Name: Imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris avec FDG micro-PET/CT (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-23T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: Découvrez l'imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris par micro-PET/CT avec FDG. Cette méthode standardisée permet d'évaluer l'activité métabolique de manière non invasive sous stimulation par le froid.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Les auteurs tiennent à remercier Laura Diaz, Kevin Phillips, Willa A. Hsueh, et le roi C. Li pour leur soutien utiles commentaires et technique dans le développement de cette méthode.

1. Préparation des animaux et de Traitement par le froid <ol><li> Localiser et inspecter un 4 ° C chambre froide qui a été approuvé pour recevoir des souris de laboratoire. </li><li> Cages pour animaux de pré-refroidissement pendant la nuit dans la chambre froide. Les cages sont assemblés sans nourriture et la litière, mais avec une bouteille d&#39;eau. </li><li> Dans la matinée de la journée expérimentale, les souris lieu un par un dans chacune des cages pré-réfrigérés à intervalles de 30 min. Chaque souris individuellement en cage devrait rester dans la chambre froide pendant près de 4 heures avant d&#39;être transporté au laboratoire d&#39;imagerie. S&#39;assurer que les souris sont à jeun mais avec un accès à l&#39;eau. </li><li> À 4 h après le transport d&#39;un animal traitement par le froid à la fois toutes les 30 minutes au laboratoire d&#39;imagerie. Ceci peut être obtenu en remplissant un récipient en polystyrène avec de la glace et à placer une cage de boîtier pré-refroidi au-dessus de la glace à l&#39;intérieur de la boîte. Librement placer le couvercle sur la boîte en polystyrène. </li></ol> 2. Configuration Micro-PET/CT imagerie de flux de travail <p class=&quot;Jove_content&quot;&gt; Dans ce protocole d&#39;imagerie micro-PET/CT est atteint avec la TEP Siemens Inveon dédié (PDEF) Système et multimodalité Inveon (MM) système (CT / SPECT) en mode connecté. L&#39;animal est placé de l&#39;entrée MM, balayée par le premier scanner de repères anatomiques, et ensuite déplacé vers le centre de la MEPF pour une acquisition statique F18 PET. Afin de permettre à l&#39;ordinateur hôte pour mener à bien ces tâches séquentielles automatiquement, ce qui suit &quot;workflow&quot; est programmé avec le milieu de travail Acquisition Inveon (AIF) logiciel avant la séance d&#39;imagerie réelle. <ol><li> Acquisition CT: Pour l&#39;ensemble du corps tomodensitométrie, régler le courant à 500 uA, la tension à 80kV, temps d&#39;exposition à 200 ms, et 240 marches pour 240 ° de rotation. Pour détecteur de rayons X, sélectionnez la résolution à «faible grossissement système&quot; avec 78 mm Imagerie en mode axial et un lit simple. Sélectionnez «reconstruction en temps réel&quot; en utilisant le &quot;Common Cone-Beam reconstruction&quot; méthode pour que les pourparlers PC hôte avecun véritable ordinateur dédié reconstruction de temps (Cobra) pour lancer la tâche. </li><li> Acquisition d&#39;émission PET: Set 600 sec (10 min) pour &quot;temps de cycle fixe&quot; dans le &quot;acquérir par le temps&quot; option. Sélectionnez F-18 comme «isotope étude&quot; et utilisez 350-650 keV comme «niveau d&#39;énergie». </li><li> Histogramme des émissions PET: Set &quot;cadre dynamique» comme «noir» pour traiter les données comme une image pendant toute la durée de balayage pour atteindre statique. Sélectionnez &quot;3D&quot; comme type histogramme et choisissez &quot;aucune correction de dispersion&quot;. </li><li> Reconstruction TEP: Utilisez 2D Maximisation Commandé Attente sous-ensemble (OSEM2D) que l&#39;algorithme de reconstruction. </li></ol> 3. L&#39;injection de FDG <ol><li> Commander un paquet clinique de 18 F-FDG (10 mCi) d&#39;un fournisseur régional de son arrivée au laboratoire d&#39;imagerie ~ 30 min avant l&#39;injection programmée premier. Suivre les procédures de sécurité de l&#39;Institut pour recevoir et étudier le paquet contenant materia radioactifsls (RAM). </li><li> Avec la protection offerte par un bouclier L-bloc de dessus de table, partie aliquote du FDG et faire des dilutions de sérum physiologique stérile. La concentration d&#39;activité du FDG diluée devrait être disponible à 200-300 μCi/100 ul pour chaque injection. Aspirer la solution de FDG dans une seringue de 1 ml avec 26G 1/2 pouces aiguille, et de mesurer la radioactivité de la seringue en entier avec un calibreur de dose. </li><li> Injecter l&#39;animal qui est tout simplement transporté de la chambre froide (voir l&#39;étape 1.4) avec 100 pi de solution de FDG par voie intrapéritonéale (ip) de route. Noter le temps d&#39;injection. Mesurer la radioactivité résidu de la seringue à nouveau avec le calibreur de dose. </li><li> Placez l&#39;animal à l&#39;intérieur d&#39;une cage froide refroidisseur