Name: Péridurale Mesure de la pression intracrânienne chez le rat en utilisant un transducteur de pression à fibre optique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-25T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 4 s
Description: Découvrez une technique péridurale pour mesurer la pression intracrânienne chez le rat à l'aide d'un transducteur à fibre optique. Cette méthode minimalement invasive permet d'obtenir des mesures précises sans traumatisme cérébral.

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Ce projet a été financé par la Fondation nationale des maladies, Hunter Medical Research Institute (HMRI) et la Santé nationale et du Medical Research Council (NH &amp; MRC), en Australie. Un merci spécial à la Faculté de personnel de l&#39;atelier santé à l&#39;Université de Newcastle pour leur expertise technique.

1. Pénétration du crâne <ol><li> Anesthésiez rat avec de l&#39;isoflurane (induction de 5%, l&#39;entretien 1,5-2%) dans 70% de N 2 et 30% d&#39;O 2. Après l&#39;induction de l&#39;anesthésie, placez le rat à plat ventre sur une plaque chauffante, positionner le nez du rat dans un cône de nez anesthésie. </li><li> Tout en maintenant l&#39;anesthésie, fixer la tête dans un cadre stéréotaxique, en insérant les oreilles les barreaux jusqu&#39;à la tête est stabilisée. Assurez-vous la respiration ne soit pas compromise. (Figure 2-A). </li><li> Injecter du cuir chevelu sous-cutanée avec de longue durée anesthésique local, la bupivacaïne 0,3 ml à 0,5% (Pfizer, Australie) avant de prendre une 1,5 cm tête la peau médiane incision. (Instruments et des gants stériles doivent être utilisés.) </li><li> Blunt disséquer les tissus mous et les muscles environnants pour situer clairement Lambda et Bregma. Rétracter la peau et du tissu conjonctif. </li><li> Tige tout saignement en appliquant une pression sur le crâne exposé. Saignement excessif du crâne peut être cautérisé. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un dentiste drill avec une fraise de 1 mm pointe, fraise un trou de 2 mm de large dans l&#39;os pariétal droit. Fraise du trou 2 mm et 2 mm latérale postérieure du Bregma pour éviter le sinus longitudinal supérieur et assurer la mise en place du capteur de PIC est sur le territoire ischémique, pour des études de course. D&#39;autres emplacements serait également approprié pour d&#39;autres applications. Fraise du trou à une profondeur où le crâne-dessus de la dure-mère soit translucide. (Figure 2-B). </li><li> Remplacer la bavure avec une pointe de 0,5 mm bavure pour enlever le crâne à la base du trou. </li><li> Lorsque le crâne commence à se fissurer, utiliser 45 ° pince pour enlever toute crâne restante, assurant la base du trou est dégagé de débris. (Figure 3). </li></ol> 2. Modification à vis et de l&#39;Insertion <ol><li> Percez un trou de 0,7 mm à travers une vis à tête hexagonale à tête à l&#39;aide d&#39;un tour et de 0,7 mm mèche. </li><li> Insérez la vis de surveillance dans le trou en tournant dans le environ 1,5 tours (utiliser le montant minimum detourne nécessaires pour garantir la vis dans le crâne de façon à ne pas endommager les tissus sous-jacent). (Figure 2-C et la figure 4). </li><li> Fraise un second trou pour une vis d&#39;ancrage dans l&#39;os pariétal gauche, 2 mm et 2 mm latérale postérieure du Bregma. Ce trou ne nécessite pas de pénétration complète du crâne, de sorte que la pointe de 1 mm bavure est utilisé pour fluidifier le crâne pour l&#39;insertion des vis. </li><li> Insérez un 2 x 4 mm hexagonale vis à tête dans le deuxième trou. Cette vis permet d&#39;ancrer le ciment dentaire et donc la vis de surveillance sur le crâne. </li><li> Utilisation d&#39;une pipette de transfert pour mélanger et appliquer monomère de ciment dentaire et de polymère à la base de la tête des vis. </li><li> Permettez-ciment dentaire à sécher pendant au moins 10 minutes. </li></ol> 3. Intracrânienne d&#39;insertion du capteur de pression <ol><li> Utilisation