Name: La production de vecteurs lentiviraux pour les cellules de transduction du Système Nerveux Central (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: Découvrez la production de vecteurs lentiviraux pour la livraison de gènes dans les cellules du système nerveux central. Cette méthode permet de transduire efficacement les neurones et les astrocytes primaires en culture.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ce travail a été soutenu par le NIH Neuroscience Blueprint subvention de base (P30 NS057105, BJS) à l&#39;Université de Washington, le Programme de subvention de projet NS032636 (BJS) et par le Centre de l&#39;espoir pour les troubles neurologiques.

1. Emballage de vecteurs lentiviraux Les vecteurs lentiviraux sont produites par co-transfection d&#39;un vecteur lentiviral de transfert et d&#39;autres plasmides requis pour l&#39;emballage dans des cellules 293T par la méthode de transfection au phosphate de calcium. Nous utilisons 10 100-mm boîtes de culture tissulaire dans ce protocole. Il peut être agrandie ou réduite en fonction des applications. La lignée cellulaire 293T est maintenue dans un milieu de Dulbecco Eagle modifié (DMEM) avec du glucose à haute (4500 mg / L), supplémenté avec 10% de sérum de veau fœtal (FBS), 100 unités / ml de pénicilline, 100 pg / ml de streptomycine à 37 ° C incubateur avec 5% de CO 2. <ol><li> Semences 293T cellules à confluence de 30-40% à 10 100 mm boîtes de culture tissulaire (3 x 10 6 cellules / boîte) dans un milieu de culture. Retour des cellules de l&#39;incubateur. </li><li> Après 20-24 h de culture, vérifier la densité cellulaire. Les cellules doit être d&#39;environ 80% de confluence au moment de la transfection. </li><li> Préparer un tube de 50 ml. Ajouter 4,4 ml TE79/10 (1 mM Tris-HCl, 0,1 mML&#39;EDTA, pH 7,9) moins le volume total de l&#39;ADN plasmidique suivant. Ajouter 100 ug transfert lentiviral plasmide (figure 1), 58 mg pMDLg / pRRE, 31 ug pCMV-G, 25 ug pRSV-Rev, 600 pi 2M CaCl 2. Mélanger délicatement. </li><li> Préparer un autre tube de 50 ml. Ajouter 5 ml 2x HBS (0,05 M de HEPES, 0,28 M de NaCl, 1,5 mM Na 2 HPO 4, pH 7,12). </li><li> Prenez l&#39;ADN-CaCl 2 par mélange de 10 ml pipette et ajouter dans le tube contenant 2 x HBS, goutte à goutte tout en vortex le tube. </li><li> Gardez la réaction de précipitation à la température ambiante (RT) pendant 30 min. </li><li> Retirer les boîtes de culture de pépinière. Mélanger la réaction de précipitation et par vortex. Ajouter 1 ml de suspension à chacune des cellules plat de 100 mm contenant. La suspension doit être ajouté lentement, goutte à goutte tout en remuant doucement le support dans le plat. Retour de ces plats à l&#39;incubateur et laisser reposer pendant 5 h. </li><li> Retirer le milieu de la culture. Ajouter 6 ml milieu de culture frais contenant 6 mM de sodium butyrate à chaque plat. Retour aux cultures de l&#39;incubateur. Après une nuit de culture, s&#39;il ya un rapporteur fluorescent dans la construction, vérifier l&#39;expression du gène rapporteur sous microscope à fluorescence. Habituellement, plus de 80% des cellules expriment le gène rapporteur si elle est entraînée par un promoteur ubiquiste (par exemple promoteur CMV). </li><li> Deux jours (40-44 h) après la transfection, ramasser le surnageant à partir de 10 plats en 2 tubes de 50 ml (environ 30 ml dans chaque tube). Congeler le surnageant dans congélateur à -80 ° C ou aller à l&#39;étape suivante. </li></ol> 2. La concentration et la purification des vecteurs <ol><li> Centrifuger le fraîchement prélevé ou décongelés surnageant à 900 g (environ 2000 tours par minute) pendant 10 min pour enlever tous les débris de cellules dans le surnageant. </li><li> Fixer une seringue de 60 ml, à un filtre de 0,2 um-SFCA seringue. Transférer surnageant de 50 ml tube de la seringue. Filtrer le surnageant dans un tube à centrifuger polyallomère. </li><li> Prenez 5 ml de saccharose à 20% (préparé dans du PBS) dans une pipette de 5 ml. Insérerla pipette à la partie inférieure du tube de centrifugeuse contenant surnageant. Ajouter lentement la solution de saccharose dans le surnageant vecteur. Répétez ces étapes pour surnageant d&#39;un autre tube. </li><li> Centrifuger le surnageant à 11000 rpm et 4 ° C pendant 4 h avec rotor Beckman SW28 balançoire. </li><li> Eliminer le surnageant. Ajouter 150 ul Lactose 4% (préparé dans du PBS) à chaque tube de la centrifugeuse. Remettre en suspension les culots. </li><li> Transfert du vecteur concentré de tous les tubes à centrifuger dans un tube de 1,5 ml. Laisser le tube sur la glace pendant 15 min. </li><li> Mélanger la suspension vecteur par pipetage. Spin avec microcentrifugeuse à pleine vitesse (environ 16000 g) pendant 1 min. </li><li> Transférer le surnageant dans un nouveau tube de 1,5 ml. Divisez l&#39;échantillon final en 20 aliquotes et les a entreposés dans congélateur à -80 ° C. </li></ol> 3. Le titrage des