polystyrène maintenues avec de la glace. Incuber l&#39;animal au froid (~ 4 ° C) pendant 1 heure pour la fixation du FDG. </li><li> Calculer l&#39;activité injectée FDG pour chaque souris par la formule suivante: Injecté activité (Ci) = activité dans la seringue avant l&#39;injection- L&#39;activité dans la seringue après l&#39;injection </li></ol> 4. Micro-PET/CT Imaging <ol><li> L&#39;imagerie micro-PET/CT commence 1 heure après l&#39;injection du FDG ou 5 heures après le traitement par le froid. Placez l&#39;animal dans une chambre d&#39;induction de l&#39;anesthésie avec l&#39;isoflurane 3% en oxygène. </li><li> Une fois l&#39;anesthésie est induite, l&#39;animal est déplacé sur une pastille micro-CT (lit pour animaux) avec sa tête reposant dans un masque cône qui fournit en permanence l&#39;isoflurane (2%) à un débit de 2 L / min. Un coussin chauffant électrique (BioVet, m2m Imaging Corp) est placé sous l&#39;animal pour aider à maintenir la température du corps. </li><li> Faites glisser l&#39;animal à l&#39;entrée du scanner MM, activer le &quot;laser&quot; icône de la barre d&#39;outils, et utilisez la commande touchpad pour déplacer le lit de sorte que la poitrine de l&#39;animal est à la croisée des lignes laser horizontales et verticales. Dans le &quot;alignement laser&quot; fenêtre, sélectionnez &quot;Type de la première analyse&quot; comme la tomodensitométrie, et «Acquisition TEP inclus dans le workflow&quot; comme option. </li><li> Ouvrez la fenêtre &quot;Vue scout&quot; fenêtre et acquérir une vision scout radiographie radiographie. Utiliser AIF pour ajuster la position du lit animal de façon que le champ de vue du centre CT est situé dans le centre du corps de la souris (foie). Répétez cette étape si nécessaire. </li><li> Démarrez le &quot;workflow&quot; créé à l&#39;étape 2. Lorsque des options s&#39;affiche, sélectionnez une appropriée 3D PET-CT matrice de transformation de fichier à utiliser en reconstruction tomographique, et choisissez un fichier normalisation récemment créé pour la reconstruction TEP sans correction d&#39;atténuation. L&#39;AIF va alors commencer CT et TEP séquentiellement comme programmés. </li><li> Après l&#39;ensemble du workflow est terminé, ce qui peut prendre 20-25 minutes, brièvement évaluer la qualité de l&#39;acquis images TEP et CT avec le VM ASIPro, un logiciel d&#39;analyse micro-TEP co-installé avec AIF. Archiver les données d&#39;imagerie à un périphérique de stockage de données ou de transférer les données à travers le réseau à un poste de travail après l&#39;analyse d&#39;imagerie (voir l&#39;étape 5) pour une analyse plus approfondie. </li><li> ReleaSE l&#39;animal à partir des systèmes d&#39;imagerie et le placer à une cage de boîtier propre à l&#39;alimentation normale et d&#39;approvisionnement en eau pour sa récupération à la température ambiante. Les systèmes sont maintenant prêts pour le prochain animal dans la file d&#39;attente. Notez le soin et la manipulation des animaux de post-imagerie doit se conformer aux règlements de l&#39;Institut en ce qui concerne &quot;la manipulation des animaux de laboratoire injectés avec de la mémoire&quot;. A noter également que utilisé aiguilles / seringues, les tampons absorbants, gants, et toute la literie et les matières fécales doivent être considérés comme des déchets radioactifs, et manipulés conformément à la réglementation pertinentes institut RAM élimination des déchets. </li></ol> 5. Analyse post-imagerie <ol><li> Ouvrir la recherche Inveon milieu de travail (IRW) logiciel (Siemens) et importer manuellement CT et PET ensembles de données. Co-registre images TEP et CT dans &quot;Enregistrement&quot; fenêtre à l&#39;aide des outils de l &#39;«analyse générale&quot; la fonction, et sous la rubrique «Revue&quot; fenêtre de s&#39;assurer un alignement parfait entre les images TEP et CT dans les 3 dimensions. </li><li>De «région d&#39;intérêt (ROI) Quantification&quot; fenêtre, avec les références fournies par les images CT co-enregistrés, d&#39;identifier les meilleures techniques disponibles dans la région interscapulaire du cou, le plus prédominant inductible par le froid BAT chez la souris adulte, et d&#39;en tirer volume d&#39;intérêt (VOI) des MTD sur l&#39;ensemble des données TEP. Sélectionnez &quot;Intensité Voxel» comme «Type de Quantification&quot; et enregistrer la radioactivité moyenne dans le VOI en Bq / ml. Un facteur d&#39;étalonnage qui convertit coups / sec en Bq / ml a été établi préalablement par la numérisation d&#39;un fantôme à la radioactivité connue. </li><li> La fixation du FDG dans la MTD est quantifié par la dose injectée pourcentage par gramme de tissu (% ID / g) avec correction de décroissance. La dose injectée est le résultat de l&#39;étape 3.5, cependant, converti en becquerel (Bq) Unité (1 pCi = 37.000 Bq), nous supposons que 1 ml de tissu est égal à 1 g. </li></ol>