du liquide correcteur blanc, marquer le capteur à fibre optique de 4 mm de la pointe. </li><li> Remplir le trou de la vis de surveillance avec une solution saline stérile (0,9%) et d&#39;assurer pasbulles d&#39;air sont présentes dans la vis. </li><li> Insérer le PIC sonde 4 mm dans la vis de sorte que la pointe de la sonde est de niveau avec l&#39;extrémité de la vis. Assurez-vous de la pointe ne pas percer la dure-mère. </li><li> Ajuster la pointe de la sonde au sein de la vis jusqu&#39;à ce qu&#39;une trace PIC réfléchissante ventilation et de sang ondes d&#39;impulsions de pression peut être observée. (Figure 5). </li></ol> 4. Former un joint étanche à l&#39;air <ol><li> Un joint étanche à l&#39;air est impératif à une lecture précise du PIC. Mélanger une visqueuse monomère biocompatible matière de calfatage et de polymère dans un rapport de 1:1. Parce que le capteur de pression est à l&#39;extrémité de la sonde, et ceci dans la vis évidée, l&#39;application de matière de calfatage à l&#39;arbre de la sonde à fibre optique est sans effet sur la sensibilité du capteur de pression. </li><li> Appliquez une fine couche autour de la sonde et la tête de la vis de surveillance. Éviter de déplacer la sonde ICP. </li><li> Laisser reposer pendant 5 minutes. </li><li> Appliquer une mise secondeer de la matière de calfeutrage autour de la vis de contrôle complet et la sonde. Veiller à ce qu&#39;aucun liquide ne s&#39;échappe de toutes les crevasses dans le produit de calfeutrage. (Figure 2-D). </li><li> Retirer l&#39;oreille-bars. </li><li> Le rat peut rester en position couchée, ou être soigneusement la rotation dans la position dorsale pendant monitorage de la PIC. </li><li> Un schéma de la procédure terminée est représenté dans (Figure 6). </li></ol> 5. Enlèvement du capteur de pression intracrânienne et de la Réinsertion <ol><li> A la fin de suivi du PIC, le capteur ICP peut être retiré en tirant doucement sur le cathéter à partir du matériau vis et le calfeutrage. </li><li> Le capteur SAMBA doit être immédiatement placer dans 1% Terg-A-Zyme solution pour éviter la corrosion de pointe. </li><li> Le trou restant dans le matériau de calfatage doit être recouverte d&#39;une couche supplémentaire de matériau de calfeutrage. (Rat peut être réveillé à ce stade). </li><li> Pour réinsérer le cathéter SAMBA pour la surveillance supplémentaire, trancherle matériau de calfeutrage au niveau de la tête de la vis. </li><li> Répétez les étapes 3.2 - 5.3. </li></ol> 6. Les résultats représentatifs La figure 5 est une représentation de plus de dix lectures PIC secondes. Au départ, l&#39;ICP en moyenne chez un rat Wistar est de 6 mmHg. Les événements de périodicité plus courte représenté dans la figure 5 réfléchir les ondes de la pression artérielle d&#39;impulsions. Les événements de plus la périodicité montrent les événements de ventilation. Notez que le capteur SAMBA reflète une amplitude de ventilation de mmHg 3-4 et de 1-2 amplitude d&#39;impulsion mmHg. Pour valider la position du capteur SAMBA dans chaque expérience, les traces du PIC doivent être testés pour la réactivité à des compressions abdominales et des événements respiratoires, telles que des périodes d&#39;apnée. Un compression abdominale est représenté sur la figure 7. Des périodes d&#39;apnée (illustré dans la figure 8) sont observées dans la plupart des expériences invo<html> lving respirant spontanément les animaux. Ces événements sont identifiés sur les registres physiologiques par une absence de déformations des voies respiratoires sur des voies respiratoires (transducteur à membrane) et des traces de pression artérielle. Une modification équivalente dans la trace ICP valide le positionnement de la sonde ICP. La figure 9 représente une trace typique ICP après la suppression de l&#39;AER-bars (étape 4.6). L&#39;insertion des oreilles-bars à l&#39;étape 1.2 se traduit par une légère compression du crâne et de la perturbation conséquente du volume intracrânien