Vecteurs <ol><li> Graine 5 x 10 4 / puits de cellules HT1080 12 à plaque de puits dans 1 ml du milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS. </li><li> Après overnigla culture ht, compter les cellules d&#39;un puits et marquer le nombre de cellules. </li><li> Faire 5 fois de dilution en série (1:5, 1: 25; 1:125, et 1:625) du vecteur concentrée avec du milieu de culture. Ajouter I ul de chaque vecteur dilués dans les puits séparés. Les échantillons peuvent être dupliquées pour augmenter la précision. </li><li> Ajouter une pi 4 mg / ml polybrène (bromure d&#39;hexadiméthrine) dans chaque vecteur de puits contenant et dans un puits sans vecteur. Mélanger en secouant doucement la plaque. Retour à l&#39;incubateur pendant 48 h. </li><li> Evacuer le milieu des puits de culture cellulaire. Laver chaque puits avec du PBS. Ajouter 250 pi 1x trypsine-EDTA solution aux cellules. Lorsque les cellules se détachent (3-5 min), ajouter 1 ml milieu de culture. Remettre en suspension les cellules par pipetage. Transfert suspension cellulaire à 1,5 ml tubes à centrifuger. </li><li> Centrifuger à 900 g pendant 6 min. Pour les vecteurs avec un gène rapporteur fluorescent (par exemple GFP), passez à l&#39;étape 3.7 pour l&#39;analyse FACS. Pour les vecteurs sans un journaliste, passez à l&#39;étape 3.8 pour qPCR en temps réel. </li><li> Pour les vecteurs contenant un fluogène rapporteur fluorescentes, éliminer le surnageant et remettre en suspension le culot avec 300 ul de 3,7% de formaldéhyde dans du PBS. Déterminer le pourcentage des cellules rapporteur positifs par analyse par FACS. Le titre sera représenté sous forme d&#39;unités de transduction par millilitre concentrée vecteur (TU / ml). </li></ol><img alt="L&#39;équation 1" src="/files/ftp_upload/4031/4031eq1.jpg" /> Par exemple, si 1 x 10 5 cellules a été transduites avec pl 1/25 (0,04 pi) du vecteur et les cellules de 30% sont positifs journaliste, le titre sera: <img alt="L&#39;équation 2" src="/files/ftp_upload/4031/4031eq2.jpg" /> N&#39;utilisez que les dilutions tomber dans une relation linéaire entre le pourcentage de cellules positives et la quantité de vecteur ajoutée pour calculer le titre. Le titre final doit être une moyenne des titres obtenus à partir de transductions d&#39;au moins 2 montants différents du vecteur. <ol start="8"><li> Pour les vecteurs sansgène rapporteur fluorescent, extraire l&#39;ADN génomique de cellules HT1080 en utilisant QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen) selon le protocole du fabricant. Amplifier la séquence du vecteur dans l&#39;ADN génomique en utilisant ABI Prism 7000 Sequence Detection System (Applied Biosystems) avec des amorces (en matière de VIH-1 PBS / psi région 17) 5&#39;-CCGTTGTCAGGCAACGTG-3 &#39;et 5&#39;-AGCTGACAGGTGGTGGCAAT-3&#39;, et la sonde TaqMan 5 &#39;-FAM-AGCTCTCTCGACGCAGGACTCGGC-TAMRA-3&#39;. Gène de l&#39;albumine qui est un gène à copie unique dans le génome (2 copies par cellule) a également été amplifiée avec les amorces 5&#39;-TGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTT-3 &#39;et 5&#39;-CTCTCCTTCTCAGAAAGTGTGCATAT-3&#39;, et la sonde 5&#39;-FAM-TGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGA-TAMRA-3 «comme un contrôle interne. Déterminer les nombres de copies du vecteur et de l&#39;albumine par PCR dans la plaque de 96 puits selon l&#39;instruction de la fabrication avec le programme suivant: 50 ° C pendant 2 min, 95 ° C pendant 10 min, et 35 cycles de 95 ° C pendant 15 secondes et 60 ° C pendant 2 min. Dix-dilutions de plasmides de concentration connue (représenté sous forme de copienombre) contenant les séquences de matrice doit également être amplifié pour créer une courbe d&#39;étalonnage pour la quantification des échantillons inconnus. Le titre sera représenté sous forme d&#39;unités d&#39;intégration par millilitre concentrée vecteur (UI / ml). </li></ol><img alt="L&#39;équation 3" src="/files/ftp_upload/4031/4031eq3.jpg" /> 4. La transduction de cultures néocorticaux Cultures néocorticaux contenant à la fois les neurones et les cellules gliales sont préparés à partir de cortex de souris en utilisant un procédé de revêtement en deux étapes, comme décrit précédemment 18. Neocortices obtenus à partir de souris fœtales à 14-16 jours de gestation sont étalées sur une monocouche précédemment établi gliales dans du MEM supplémenté avec 10% de FBS, 20 mM de glucose et 2 mM de glutamine de 24 puits plaque de culture tissulaire. <ol><li> Après 5 jours in vitro, ajouter 10 uM cytosine arabinoside (Ara-C) dans la CENALla culture ortical pour inhiber la division cellulaire non-neuronales. Continuer la culture des cellules pendant 2 jours. </li><li> Milieu de culture chaud à 37 ° C bain-marie pendant 5-10 min. Remplacer l&#39;Ara-C contenant un milieu de milieu de culture frais (500 pl / puits). </li><li> Ajouter vecteur avec désirée IAM (multiplicité d&#39;infection, le rapport du nombre de