<ol><li>Cypess, A. M., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+energy+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Pediatr%22%5BJournal%5D)">The role and importance of brown adipose tissue in energy homeostasis.</a> Curr. Opin. Pediatr. 22, 478-484 (2010).</li>
<li>Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brown+adipose+tissue%3A+function+and+physiological+significance%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Brown adipose tissue: function and physiological significance.</a> Physiol. Rev. 84, 277-359 (2004).</li>
<li>Collins, S., Surwit, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+beta-adrenergic+receptors+and+the+control+of+adipose+tissue+metabolism+and+thermogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+Prog.+Horm.+Res%22%5BJournal%5D)">The beta-adrenergic receptors and the control of adipose tissue metabolism and thermogenesis.</a> Recent Prog. Horm. Res. 56, 309-328 (2001).</li>
<li>Ouellet, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outdoor+temperature%2C+age%2C+sex%2C+body+mass+index%2C+and+diabetic+status+determine+the+prevalence%2C+mass%2C+and+glucose-uptake+activity+of+18F-FDG-detected+BAT+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Endocrinol.+Metab%22%5BJournal%5D)">Outdoor temperature, age, sex, body mass index, and diabetic status determine the prevalence, mass, and glucose-uptake activity of 18F-FDG-detected BAT in humans.</a> J. Clin. Endocrinol. Metab. 96, 1115-1125 (2011).</li>
<li>Cypess, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+adult+humans%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1509-1517 (2009).</li>
<li>Fruhbeck, G., Becerril, S., Sainz, N., Garrastachu, P., Garcia-Velloso, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BAT%3A+a+new+target+for+human+obesity%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">BAT: a new target for human obesity.</a> Trends Pharmacol. Sci. 30, 387-396 (2009).</li>
<li>Cypess, A. M., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brown+fat+as+a+therapy+for+obesity+and+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Endocrinol.+Diabetes+Obes%22%5BJournal%5D)">Brown fat as a therapy for obesity and diabetes.</a> Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. 17, 143-149 (2010).</li>
<li>Virtanen, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+brown+adipose+tissue+in+healthy+adults%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Functional brown adipose tissue in healthy adults.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1518-1525 (2009).</li>
<li>van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cold-activated+brown+adipose+tissue+in+healthy+men%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Cold-activated brown adipose tissue in healthy men.</a> N. Engl. J. Med. 360, 1500-1508 (2009).</li>
<li>Cohade, C., Mourtzikos, K. A., Wahl, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%22USA-Fat%22%3A+prevalence+is+related+to+ambient+outdoor+temperature-evaluation+with+18F-FDG+PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Nucl.+Med%22%5BJournal%5D)">"USA-Fat": prevalence is related to ambient outdoor temperature-evaluation with 18F-FDG PET/CT.</a> J. Nucl. Med. 44, 1267-1270 (2003).</li>
