Name: Génie tissulaire de lintestin dans un modèle murin (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 45 s
Description: Découvrez le génie tissulaire de l'intestin grêle chez la souris par l'approche unités d'organoides sur échafaudage. Cette méthode avance la médecine régénérative et la modélisation des maladies gastro-intestinales.

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Tracy C. Grikscheit, Erik R. Barthel, et Frédéric G. Sala sont pris en charge par le California Institute for Regenerative Medicine (CIRM), numéros de subvention RN2-00946-1 (TCG) et TG2-01168 (ERB, FGS). Allison L. Speer est une Société de l&#39;Université chirurgiens savant Ethicon. Yashuhiro Torashima est financé par un Hôpital pour enfants de Los Angeles Saban Bourse de recherche Institut de développement de carrière.

1. Organoïde Préparation unités <ol><li> Instruments appropriés pour la dissection de la souris (ciseaux et des pinces) doivent être stérilisés par autoclave. </li><li> Euthanasier sans douleur la souris donneuse selon les protocoles locaux IACUC. Assurez-vous que l&#39;animal est mort avant de poursuivre. </li><li> Faire une incision médiane pour accéder à la cavité péritonéale. Lambeaux cutanés peuvent être présentées comme nécessaires pour améliorer l&#39;exposition. </li><li> Eviscération l&#39;intestin grêle et le diviser juste en aval du ligament de Treitz. Séparer l&#39;intestin grêle de son mésentère utilisant nette et douce dissection. Identifier la jonction iléo-colique et de diviser l&#39;intestin grêle proximal 5 mm à cela. </li><li> Avec des ciseaux, ouvrez l&#39;intestin sens de la longueur le long de la frontière antimésentérique dans une boîte de Pétri avec 10 ml 4 ° C, une solution saline tamponnée stérile de Hanks (HBSS, Invitrogen, Carlsbad CA) / 1X antibiotique antifongique-(Anti-Anti, Invitrogen) solution. Effacer les matières fécales dans l&#39;intestin ouvert avecagitation douce puis de transférer l&#39;intestin a ouvert un tube à centrifuger 15ml avec 10 ml de 4 ° C, HBSS stérile / 1X anti-anti. </li><li> Laver l&#39;intestin ouvert trois fois dans 10 ml de 4 ° C, HBSS stérile / 1X anti-anti-dans un tube à essai. Chaque lavage peut être effectué avec une agitation douce du tube de 15 ml pendant 30 sec. Après agitation, le tissu intestinal coule au fond du tube. Jeter les matériels flottants qui est des débris mésenchymateuse. Retirez soigneusement la solution de lavage avec une pipette. </li><li> Hachez l&#39;intestin lavé dans une boîte de Pétri avec 10 ml de 4 ° C, HBSS stérile / 1X anti-anti-moins de 1 mm morceaux carrés en utilisant une paire de ciseaux. Rassemblez le matériel hachée avec une pipette automatique et le placer dans un tube à essai. </li><li> Centrifuger le tube à 500 tours par minute pendant 8 min. Jeter le surnageant, qui contient de la graisse et le mésenchyme. </li><li> Digérer le hachée, matériau lavé avec 10 ml de HBSS stérile / 1X anti-anti majoré de 0,125 mg / ml dispase (Invitrogen) et 800 unités / ml collagénase de type 1 (Worthington, Lakewood NJ). Pour préparer 40 ml de la solution de digestion, peser 5 mg de dispase, 142 mg de collagénase, et ajouter HBSS stérile jusqu&#39;à un volume de 40 ml. Préparer cette solution fraîchement chacune des unités organoïdes temps sont préparés, et conserve à 4 ° C jusqu&#39;au moment de servir. Ajouter la solution de digestion directement à l&#39;étape de 1,8 à granulés. </li><li> Incuber le tube à essai contenant le hachée, la matière lavée avec la solution de digestion à 37 ° C pendant 20 min. </li><li> Récupérer le tube à essai et perturber encore davantage le tissu digéré par trituration avec une pipette de 10 ml. Répéter entre 20 à 50 fois jusqu&#39;à ce qu&#39;une apparence uniforme. </li><li> Centrifuger le tube à essai pendant 5 min à 800 rpm. Jeter le surnageant, qui contient des cellules individuelles. </li><li> Arrêter la réaction de digestion avec 10 ml de 4 ° C, stérile Eagle modifié par Dulbecco (DMEM, Invitrogen) majoré de 10% v / v inactivé par la chaleur du sérum fœtal bovin (FBS-HI, Invitrogen). Reprendre le pellet et agiter le tube. </li><li> Centrifuger le tube à essai pendant 5 min à 800 rpm. Retirez soigneusement le surnageant avec une pipette automatique jusqu&#39;à ce que les dernières gouttes. Utiliser une pipette en plastique jetable pour les dernières gouttes d&#39;éviter la remise en suspension du culot. </li></ol> 2. Chargement de l&#39;acide polyglycolique échafaudage <ol><li> Formulaire de 2 mm de long, de 5 mm de diamètre échafaudages cylindriques extérieures de l&#39;acide glycolique non-tissé (épaisseur de la tôle de 2 mm, 60 mg densité en vrac cm-3; porosité&gt; 95%, Fibres Concordia, RI Coventry) tel que décrit dans la référence. 