-leaflet et de définir un protocole de présenter des données hydrodynamiques de soupape polymères par rapport aux données de valve native et prothétique recueillies dans des conditions quasi-identiques.

Protocole pour l&#39;évaluation hydrodynamique relative de Vannes polymères tri-leaflet

Découvrez l'élastographie par résonance magnétique microscopique pour évaluer les propriétés mécaniques des tissus adipeux et ostéogéniques. Cette méthode non invasive permet de surveiller les constructions tissulaires sans les détruire.

Méthodologie élastographie par résonance magnétique pour l'évaluation des tissus Conçu croissance Construct

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