et donc une augmentation de la PIC. Si le capteur est correctement positionné, le PIC va baisser d&#39;au moins 4 à 5 mm Hg avec la suppression de l&#39;AER-bars. L&#39;analyse histologique peut être utilisé pour vérifier les dommages causés à l&#39;aire corticale immédiatement sous le capteur de pression et vis. Un exemple d&#39;une insertion de vis traumatique et non traumatique est représenté dans la figure 4. _upload/3689/3689fig1.jpg &quot;/&gt; Figure 1. Rempli de fluide Vs SAMBA Traces PIC. ICP a été enregistrée simultanément par l&#39;intermédiaire du SAMBA fibre optique cathéter (en haut) et un cathéter rempli de fluide (en bas). Les valeurs moyennes du PIC étaient semblables dans les deux traces, mais le signal cathéter rempli de fluide a été notamment freiné par rapport à l&#39;appareil respiratoire claire et courbes de pression artérielle observée avec le cathéter à fibre optique. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig2.jpg" /> Figure 2. Intracrânienne procédure d&#39;insertion du cathéter de pression. La tête du rat a été fixé dans un cadre stéréotaxique d&#39;oreille bars et d&#39;un cône de nez anesthésie [A]. Un trou, d&#39;environ 2 mm de diamètre, a été foré dans l&#39;os pariétal droit [B]. Une vis 2 x 4 mm avec un trou 0,7 mm dans l&#39;arbre a été inséré [C]. Une vis d&#39;ancrage a été insérée dans l&#39;os pariétal gauche et le crâne et du site opératoire recouvert de ciment dentaire. Le cathet ICPer (flèche noire) a ensuite été inséré dans le trou de vis et un joint étanche à l&#39;air fait avec le matériau de calfeutrage (flèche blanche) [D]. Staple (pour l&#39;échelle) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig3.jpg" /> Figure 3. Vis de surveillance du trou de trépan Orientation. Le crâne a été autorisé de tissu conjonctif pour localiser Lambda (astérisque noire) et Bregma (astérisque blanc) et le trou 2 mm latéral et 2 mm en arrière de Bregma. Le trou a été dégagés des débris de quitter la dure-mère et des vaisseaux pie-mère (flèche noire) intactes. Staple (pour l&#39;échelle) = 12 mm x 5 mm. <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig4.jpg" /> Figure 4. Histologie du cerveau de rat 24 heures après Instrumentation de la vis du PIC-Surveillance. Hématoxyline et coloration à l&#39;éosine, 6 pm coupes coronales. Gauche: l&#39;insertion des vis non-traumatique. A droite: l&#39;insertion des vis-traumatique,zone de pâleur représente tissus endommagés par la morphologie cellulaire semblable à la zone endommagée accident vasculaire cérébral (flèche). Inserts à objectif 4x. <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig5.jpg" /> Figure 5. Typiques du PCI. Trace des ondes de pression d&#39;impulsions sont représentées par des événements de moindre amplitude (*). La ventilation est reflété par les événements de plus la périodicité (#). <img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig6.jpg" /> Figure 6. ICP sonde d&#39;insertion schématique. Diagramme illustre le placement de vis de support (à droite) et le calfeutrage enrobé ICP sonde dans la vis (à gauche). <img alt="Figure 7" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig7.jpg" /> Figure 7. Une compression abdominale. L&#39;abdomen a été temporairement comprimé (~ 1 sec) pour valider la viabilité du signal ICP. La compression entraîne diminution du retour veineux cérébral,l&#39;augmentation du volume intracrânien et donc d&#39;augmenter la PIC. La pression artérielle (Pa) a chuté seulement après la hausse initiale du PIC. <img alt="Figure 8" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig8.jpg" /> Figure 8. Période de l&#39;apnée. La cessation temporaire de la respiration se reflète dans la trace du transducteur à membrane, la pression artérielle (Pa) trace et la trace ICP. <img alt="Figure 9" src="/files/ftp_upload/3689/3689fig9.jpg" /> Figure 9. Ear-Bar enlèvement. ICP devrait baisser avec la suppression des stéréotaxiques permet aux écouteurs de barres.