particules de vecteur au nombre de cellules cibles) à la culture. Continuer la culture pendant 24 h. Nous utilisons MOI de 1-10 (généralement 5) dans des cultures primaires corticales. </li><li> Remplacez le milieu de culture par du milieu frais. Continuer la culture. Si il ya un gène rapporteur dans la construction de vecteur, vérifiez les cellules sous un éclairage fluorescent microscope 2 jours après transduction. Expression du gène rapporteur est visible dans les neurones 2-7 après transduction, en fonction de la conception du vecteur et la dose utilisée. </li></ol> 5. Les résultats représentatifs Les titres de vecteurs lentiviraux produites avec cette gamme protocole 10 8 -10 10 UI / ml, WHICh sont adaptés pour la transduction d&#39;une variété de types de cellules du SNC à la fois in vitro et in vivo. tableau 1 et figure 2 montrent un résultat représentatif en utilisant les vecteurs produits par ce protocole. Nous transduites murins cultures néocorticales avec des vecteurs lentiviraux exprimant la protéine fluorescente verte (GFP), contrôlée par synapsine (SYN) promoteur ou gliale la protéine acide fibrillaire (GFAP) promoteur. Sept jours après transduction, nous avons effectué immunomarquage pour les neurones et les astrocytes étiquettes avec des anticorps anti-neun et anti-GFAP, respectivement. Comme le montre le tableau 1 et fig. 2A, après transduction avec le vecteur portant le promoteur synapsine, plus de 90% des neurones (cellules + de Neun) expriment la GFP et aucun astrocytes (GFAP + cellules) exprimer ce gène rapporteur. Lorsque le promoteur GFAP est utilisé dans la construction du vecteur (figure 2B), environ 80% des astrocytes (GFAP + cellules) expressions GFP; tous les cellules GFP + sont les astrocytes comme l&#39;a confirmé par colocalisation avec la GFAP et l&#39;absence d&#39;expression de la GFP dans les cellules NeuN-étiquetés. Ces résultats démontrent que les vecteurs lentiviraux sont très efficaces pour fournir des transgènes à des cellules de CNS et de l&#39;expression génique des cellules spécifiques peuvent être obtenus lorsque les promoteurs appropriés sont utilisés. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/4031/4031fig1.jpg" /> Figure 1. Représentation schématique du VIH à base de vecteurs lentiviraux et les plasmides d&#39;emballage. Le provirus VIH-1 est affiché en haut. Les éléments de production de vecteur sont séparés en quatre différents plasmides. Le transfert lentivirale plasmide contient un hybride 5 &#39;LTR dans lequel la région U3 est remplacé par le cytomégalovirus (CMV), le signal d&#39;encapsidation (ψ), la séquence RRE, le tube polypurique centrale (cPPT), un gène d&#39;intérêt (par exemple une rapporteur fluorescent) le long d&#39;un promoteur de choix, et l&#39;extrémité 3 &#39;LTR dans lequel leséquences cis réglementaires sont complètement retirés de la région U3. pMDLg / pRRE contient les gènes gag et pol et RRE séquence de VIH-1 sous le contrôle du promoteur CMV. pRSV-Ap contient la séquence codante de Rev dirigée par le promoteur RSV. pCMV-G contient le gène de protéine VSV-G sous le contrôle du promoteur CMV. PA indique que le signal de polyadénylation de l&#39;homme β-globine. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/4031/4031fig2.jpg" /> Figure 2. Expression de gènes rapporteurs dans la souris culture mixte néocorticale transduits avec des vecteurs lentiviraux porteurs de cellules spécifiques au type de promoteurs. Les cultures ont été transduites avec LV-SYN-GFP (A) ou LV-GFAP-GFP vecteurs (B) à une MOI de 5. Sept jours après transduction, les cellules ont été immunomarquées avec anticorps anti-NeuN ou anti-GFAP. Panneaux supérieurs montrent fluorescence de la GFP, les panneaux du milieu montrent immunocoloration et panneaux inférieurs sont fusionnés images (GFP: vert; NeuN ou GFAP: rouge). </p&gt; <table border="1"><tbody><tr><td> Vecteur </td><td> Cellules GFP + dans les neurones </td><td> + GFP dans les astrocytes </td></tr><tr><td> LV-SYN-GFP </td><td> 92,2 ± 7,3 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> LV-GFAP-GFP </td><td> 0 </td><td> 78,3 ± 11,5 </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Comparaison de l&#39;expression de la GFP dans murins cultures néocorticales transduits avec des vecteurs lentiviraux portant des promoteurs différents: a. quelques cultures néocorticales murins (5 x 10 5 / puits dans 24 puits) ont été transduites avec le LV-SYN-GFP ou LV-GFAP-GFP à une MOI de 5. Sept jours après transduction, les cultures ont été fixées et immunocolorées pour NeuN ou GFAP. Le nombre de cellules GFP et NeuN / GFAP exprimant ont été comptés dans les images à partir de 10 champs par condition expérimentale. Les valeurs représentent le pourcentage de neurones (cellules + de Neun) ouastrocytes (GFAP + cellules) qui ont également exprimé le gène rapporteur GFP. Les valeurs indiquées sont des moyennes ± SD de trois expériences indépendantes.