<li>Garcia, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+brown+fat+2-deoxy-2-%5BF-18%5Dfluoro-D-glucose+uptake+by+controlling+environmental+temperature+prior+to+positron+emission+tomography+scan%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Reduction of brown fat 2-deoxy-2-[F-18]fluoro-D-glucose uptake by controlling environmental temperature prior to positron emission tomography scan.</a> Mol. Imaging Biol. 8, 24-29 (2006).</li>
<li>Saito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+incidence+of+metabolically+active+brown+adipose+tissue+in+healthy+adult+humans%3A+effects+of+cold+exposure+and+adiposity%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">High incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity.</a> Diabetes. 58, 1526-1531 (2009).</li>
<li>Agrawal, A., Nair, N., Baghel, N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+approach+for+reduction+of+brown+fat+uptake+on+FDG+PET%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Radiol%22%5BJournal%5D)">A novel approach for reduction of brown fat uptake on FDG PET.</a> Br. J. Radiol. 82, 626-631 (2009).</li>
<li>Soderlund, V., Larsson, S. A., Jacobsson, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduction+of+FDG+uptake+in+brown+adipose+tissue+in+clinical+patients+by+a+single+dose+of+propranolol%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Nucl.+Med.+Mol.+Imaging%22%5BJournal%5D)">Reduction of FDG uptake in brown adipose tissue in clinical patients by a single dose of propranolol.</a> Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 34, 1018-1022 (2007).</li>
<li>Zhao, J., Cannon, B., Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermogenesis+is+beta3-+but+not+beta1-adrenergically+mediated+in+rat+brown+fat+cells%2C+even+after+cold+acclimation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Thermogenesis is beta3- but not beta1-adrenergically mediated in rat brown fat cells, even after cold acclimation.</a> Am. J. Physiol. 275, 2002-2011 (1998).</li>
<li>Rowland, D. J., Garbow, J. R., Laforest, R., Snyder, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registration+of+%5B18F%5DFDG+microPET+and+small-animal+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Nucl.+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Registration of [18F]FDG microPET and small-animal MRI.</a> Nucl. Med. Biol. 32, 567-5672 (2005).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Dans cette étude, une méthode d&#39;imagerie micro-PET/CT-based a été développé pour la détection des activités de BAT chez la souris adulte qui nécessite simplement un traitement par le froid et une injection de disponible dans le commerce 18 F-FDG. L&#39;ensemble de la procédure peut se faire en un jour à la suite d&#39;un traitement et d&#39;imagerie séquence qui commence toutes les 30 minutes jusqu&#39;à ce que tous les animaux sont traités et imagée. Dans les conditions expérimentales décrites, un total ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires (optionnel) </td></tr><tr><td> Micro-PET/CT Imaging System </td><td> Siemens Medical Solutions USA, Inc </td><td> Inveon dédié PET Système et multimodalité Inveon CT / SPECT système (amarré) </td><td></td></tr><tr><td> Propranolol </td><td> Sigma </td><td> P0884 </td><td></td></tr><tr><td> BRL 37344 </td><td> Sigma </td><td> B169 </td><td></td></tr><tr><td> 18 F-FDG </td><td> Cyclotope Inc </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Les souris mâles C57BL/6J </td><td> Jackson Laboratory </td><td> 000664 </td><td> 3-4 mois </td></tr></tbody></table>

imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris avec fdg micro-pet/ct

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Le tissu adipeux brun (BAT) diffère de tissu adipeux blanc (WAT) par son emplacement discret et une couleur brun-rouge due à la vascularisation riche et haute densité des mitochondries. BAT joue un rôle majeur dans la dépense énergétique et non frissons thermogenèse chez les mammifères nouveau-nés ainsi que les adultes 1. BAT-thermogenèse induite est fortement régulée par le système nerveux sympathique, principalement par l&#39;intermédiaire des récepteurs adrénergiques β 2, 3. Des études récentes ont montré que les activités de BAT chez les adultes humains sont corrélés négativement avec l&#39;indice de masse corporelle (IMC) et les paramètres de diabétiques d&#39;autres 4-6. BAT a donc été proposé comme une cible potentielle pour la thérapie anti-obesity/anti-diabetes mettant l&#39;accent sur ​​la modulation de la balance énergétique 6-8. Alors que plusieurs froides défi à base de tomographie par émission de positons (TEP) méthodes ont été établies pour détecter BAT humaine 9-13, il ya pratiquement pas de protocole standardisé pour l&#39;imagerie et QUANTIFication des MTD dans de petits modèles animaux tels que des souris. Nous décrivons ici une méthode d&#39;imagerie robuste TEP / TDM pour l&#39;évaluation fonctionnelle des MTD chez la souris. Brièvement, des souris C57BL/6J adultes étaient traités à froid à jeun pour une durée de 4 heures avant d&#39;avoir reçu une dose de 18 F-fluorodésoxyglucose (FDG). Les souris ont été resté dans le froid pendant une heure après l&#39;injection supplémentaire FDG, puis scannées avec un système micro-PET/CT animal dévoué mais peu nombreux. Les images TEP acquises ont été co-enregistré avec les images CT pour les références anatomiques et analysés pour la fixation du FDG dans la zone BAT interscapulaire de présenter l&#39;activité BAT. Ce standard de traitement à froid et le protocole d&#39;imagerie a été validé par des activités de test MTD lors des interventions pharmacologiques, par exemple, l&#39;activation BAT supprimée par le traitement de la β-adrénergique antagoniste propranolol 14, 15, ou l&#39;activation BAT renforcée par agoniste β3 BRL37344 16. La méthode described ici peuvent être appliqués pour cribler des médicaments / composés qui modulent l&#39;activité BAT, ou pour identifier les gènes / voies qui sont impliqués dans le développement de BAT et de la réglementation dans plusieurs études précliniques et de base.

Un exemple de l&#39;imagerie micro-PET/CT des MTD souris est illustré à la figure 1. Alors que l&#39;imagerie CT fournit des informations anatomiques, l&#39;imagerie TEP code de la distribution et de la quantité de 18 F-FDG dans tout le corps. Ces données d&#39;imagerie peuvent être regardées séparément (1A et 1B), fusionnée (1C), ou résulter d&#39;une fonctionnalité 3D comme projection d&#39;intensité maximale (MIP, 1D). Avec l&#39;aide d&#39;un outil d&#39;imagerie 3D, un volume d&#39;intér...

Une méthode d&#39;imagerie fonctionnelle du tissu adipeux brun de la souris (BAT) est décrit dans lequel froide stimulée par l&#39;absorption de 18F-fluorodésoxyglucose (FDG) dans la MTD est non-invasive évaluée avec un protocole standardisé micro-PET/CT. Cette méthode est robuste et sensible pour détecter des différences dans les activités de BAT dans des modèles murins.

Imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris avec FDG micro-PET/CT

Le tissu adipeux brun (TAB) se distingue du tissu adipeux blanc (TABL) par sa localisation distincte et une couleur brun-rouge due à une riche vascularisation et une forte...

L'objectif général de cette procédure est de mesurer de manière non invasive l'activité du tissu adipeux brun chez des souris vivantes à l'aide d'un protocole standardisé de micro-PET/TDM. Pour ce faire, on place d'abord l'animal en traitement au froid à quatre degrés Celsius pendant quatre heures afin d'induire l'activité du tissu adipeux brun. Ensuite, du fluor-18 FTG est injecté et l'animal est incubé à quatre degrés Celsius pendant une heure supplémentaire afin d'obtenir une fixation de l'activité. Ensuite, une séquence d'imagerie micro-TDM et micro-TEP est réalisée à l'aide d'un système d'imagerie dédié aux petits animaux. Enfin, à l'aide d'un logiciel de traitement post-imagerie, les images TEP acquises sont recalibrées avec les images TDM, puis analysées pour la capture de FDG dans la région du tissu adipeux brun interscapulaire afin de mesurer l'activité du tissu adipeux brun. Le tissu adipeux brun joue un rôle majeur dans la dépense énergétique et la thermogenèse chez les mammifères à sang chaud, ainsi que chez les adultes.Bien que la capacité clinique ait été utilisée pour détecter le tissu adipeux brun induit chez l'humain, cette vidéo démontre un protocole standardisé d

functional-imaging-of-brown-fat-in-mice-with-18f-fdg-micro-petct

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Cet article décrit l’imagerie multimodale des tissus cancéreux avec l’imagerie diagnostique TEP et TDM à l’aide d’un radiotraceur 18F-FDG. Les tissus cancéreux à haute activité glycolytique absorbent plus de 18F-FDG.