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<li>Chavko, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+orientation+to+a+blast+and+pressure+wave+propagation+inside+the+rat+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Relationship between orientation to a blast and pressure wave propagation inside the rat brain.</a> J. Neurosci. Methods. 195, 61-66 (2011).</li>
<li>Leonardi, A. D., Bir, C. A., Ritzel, D. V., VandeVord, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracranial+pressure+increases+during+exposure+to+a+shock+wave%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurotrauma%22%5BJournal%5D)">Intracranial pressure increases during exposure to a shock wave.</a> J. Neurotrauma. 28, 85-94 (2011).</li>
</ol>

Nous n&#39;avons rien à communiquer.

La procédure présentée ici permet un enregistrement très sensible et précis de la pression intracrânienne. Cette technique mini-invasive évite un traumatisme cérébral significative par le positionnement du capteur de pression dans l&#39;espace épidural et non le tissu cérébral ou les ventricules. Les étapes critiques: 1) de forage à travers le crâne - il faut prendre soin de ne pas percer la dure-mère ou des dommages qui sous-tend le tissu cérébral, 2) assurer un joint étanche avec le produi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> Monomère ciment dentaire </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC500MLL </td><td></td></tr><tr><td> Dentaire ciment polymère </td><td> Henry Schein </td><td> VX-SC1000GCL4 </td><td></td></tr><tr><td> Foret fraise de dentiste-taille 12 </td><td> Gunz dentaire </td><td> EL104S001012/10 </td><td></td></tr><tr><td> Foret fraise de dentiste-taille 6 </td><td> Gunz dentaire </td><td> EL104S001006/10 </td><td></td></tr><tr><td> Vis Métal </td><td> Quincaillerie </td><td></td><td> 2 x 4 mm, à tête hexagonale. (Laboratoire modifiée de 0,7 mm trou percé à travers l&#39;arbre) </td></tr><tr><td> SAMBA Control Unit </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50433102 </td><td></td></tr><tr><td> SAMBA capteur </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 50461122 </td><td> 420 LP, 15cm fibre nue, radio-opaque de revêtement </td></tr><tr><td> Silagum AV Mono produit de calfeutrage </td><td> Gunz dentaire </td><td> RG 9152 </td><td> Vinylpolysiloxanes, les polysiloxanes hydrogène, de remplissage, des pigments, des additifs, catalyseurs plantinum </td></tr><tr><td> Terg-A-Zyme </td><td> Alconox, Inc </td><td> 1304 </td><td> Enzyme-actif détergent en poudre </td></tr></tbody></table>

péridurale mesure de la pression intracrânienne chez le rat en utilisant un transducteur de pression à fibre optique