<ol><li>Naldini, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+gene+delivery+and+stable+transduction+of+nondividing+cells+by+a+lentiviral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">In vivo gene delivery and stable transduction of nondividing cells by a lentiviral vector.</a> Science. 272, 263-267 (1996).</li>
<li>Zufferey, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-inactivating+lentivirus+vector+for+safe+and+efficient+in+vivo+gene+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Self-inactivating lentivirus vector for safe and efficient in vivo gene delivery.</a> J. Virol. 72, 9873-9880 (1998).</li>
<li>Davidson, B. L., Breakefield, X. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+vectors+for+gene+delivery+to+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Viral vectors for gene delivery to the nervous system.</a> Nat. Rev. Neurosci. 4, 353-364 (2003).</li>
<li>Gascon, S., Paez-Gomez, J. A., Diaz-Guerra, M., Scheiffele, P., Scholl, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual-promoter+lentiviral+vectors+for+constitutive+and+regulated+gene+expression+in+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Dual-promoter lentiviral vectors for constitutive and regulated gene expression in neurons.</a> J. Neurosci. Methods. 168, 104-1012 (2008).</li>
<li>Hioki, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+gene+transduction+of+neurons+by+lentivirus+with+enhanced+neuron-specific+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Efficient gene transduction of neurons by lentivirus with enhanced neuron-specific promoters.</a> Gene Ther. 14, 872-882 (2007).</li>
<li>Li, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+promoter+usage+for+lentiviral+vector-mediated+transduction+of+cultured+central+nervous+system+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Optimal promoter usage for lentiviral vector-mediated transduction of cultured central nervous system cells.</a> J. Neurosci. Methods. 189, 56-64 (2010).</li>
<li>Naldini, L., Blomer, U., Gage, F. H., Trono, D., Verma, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+transfer%2C+integration%2C+and+sustained+long-term+expression+of+the+transgene+in+adult+rat+brains+injected+with+a+lentiviral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Efficient transfer, integration, and sustained long-term expression of the transgene in adult rat brains injected with a lentiviral vector.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93, 11382-11388 (1996).</li>
<li>Blomer, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+and+sustained+gene+transfer+in+adult+neurons+with+a+lentivirus+vector%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Highly efficient and sustained gene transfer in adult neurons with a lentivirus vector.</a> J. Virol. 71, 6641-6649 (1997).</li>
<li>Consiglio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+in+vivo+gene+transfer+into+adult+mammalian+neural+stem+cells+by+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Robust in vivo gene transfer into adult mammalian neural stem cells by lentiviral vectors.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 14835-14840 (2004).</li>
<li>Jakobsson, J., Ericson, C., Jansson, M., Bjork, E., Lundberg, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+transgene+expression+in+rat+brain+using+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Targeted transgene expression in rat brain using lentiviral vectors.</a> J. Neurosci. Res. 73, 876-885 (2003).</li>
<li>Arya, S. K., Guo, C., Josephs, S. F., Wong-Staal, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-activator+gene+of+human+T-lymphotropic+virus+type+III+%28HTLV-III%29%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Trans-activator gene of human T-lymphotropic virus type III (HTLV-III).</a> Science. 229, 69-73 (1985).</li>
<li>Sirven, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+immunodeficiency+virus+type-1+central+DNA+flap+is+a+crucial+determinant+for+lentiviral+vector+nuclear+import+and+gene+transduction+of+human+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">The human immunodeficiency virus type-1 central DNA flap is a crucial determinant for lentiviral vector nuclear import and gene transduction of human hematopoietic stem cells.</a> Blood. 96, 4103-4110 (2000).</li>
<li>Burns, J. C., Friedmann, T., Driever, W., Burrascano, M., Yee, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicular+stomatitis+virus+G+glycoprotein+pseudotyped+retroviral+vectors%3A+concentration+to+very+high+titer+and+efficient+gene+transfer+into+mammalian+and+nonmammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Vesicular stomatitis virus G glycoprotein pseudotyped retroviral vectors: concentration to very high titer and efficient gene transfer into mammalian and nonmammalian cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 8033-8037 (1993).</li>
<li>Farson, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new-generation+stable+inducible+packaging+cell+line+for+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">A new-generation stable inducible packaging cell line for lentiviral vectors.</a> Hum. Gene Ther. 12, 981-997 (2001).</li>
<li>Broussau, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+packaging+cells+for+large-scale+production+of+lentiviral+vectors+in+serum-free+suspension+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Inducible packaging cells for large-scale production of lentiviral vectors in serum-free suspension culture.</a> Mol. Ther. 16, 500-507 (2008).</li>
<li>Wang, X., McManus, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lentivirus+production%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Lentivirus production.</a> J. Vis. Exp. (32), e1499(2009).</li>
<li>Sastry, L., Johnson, T., Hobson, M. J., Smucker, B., Cornetta, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Titering+lentiviral+vectors%3A+comparison+of+DNA%2C+RNA+and+marker+expression+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Titering lentiviral vectors: comparison of DNA, RNA and marker expression methods.</a> Gene Ther. 9, 1155-1162 (2002).</li>
<li>Snider, B. J., Lobner, D., Yamada, K. A., Choi, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditioning+heat+stress+reduces+excitotoxic+and+apoptotic+components+of+oxygen-glucose+deprivation-induced+neuronal+death+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Conditioning heat stress reduces excitotoxic and apoptotic components of oxygen-glucose deprivation-induced neuronal death in vitro.</a> J. Neurochem. 70, 120-129 (1998).</li>
<li>Mazarakis, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabies+virus+glycoprotein+pseudotyping+of+lentiviral+vectors+enables+retrograde+axonal+transport+and+access+to+the+nervous+system+after+peripheral+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">Rabies virus glycoprotein pseudotyping of lentiviral vectors enables retrograde axonal transport and access to the nervous system after peripheral delivery.</a> Hum. Mol. Genet. 10, 2109-2121 (2001).</li>
<li>Kato, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuron-specific+gene+transfer+through+retrograde+transport+of+lentiviral+vector+pseudotyped+with+a+novel+type+of+fusion+envelope+glycoprotein%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Neuron-specific gene transfer through retrograde transport of lentiviral vector pseudotyped with a novel type of fusion envelope glycoprotein.</a> Hum. Gene Ther. 22, 1511-1523 (2011).</li>
<li>Segura, M. M., Garnier, A., Durocher, Y., Ansorge, S., Kamen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+protocol+for+lentiviral+vector+mass+production%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">New protocol for lentiviral vector mass production.</a> Methods Mol. Biol. 614, 39-52 (2010).</li>
<li>Kutner, R. H., Puthli, S., Marino, M. P., Reiser, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+production+and+concentration+of+HIV-1-based+lentiviral+vectors+using+HYPERFlask+vessels+and+anion+exchange+membrane+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Simplified production and concentration of HIV-1-based lentiviral vectors using HYPERFlask vessels and anion exchange membrane chromatography.</a> BMC Biotechnol. 9, 10(2009).</li>
<li>Laughlin, M. A., Chang, G. Y., Oakes, J. W., Gonzalez-Scarano, F., Pomerantz, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+butyrate+stimulation+of+HIV-1+gene+expression%3A+a+novel+mechanism+of+induction+independent+of+NF-kappa+B%5BTitle%5D)+AND+%22J+Acquir+Immune+Defic+Syndr+Hum+Retrovirol%22%5BJournal%5D)">Sodium butyrate stimulation of HIV-1 gene expression: a novel mechanism of induction independent of NF-kappa B.</a> J Acquir Immune Defic Syndr Hum Retrovirol. 9, 332-339 (1995).</li>
<li>Gasmi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirements+for+efficient+production+and+transduction+of+human+immunodeficiency+virus+type+1-based+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Requirements for efficient production and transduction of human immunodeficiency virus type 1-based vectors.</a> J. Virol. 73, 1828-1834 (1999).</li>
<li>Palsson, B., Andreadis, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+physico-chemical+factors+that+govern+retrovirus-mediated+gene+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Hematol%22%5BJournal%5D)">The physico-chemical factors that govern retrovirus-mediated gene transfer.</a> Exp. Hematol. 25, 94-102 (1997).</li>
<li>Lizee, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+quantitative+reverse+transcriptase-polymerase+chain+reaction+as+a+method+for+determining+lentiviral+vector+titers+and+measuring+transgene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Real-time quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction as a method for determining lentiviral vector titers and measuring transgene expression.</a> Hum. Gene Ther. 14, 497-507 (2003).</li>
<li>Lee, J. K., Chung, J., McAlpine, F. E., Tansey, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulator+of+G-Protein+Signaling-10+Negatively+Regulates+NF-%7Bkappa%7DB+in+Microglia+and+Neuroprotects+Dopaminergic+Neurons+in+Hemiparkinsonian+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Regulator of G-Protein Signaling-10 Negatively Regulates NF-{kappa}B in Microglia and Neuroprotects Dopaminergic Neurons in Hemiparkinsonian Rats.</a> J. Neurosci. 31, 11879-11888 (2011).</li>
<li>Shevtsova, Z., Malik, J. M., Michel, U., Bahr, M., Kugler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Promoters+and+serotypes%3A+targeting+of+adeno-associated+virus+vectors+for+gene+transfer+in+the+rat+central+nervous+system+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Promoters and serotypes: targeting of adeno-associated virus vectors for gene transfer in the rat central nervous system in vitro and in vivo.</a> Exp. Physiol. 90, 53-59 (2005).</li>
</ol>