TEP/TDM à base de FDG : une méthode d’utilisation du radiotraceur pour l’imagerie non invasive du métabolisme tumoral

Dans ce reportage vidéo, nous montrons l’application de l’imagerie par luminescence Cerenkov (CLI) pour le tissu adipeux brun interscapulaire chez des souris dans des conditions activées et déprimées.

Cerenkov Luminescence imagerie de Interscapular le tissu adipeux brun

La méthode présentée ici utilise 18 F-fluorodésoxyglucose (18 F-FDG) par émission de positons / tomodensitométrie (TEP-TDM) et l'imagerie graisse eau séparée résonance magnétique (IRM), chaque numérisé suivante 2 exposition h à thermoneutre (24 ° C ) et froid (17 ° C) dans le but de cartographier le tissu adipeux brun (BAT) chez des sujets humains adultes.

Dépôts de tissus humains adipeux brun segmentés automatiquement par tomographie par émission de positons / informatisée et la résonance magnétique images enregistrées

Cette étude décrit un protocole qui utilise l’imagerie par tomographie par émission de positons 18F-FDG et tomodensitométrie (TEP/TDM), ainsi que la modélisation cinétique, pour quantifier l’absorption in vivo et en temps réel de 18F-FDG dans les tissus.

La détermination de métabolisme du glucose Kinetics L&#39;utilisation<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG-PET Micro / CT

Avec le logiciel gratuit, open-source, nous avons développé une approche analytique afin de quantifier le volume total et régionales tissu adipeux brun (TAB) et l’activité métabolique de BAT à l’aide de 18F-FDG TEP/CT.

Tout le corps et Quantification régionale d’homme actif brun tissu adipeux à l’aide de 18F-FDG TEP/CT

Imagerie fonctionnelle et quantification des dépôts adipeux thermogéniques chez la souris à l’aide d’une approche basée sur l’imagerie micro-TEP/IRM.

Visualisation et quantification des tissus adipeux bruns et beiges chez la souris à l’aide de l’imagerie micro-PET/MR [18F]FDG

Nous présentons ici un protocole d’imagerie expérimentale pour la quantification de la fonction cardiaque et de la morphologie à l’aide de la tomographie par émission de positons à haute résolution / tomodensitométrie pour les petits animaux. Les souris et les rats sont pris en compte, discutant des différentes exigences des agents de contraste par tomodensitométrie pour les deux espèces.

Tomographie cardiaque à émission de positons à haute résolution/tomodensitométrie pour petits animaux

Nous présentons ici un protocole de mesure de l’activité du tissu adipeux brun après un repas chez l’homme et les animaux de laboratoire.

Thermographie infrarouge pour la détection des changements dans l’activité du tissu adipeux brun

Le test de la transition jour / nuit est l'un des tests les plus largement utilisés pour mesurer l'anxiété comme le comportement des souris. Ici, nous présentons un film qui montre des procédures détaillées sur la façon dont nous menons le test.

Test de transition clair / foncé pour souris

Pour l'évaluation de nouvelles thérapies de cellules souches, il est important de suivre de manière non invasive des cellules injectées in vivo. Cette vidéo va vous montrer comment étiqueter cellules souches mésenchymateuses humaines et embryonnaires avec des agents de contraste à base d'oxyde de fer in vivo pour subséquentes IRM in vivo.

Étiquetage CSEh et hMSCs d&#39;oxyde de fer nanoparticules pour les non-invasives dans le suivi in ​​vivo avec IRM

Découvrez l'imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris par micro-PET/CT avec FDG. Cette méthode standardisée permet d'évaluer l'activité métabolique de manière non invasive sous stimulation par le froid.

Imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris avec FDG micro-PET/CT

Explorer plus de vidéos