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Élévation de la pression intracrânienne (PIC) est un problème important dans plusieurs formes de lésion cérébrale ischémique, y compris accident vasculaire cérébral, traumatisme crânien et un arrêt cardiaque. Cette élévation peut entraîner des blessures neurologiques plus loin, sous la forme d&#39;une hernie transtentorielle 1,2,3,4, la compression du mésencéphale, déficit neurologique ou cérébrale accrue du myocarde 2,4. Les thérapies actuelles sont souvent insuffisantes pour contrôler une PIC élevée dans le milieu clinique 5,6,7. Il ya donc un besoin pour des méthodes précises de mesure ICP dans des modèles animaux pour faire avancer notre compréhension des mécanismes de base et de développer de nouveaux traitements pour une PIC élevée. Dans les deux cas le milieu clinique et expérimentale ICP ne peut pas être estimé sans mesure directe. Plusieurs méthodes de l&#39;insertion du cathéter ICP existent actuellement. Parmi ceux-ci le cathéter intraventriculaire est devenu la clinique «gold standard» de la mesure ICP chez l&#39;homme 8. Cette méthode involves l&#39;élimination partielle du crâne et de l&#39;instrumentation du cathéter à travers le tissu cérébral. Par conséquent, les cathéters intraventriculaires ont un taux d&#39;infection des enfants de 6-11% 9. Pour cette raison, canulations sous-duraux et péridurale sont devenues les méthodes privilégiées dans les modèles animaux de lésions ischémiques. Diverses techniques de mesure du PIC ont été adaptées pour les modèles animaux, et parmi eux, les cathéters de télémétrie remplies de liquide 10 et cathéters semi-conducteurs sont le plus fréquemment utilisé 11,12,13,14,15. Les systèmes remplis de liquide sont susceptibles de développer des bulles d&#39;air dans la ligne, résultant en des lectures fausses PIC. Sondes statiques éviter ce problème (Figure 1). Un problème supplémentaire est cathéters de montage dans le cadre du crâne ou dans les ventricules, sans causer de lésions cérébrales qui pourraient modifier les résultats expérimentaux. Par conséquent, nous avons développé une méthode qui place un cathéter ICP contiguë à l&#39;espace épidural, mais évite le neced pour l&#39;insérer entre le crâne et le cerveau. Un cathéter à fibre optique de pression (420LP, Capteurs SAMBA, Suède) a été utilisé pour mesurer ICP à l&#39;endroit péridurale parce que l&#39;emplacement du capteur de pression (à la pointe du cathéter) a été trouvée pour produire un signal de haute fidélité ICP dans ce modèle . Il ya d&#39;autres fabricants de technologies similaires à fibres optiques 13 qui peuvent être utilisés avec notre méthodologie. Alternatives cathéters à l&#39;état solide, qui ont le capteur de pression situé sur le côté de la pointe du cathéter, ne serait pas approprié pour ce modèle en tant que signal seraient atténués par la présence de la vis de surveillance. Ici, nous présentons une méthode relativement simple et précis pour mesurer ICP. Cette méthode peut être utilisée dans un large éventail de modèles animaux PIC connexes.

Une nouvelle technique pour enregistrer les pressions à l&#39;intérieur du crâne est décrite. Procédé minimalement invasive utilise un système de pression à fibre optique de détection pour mesurer la pression intracrânienne (PIC) chez le rat anesthésié sans provoquer un traumatisme cérébral significative. La technique peut être utilisée dans un large éventail de modèles expérimentaux.

Péridurale Mesure de la pression intracrânienne chez le rat en utilisant un transducteur de pression à fibre optique

L'augmentation de la pression intracrânienne (PIC) est un problème majeur dans plusieurs formes de lésions cérébrales ischémiques, notamment l'accident vasculaire cérébral, le traumatisme crânien et...

L'objectif général de cette procédure est de mesurer de manière simple et précise la pression intracrânienne dans un modèle animal. Dans ce cas, le rat. Cela est réalisé en effectuant d'abord le fraisage de deux petits trous dans le crâne.Ensuite, une vis de surveillance de la PIC et une vis d'ancrage sont insérées dans le crâne et fixées à l'aide de ciment. Après l'insertion des vis, un transducteur de pression à fibre optique est introduit dans la vis de surveillance pour mesurer la pression intracrânienne dans l'espace épidural. Dans la dernière étape, un joint étanche à l'air est formé autour du transducteur de pression dans la vis de surveillance afin de sceller la voûte crânienne. En fin de compte, des résultats peuvent être obtenus, montrant un tracé physiologique de la pression intracrânienne au moyen d'un transducteur de pression à fibre optique épidural.La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car les étapes clés sont difficiles à maîtriser étant donné que le cerveau pourrait facilement être endommagé pendant la procédure, ce qui fausserait les résultats expérimentaux. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes, telles

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Cette vidéo montre l’isolement et la stimulation du nerf caverneux chez un rat anesthésié pour étudier les changements de pression artérielle dans le corps caverneux.

Réalisation d’une stimulation nerveuse caverneuse chez le rat pour mesurer la pression intracaverneuse

Source : Lani-Louzada, R., et al., Cautérisation circulaire complète du plexus vasculaire limbique pour le glaucome induit chirurgicalement chez les rongeurs. J. Vis. Exp. (2022)Cette vidéo montre l’induction et la surveillance de la pression intraoculaire élevée (PIO) dans un modèle de rat. Le processus consiste à cautériser les vaisseaux sanguins limbiques, ce qui entraîne une occlusion des vaisseaux et une PIO élevée. Le rat est ensuite laissé se rétablir, et la PIO est régulièrement...