Pas de conflits d&#39;intérêt déclarés.

Dans ce protocole, nous avons montré la production de vecteurs lentiviraux et l&#39;application de ces vecteurs dans les cultures néocorticales. Nous avons démontré l&#39;efficacité et de la cellule spécifique au type de transduction par les vecteurs produits par ces méthodes. Lorsque le promoteur synapsine est utilisé, expression de la GFP est strictement neurone spécifique. Lorsque le promoteur GFAP est utilisé, expression de la GFP est exclusivement dans les astrocytes. Si aucune cellule spécifique au type d&#39;expr...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D5796 </td></tr><tr><td> MEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11090-081 </td></tr><tr><td> Sérum de veau fœtal </td><td> Hyclone </td><td> SV3001403 </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Mediatech </td><td> 21-040-CM </td></tr><tr><td> Trypsine-EDTA </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T3924 </td></tr><tr><td> Le butyrate de sodium </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> B5887 </td></tr><tr><td> Hexadiméthrine bromure de (polybrène) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> H9268 </td></tr><tr><td> Des cellules 293T </td><td> ATCC </td><td> CRL-11268 </td></tr><tr><td> Cellules HT1080 </td><td> ATCC </td><td> CCL-121 </td></tr><tr><td> Falcon 100 x 20 mm tissus culturplat e </td><td> BD Biosciences </td><td> 353003 </td></tr><tr><td> 1 x 3 ½ tube de la centrifugeuse polyallomoer </td><td> Beckman-Coulter </td><td> 326823 </td></tr><tr><td> De 0,2 micron filtre à seringue </td><td> Corning </td><td> 431219 </td></tr><tr><td> QIAamp DNA Mini Kit </td><td> Qiagen </td><td> 51304 </td></tr></tbody></table>

la production de vecteurs lentiviraux pour les cellules de transduction du système nerveux central

Production of Lentiviral Vectors for Transducing Cells from the Central Nervous System

Une livraison efficace des gènes dans le système nerveux central (SNC) est importante pour l'étude des fonctions géniques, la modélisation des maladies neurologiques et le développement d'approches thérapeutiques. Les vecteurs lentiviraux sont des outils intéressants pour la transduction des neurones et d'autres types cellulaires du SNC, car ils transduisent à la fois les cellules en division et les cellules non divisantes, permettent une expression prolongée des transgènes, et possèdent une capacité d'emballage relativement élevée ainsi qu'une faible toxicité 1-3. Les vecteurs lentiviraux ont été utilisés avec succès pour transduire de nombreux types de cellules nerveuses in vitro 4-6 ainsi que chez l'animal 7-10.
De grands efforts ont été déployés pour développer des vecteurs lentiviraux offrant une meilleure sécurité biologique et une efficacité accrue pour la livraison de gènes. Les vecteurs lentiviraux actuels de troisième génération, défectifs pour la réplication et auto-inactivants (SIN), sont illustrés dans la Figure 1. Les éléments requis pour l’emballage du vecteur sont répartis entre quatre plasmides. Dans le plasmide de transfert lentiviral, la région U3 de la répétition terminale longue (LTR) en 5' est remplacée par un promoteur fort provenant d’un autre virus. Cette modification permet la transcription de la séquence du vecteur indépendamment de la protéine Tat du VIH-1, normalement nécessaire pour l’expression des gènes viraux 11. Le signal d’emballage (Ψ) est essentiel à l’encapsidation, et l’élément de réponse à Rev (RRE) est requis pour produire des vecteurs à haut titre. Le tractus polypurinique central (cPPT) joue un rôle important dans l’importation nucléaire de l’ADN du vecteur, une caractéristique indispensable pour la transduction de cellules non divisantes 12. Dans le LTR en 3', les séquences régulatrices en cis sont entièrement supprimées de la région U3. Cette délétion est copiée vers le LTR en 5' après la transcription inverse, entraînant l’inactivation transcriptionnelle des deux LTR. Le plasmide pMDLg/pRRE contient les gènes gag/pol du VIH-1, qui fournissent les protéines structurales ainsi que la transcriptase inverse. Le plasmide pRSV-Rev code pour la protéine Rev, qui se lie au RRE afin de permettre une exportation efficace de l’ARN hors du noyau. Le plasmide pCMV-G code pour la glycoprotéine du virus de la stomatite vésiculeuse (VSV-G), qui remplace l’Env du VIH-1. La VSV-G élargit le tropisme des vecteurs et permet leur concentration par ultracentrifugation 13. Tous les gènes codant pour les protéines accessoires, notamment Vif, Vpr, Vpu et Nef, sont exclus du système d’emballage. La production et la manipulation des vecteurs lentiviraux doivent être réalisées conformément aux recommandations du NIH relatives aux recherches impliquant de l’ADN recombinant (<a href="http://oba.od.nih.gov/oba/rac/Guidelines/NIH_Guidelines.pdf" target="_blank">http://oba.od.nih.gov/oba/rac/Guidelines/NIH_Guidelines.pdf</a>). Une autorisation de la part du comité institutionnel de sécurité biologique et chimique peut être requise avant d’utiliser des vecteurs lentiviraux. Les vecteurs lentiviraux sont généralement produits par cotransfection de cellules 293T avec un plasmide de transfert lentiviral et des plasmides auxiliaires codant pour les protéines nécessaires à l’emballage du vecteur. De nombreux plasmides de transfert lentiviraux et plasmides auxiliaires sont disponibles auprès d’Addgene, un dépôt non lucratif de plasmides (<a href="http://www.addgene.org/" target="_blank">http://www.addgene.org/</a>). Certaines lignées cellulaires d’emballage stables ont été développées, mais ces systèmes offrent moins de souplesse et leur efficacité d’emballage diminue généralement avec le temps 14, 15. Des kits de transfection commerciaux peuvent assurer une efficacité élevée de transfection 16, mais ils peuvent s’avérer très coûteux pour la production à grande échelle de vecteurs. Les méthodes de précipitation par phosphate de calcium permettent une transfection très efficace des cellules 293T, offrant ainsi une approche fiable et économique pour la production de vecteurs lentiviraux.
Dans ce protocole, nous produisons des vecteurs lentiviraux par cotransfection de cellules 293T avec quatre plasmides selon le principe de précipitation au phosphate de calcium, suivie d'une purification et d'une concentration par ultracentrifugation à travers un coussin de saccharose à 20 %. Les titres des vecteurs sont déterminés par analyse de tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) ou par qPCR en temps réel. La production et la titration des vecteurs lentiviraux selon ce protocole peuvent être réalisées en 9 jours. Nous fournissons un exemple de transduction de ces vecteurs dans des cultures néocorticales murines contenant à la fois des neurones et des astrocytes. Nous démontrons que les vecteurs lentiviraux permettent une forte efficacité de transduction et une expression génique spécifique aux types cellulaires dans des cellules primaires issues du SNC.

Dans ce protocole, nous décrivons la production, la purification et le titrage des vecteurs lentiviraux. Nous donnons un exemple de transfert de gènes lentiviraux vecteur médiation dans neurones en culture primaire et les astrocytes. Nos méthodes peuvent également s&#39;appliquer à d&#39;autres types cellulaires<em&gt; In vitro</em&gt; Et<em&gt; In vivo</em&gt;.

La production de vecteurs lentiviraux pour les cellules de transduction du Système Nerveux Central

L'administration efficace de gènes dans le système nerveux central (SNC) est importante pour l'étude des fonctions géniques, la modélisation des maladies neurologiques et le développement de...