 Induction d’une pression intraoculaire élevée dans un modèle de rat

Enregistrement de la pression intracaverneuse (ICP) est une méthode importante pour évaluer la fonction érectile d’animaux de laboratoire. Ici, un protocole détaillé est démontré pour la procédure d’enregistrement du pic par catheterizing pénis crura et puis électrique stimule les nerfs caverneux chez les rats.

Enregistrement de la pression intracaverneuse afin d’évaluer la fonction érectile chez les rongeurs

Cette étude décrit une procédure chirurgicale simplifiée et la technique permettant d’effectuer la stimulation du nerf caverneux avec l’isolement de l’électrode nerveuses complexes à l’aide de colle silicone et mesure de la pression intracaverneuse.

Stimulation du nerf caverneux et enregistrement de la pression intracaverneuse chez un Rat

Hypertension oculaire chronique est induite en appliquant une suture de circumlimbal chez les rats et les souris, conduisant à une détérioration fonctionnelle et structurelle des cellules ganglionnaires rétiniennes conformes de glaucome.

Un modèle de glaucome induit par la Suture Circumlimbal chez le rat et la souris

Nous avons développé une technique qui enregistre simultanément les expression et potentiels de champs locaux en réponse à des stimuli nociceptifs laser de bouger librement des rats. Cette technique aide à établir une relation directe de signaux électrocorticale au niveau macroscopique et mésoscopique qui facilite l’étude de traitement dans le cerveau de l’information nociceptive.

Enregistrements simultanés des potentiels corticaux champ Local et Electrocorticograms en réponse à des Stimuli nociceptifs Laser de bouger librement des Rats

Nous décrivons ici une configuration pour l’enregistrement simultané de l’électrocardiographie et intra-artérielle pression artérielle (PA) chez les rats expérimentaux, qui peuvent être faits avec un équipement standard dans les animaleries et peuvent être appliquées à physiologique ou pharmacologique études pour étudier les mécanismes pathogènes ou thérapeutiques en médecine cardiovasculaire.

Enregistrement simultané de l’électrocardiographie et envahissantes sang pression mesure chez les Rats

Ici nous présentons un protocole pour induire TBI grave avec le modèle latéral de percussion de fluide (FPI) modèle dans les rats adultes et mâles de Wistar. Nous démontrons également l'utilisation d'un système de télémétrie sans fil pour recueillir des enregistrements vidéo-EEG continus et surveiller les décharges épileptiformes compatibles avec l'épileptogenèse post-traumatique.

Utilisation d'un système vidéo-EEG sans fil pour surveiller les décharges épileptiformes à la suite d'une lésion cérébrale traumatique induite par le fluide latéral

La surveillance de la pression intracrânienne chez les rongeurs dans des modèles d’hémorragie intraventriculaire non traumatique n’est pas courante dans la littérature actuelle. Ici, nous démontrons une technique pour mesurer la pression intracrânienne, la pression artérielle moyenne et la pression de perfusion cérébrale pendant l’hémorragie intraventriculaire dans un modèle animal de rat.

Surveillance de la pression intracrânienne dans un modèle de rongeur hémorragique intraventriculaire non traumatique

Une estimation médiane automatisé changement et de la pression intracrânienne (PIC) de présélection système basé sur la tomodensitométrie (TDM) images pour les patients présentant une lésion cérébrale traumatique (TBI) est proposé d'utiliser le traitement d'images et de techniques d'apprentissage automatique.

Maj automatique Ligne médiane et estimation de la pression intracrânienne basée sur des images CT du cerveau

Découvrez une technique péridurale pour mesurer la pression intracrânienne chez le rat à l'aide d'un transducteur à fibre optique. Cette méthode minimalement invasive permet d'obtenir des mesures précises sans traumatisme cérébral.

Péridurale Mesure de la pression intracrânienne chez le rat en utilisant un transducteur de pression à fibre optique

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