L'objectif général de cette procédure est de produire des vecteurs lentiviraux permettant de délivrer des transgènes dans des cellules du système nerveux central. Cette étape est réalisée en co-transfectant des plasmides de transfert lentiviraux et des plasmides auxiliaires dans des cellules 293T selon le principe de précipitation par phosphate de calcium. La deuxième étape de la procédure consiste à purifier et concentrer le surnageant viral par ultracentrifugation à travers un coussin de saccharose à 20 %.La troisième étape consiste à déterminer le titre du vecteur par analyse en FAX ou par PCR quantitative en temps réel. La dernière étape de la procédure est de transduire le vecteur dans les cellules cibles. Enfin, l'efficacité de transduction selon le type cellulaire peut être démontrée par immunomarquage des cellules cibles exprimant le transgène.L'avantage principal de notre technique par rapport à certaines autres méthodes existantes, comme l'utilisation de kits commerciaux, réside dans le fait qu'elle offre une approche rentable, efficace et fiable pour la production de vecteurs lentiviraux. Cette méthode permet donc d'obtenir des informations sur la délivrance de transgènes dans les cellules du système nerveux central. Elle peut également être appliquée à d'autres types cellulaires in vivo et in vitro. Les vecteurs lentiviraux sont produits par une transfection concomitante de plasmides dans des cellules 293T.La lignée cellulaire 293T doit être maintenue dans un DMEM modifié pour cette expérience. Ensemencer dix boîtes de culture de cent millimètres avec des cellules 293T à une densité de 30 à 40 %. Après 20 à 24 heures de culture, les cellules doivent atteindre environ 80 % de confluence et être ainsi prêtes pour la transfection.Pour la transfection, ajoutez tous les plasmides requis dans un tube de 50 millilitres et complétez le tube à 4,4 millilitres avec du tampon TE 7 9 10. Ajoutez ensuite 0,6 millilitre de chlorure de calcium 2 M et mélangez délicatement. Préparez un autre tube de 50 millilitres contenant 5 millilitres de 2 XHBS. Ajoutez goutte à goutte le mélange de plasmide et de chlorure de calcium dans le HBS en vortexant continuellement le mélange.Maintenant, au cours des 30 minutes suivantes, laissez un précipité se former à température ambiante. Récupérez les boîtes de culture à partir de l'incubateur et, une fois le précipité formé en suspension, ajoutez un millilitre de la suspension dans chaque boîte goutte à goutte à l’aide d’un vortex.Tout en agitant doucement le milieu dans la boîte. Secouez brièvement le tube avant de transférer la suspension dans la prochaine boîte. Remettez les plaques chargées dans l'incubateur.Laisser les plasmides transfecter les cellules pendant cinq heures. Après cinq heures, remplacer le milieu par six millilitres de milieu contenant six millimolaire de butyrate de sodium.Replacer ensuite les cultures dans l’incubateur le jour suivant. Si un marqueur fluorescent exprimé de façon ubiquitaire a été utilisé, vérifier son expression au microscope fluorescent. Généralement, plus de 80 % des cellules expriment le gène rapporteur.Deux jours après la transfection, recueillir le SANE dans les boîtes dans deux tubes de 50 millilitres, ce qui devrait représenter environ 30 millilitres par tube. À ce stade, le surnageant peut être conservé à moins 80 degrés Celsius avant de poursuivre. Commencer par centrifuger le surnageant recueilli à partir des plaques de transfection afin d'éliminer tous les débris cellulaires.Entre-temps, fixez une seringue de 60 millilitres à un filtre à seringue SFCA de 0,2 micron. Ensuite, versez délicatement le surnageant dans la seringue. Puis, poussez le piston pour filtrer le surnageant dans un tube de centrifugeuse en polymère de 38 millilitres adapté à un rotor à godets oscillants.Prélève maintenant cinq millilitres d’une solution de saccharose à 20 % dans du PBS à l’aide d’une pipette de cinq millilitres. Introduis la pipette jusqu’au fond du tube de centrifugation contenant le surnageant, puis ajoute lentement la solution de saccharose sous le surnageant viral. Fais ensuite centrifuger le SNAT pendant quatre heures dans une centrifugeuse Beckman SW 28. Immédiatement après la centrifugation, verse et élimine le surnageant, puis redisperser le culot contenant les vecteurs dans 150 microlitres de lactose à 4 % dans du PBS. Rassemble toutes les suspensions dans un seul tube de 1,5 millilitre et laisse refroidir pendant 15 minutes sur de la glace.Ensuite, mélangez la suspension par pipetage, puis centrifugez-la dans une microcentrifugeuse à vitesse maximale pendant une minute. Transférez le surnageant dans un nouveau tube de 1,5 millilitre et divisez le vecteur concentré en aliquotes de 20 microlitres pour stockage à moins 80 degrés Celsius. Pour titrer le vecteur, semez d'abord des cellules HT 1080 dans une plaque de 12 puits avec un millilitre de DMEM supplémenté par puits. Après une culture nocturne, comptez les cellules provenant d'un puits et notez le nombre de cellules.Préparez maintenant une série de dilutions sériées quintuplées du vecteur concentré dans le milieu de culture. Ajoutez ensuite un microlitre de chaque vecteur dilué dans un puits distinct ; les échantillons peuvent être dupliqués, mais laissez au moins un puits sans vecteur comme témoin négatif. Ensuite, ajoutez un microlitre de poly brain dans chaque puits et mélangez la plaque par agitation douce.Remettez la plaque dans l’incubateur pendant 48 heures. Deux jours plus tard, retirez le milieu de chaque puits et lavez les cellules avec du PPS. Ensuite, trypsinez les cellules et resuspendez-les dans un millilitre de milieu de culture en pipetant pour transférer les suspensions cellulaires dans des tubes de 1,5 millilitre, puis centrifugez-les pour recueillir les pellets cellulaires.Si les vecteurs contiennent un gène rapporteur fluorescent, resuspendre le culot dans 300 microlitres de formaldéhyde à 3,7 % dans du PBS, puis déterminer le pourcentage de cellules positives par analyse en cytométrie en flux et calculer le titre. Si un gène rapporteur fluorescent n’a pas été utilisé, extraire l’ADN génomique des cellules à l’aide d’un kit disponible commercialement. Ensuite, amplifier la séquence du vecteur par PCR en temps réel.Créez une courbe standard en amplifiant la séquence témoin à partir d'un plasmide dont le nombre de copies est connu, selon une série de dilutions décimales. Calculez ensuite le titre en unités d'intégration par millilitre. Préparez des cultures néocorticales contenant des neurones et des cellules gliales issues de cortices de souris à l'aide d'une procédure en deux étapes décrite précédemment, dans une plaque de culture tissulaire à 24 puits contenant du MEM supplémenté, après cinq jours.In vitro, ajoutez 10 micromolaire de RSC pour inhiber la division des cellules non neuronales. Poursuivez ensuite la culture pendant deux jours, en prenant soin de ne pas laisser les cellules sécher lors des changements de milieu. Après deux jours, remplacez le milieu contenant le RC par un demi-millilitre de milieu fraîchement préparé et tiède.Ensuite, ajoutez le vecteur au MOI souhaité à la culture et poursuivez l'incubation des cellules pendant 24 heures. Après 24 heures, remplacez le milieu et, après 48 heures, si un gène rapporteur est présent, observez les cellules au microscope à fluorescence ; l'expression du rapporteur devrait être visible dans les neurones entre deux et sept jours après la transfection. Selon la conception du vecteur et la dose, les titres de vecteurs lentiviraux produits avec ce protocole varient de 10 puissance 8 à 10 puissance 10.Unités d'intégration par millilitre, ce qui convient à la transduction in vitro ou in vivo de nombreuses cellules du SNC. Ainsi, des cultures néocorticales murines ont été transduites avec des vecteurs rétroviraux exprimant la GFP sous le contrôle d'un promoteur synapsine ou d'un promoteur A-G-F-A-P. Sept jours après la transduction, une immunohistochimie a été réalisée sur les cellules transduites avec le vecteur portant le promoteur synapsine.Plus de 90 % des neurones identifiés comme nouvelles cellules positives à l'end exprimaient la GFP, tandis qu'aucun des astrocytes identifiés comme cellules positives au GFAP n'exprimait. Le gène rapporteur dans les cellules transduites avec les vecteurs contenant le promoteur A-G-F-A-P. Environ 80 % des astrocytes exprimaient la GFP, mais aucun des neurones nouveaux et marqués n'exprimait la GFP.Ces résultats démontrent que les vecteurs lentiviraux sont très efficaces pour délivrer des transgènes aux cellules du SNC. En outre, une expression génique spécifique aux cellules peut être obtenue lorsqu'on utilise des promoteurs appropriés. Les vecteurs viraux de type lentivirus ont été largement utilisés pour surexprimer ou inhiber l'expression de gènes d'intérêt dans le système nerveux central.Notre protocole devrait être utile à d'autres chercheurs qui souhaitent utiliser ces méthodes dans leurs laboratoires.

production-lentiviral-vectors-for-transducing-cells-from-central

Research

Recherche

JoVE Journal

Neuroscience

Neurosciences

Pour faire des lentivirus, des vecteurs d'ADN sont transfectés dans les cellules humaines 293. Après la récolte et la concentration du surnageant, le titre viral est déterminé par l'expression de fluorescence avec un cytomètre en flux.

La production de lentivirus

Vecteurs d'expression lentiviraux sont les véhicules les plus efficaces pour différentes exprimant de façon stable des molécules effectrices ou des constructions rapporteurs à diviser et non de division des cellules de mammifères et des organismes entiers. Ici, nous fournir un protocole sur la façon d'emballer des constructions d'expression lentivector particules pseudoviral et pour transduire des cellules cibles en utilisant les particules pseudoviral.

Emballage VIH ou FIV à base de constructions d&#39;expression et de transduction du Lentivector VSV-G pseudotypés particules virales

Ici, nous utilisons transduction rétrovirale et transfection concatémérique pour créer une lignée cellulaire qui peut exprimer les composantes d'un vecteur lentivirus (LV) en l'absence de tétracycline. Ce LV code pour la GFP et est pseudotypé avec une glycoprotéine, SVGmu, qui est spécifique d'un récepteur sur les cellules dendritiques.

Un régulée par la tetracycline lignée cellulaire produit vecteurs lentiviraux titre élevé qui ciblent spécifiquement les cellules dendritiques

Nous présentons ici des protocoles qui offrent une base flexible et stratégique pour manipuler viralement les cellules précurseurs d’oligodendrocytes afin de surexprimer des protéines d’intérêt afin d’interroger spécifiquement leur rôle dans les oligodendrocytes via le modèle in vitro de myélinisation du système nerveux central.

Production et utilisation de lentivirus à des cellules sélective transduction primaire Oligodendrocyte précurseur pour In Vitro Les dosages de la myélinisation

Ici, nous présentons un protocole pour la conversion directe de fibroblastes embryonnaires murins en cellules souches trophoblastiques pleinement fonctionnelles et stables par surexpression de dix jours de Tfap2c, Gata3, Eomes et Ets2.

Protocole pour la conversion directe des fibroblastes embryonnaires murins en trophoblaste cellules souches

Ce protocole décrit une méthode pour réaliser l’intégration stable d’un gène d’intérêt dans le génome humain par le système transcriptionnellement réglementé de la Belle au bois dormant . Préparation de l’intégration des vecteurs LENTIVIRAUX défectueux, la transduction in vitro des cellules humaines et l’analyse moléculaire sur les cellules transduits sont signalés.

Une méthode de Transposition efficace In Vitro par un système de beauté dormir transcriptionnellement réglementé empaquetée dans un vecteur Lentiviral défectueux de l’intégration

Nous présentons ici un protocole visant à promouvoir l’intégration du transgène et la production de souris transgéniques fondateur avec grande efficacité par une simple injection d’un vecteur lentiviral dans l’espace périvitellin d’un ovocyte fécondé.

Production de souris transgéniques par des gènes : une méthode Simple et très efficace pour l’étude directe des fondateurs

La cible ADN épigénome édition représente une approche thérapeutique efficace. Ce protocole décrit la production, purification et concentration des vecteurs lentiviraux all-in-one, hébergeant le transgène CRISPR-dCas9-DNMT3A pour applications d’édition épigénome dans les cellules souches humaines pluripotentes induites (hiPSC)-dérivé de neurones.

Vecteur lentiviral plate-forme pour la livraison efficace des outils d’édition épigénome dans l’homme induit des modèles de maladies dérivées de cellules souches pluripotentes

En utilisant le polymère cationique à faible coût polyéthylénimine (PEI), nous avons produit des particules lentivirales pour l’expression stable des shRNA dans les cellules souches embryonnaires humaines H9 (CSEh) et les cellules progénitrices neurales (NPC) dérivées de H9 transduites transitoirement à haute efficacité.

Administration par médiation lentivirale d’ARNs aux CSEh et aux PNJ à l’aide de polyéthylénimine polymère cationique à faible coût (PEI)

Nous démontrons un protocole étape par étape pour l’étude de la fonction des gènes dans les macrophages résidents du tissu péritonéal in vivo, en utilisant des vecteurs lentiviraux.

Préparation de vecteur lentiviral pour une modulation efficace des gènes et des microARN de macrophages résidents dans les tissus de la cavité péritonéale in vivo chez la souris

Découvrez la production de vecteurs lentiviraux pour la livraison de gènes dans les cellules du système nerveux central. Cette méthode permet de transduire efficacement les neurones et les astrocytes primaires en culture.

La production de vecteurs lentiviraux pour les cellules de transduction du Système Nerveux Central

Explorer plus de vidéos