4. </li><li> Coupez l&#39;extrémité distale de 2 mm d&#39;une pipette jetable 1000 microlitre pointe avec des ciseaux préparés avec de l&#39;éthanol à 70% dans de l&#39;eau distillée. </li><li> Placez l&#39;échafaud dans une plaque de culture de 4-bien. Chargez les unités organoïdes sur l&#39;échafaud avec la pipette microlitre 1000, d&#39;abord dans la lumière, puis sur la surface extérieure. Utiliser une pince pour assurer revêtement de la lumière. Ne pas perturber ou briser la forme cylindrique du polymère. </li&gt; </ol> 3. Implantation dans la souris hôte <ol><li> Utiliser une souris hôte syngénique sur le fond même du donateur si disponible. Sinon, utiliser un diabétique non obèse immunodéprimés / grave déficit immunitaire combiné ou NOD / SCID animal (Jackson Laboratories, Sacramento CA). </li><li> Induire une anesthésie générale à l&#39;isoflurane. Shave, la préparation et le drapé abdomen de la souris. </li><li> Faire une incision médiane de 5 mm pour pouvoir entrer dans la cavité péritonéale. Identifier et soigneusement vider le grand épiploon. Placer le polymère chargé sur l&#39;épiploon et l&#39;envelopper avec le tissu. Ne déchirez pas l&#39;épiploon. </li><li> Obtenir le polymère à l&#39;épiploon avec une suture 5-0 monocryl. Replacez doucement l&#39;épiploon avec le polymère enveloppé dans sa position anatomique. </li><li> Fermer l&#39;incision abdominale en couches en utilisant des sutures 4-0 vicryl. Exécutez la fermeture des muscles et prendre soin de ne pas blesser les viscères abdominaux dessous de l&#39;incision. Utilisez des points séparés pour la peau. </li><li> Administrer une analgésie postopératoire de 2 mg / kg de kétoprofène (Ketofen, Fort Dodge Animal Health) dans de l&#39;eau stérile comme une papule cutanée à côté de l&#39;incision. Les animaux doivent être évalués quotidiennement et si l&#39;animal montre des signes de douleur ou de détresse, une dose supplémentaire de kétoprofène peut être administrée au jour post-opératoire 2. Le troisième jour postopératoire, l&#39;animal doit être complètement récupéré sans signes de douleur ou de détresse. Si la douleur ou de la détresse continue le jour post-opératoire 3, ceci est considéré comme anormal et devrait être traitée en conformité avec les protocoles IACUC et de soins pour animaux. </li><li> Laissez la souris pour récupérer et l&#39;intestin par génie tissulaire à croître pendant quatre semaines. Offrir l&#39;accès à volonté des animaux annonce à rongeur (Laboratoire Diet 5001, PMI Nutrition, St. Louis MO) et de l&#39;eau avec Septra 200 mg / 40 mg pour 5 ml (Salut-Tech Pharmacal, Amityville NY) à 1:100 dilution. </li></ol> 4. Récolte <ol><li> Humanely euthanasier l&#39;animal hôte quatre semaines après l&#39;implantation. </li><li> Rouvrir l&#39;incision initiale et refléter la peau céphalique pour faciliter l&#39;accès à la cavité péritonéale. </li><li> Ouvrez la couche musculaire et d&#39;identifier la construction par génie tissulaire comme un globe de tissu. </li><li> Prenez les adhérences à la construction de viscères intra-abdominale à l&#39;aide dissection. </li><li> Fixer la construction dans le formol pour le montage ultérieur de paraffine, ou d&#39;utiliser le tissu frais pour les tests biochimiques tels que PCR en temps réel ou l&#39;isolement des protéines. </li></ol>

<ol><li>Grikscheit, T. C., Siddique, A., Ochoa, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+small+intestine+improves+recovery+after+massive+small+bowel+resection%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered small intestine improves recovery after massive small bowel resection.</a> Ann. Surg. 240, 748-754 (2004).</li>
<li>Wales, P. W., Christison-Lagay, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short+bowel+syndrome%3A+epidemiology+and+etiology%5BTitle%5D)+AND+%22Sem.+Ped.+Surg%22%5BJournal%5D)">Short bowel syndrome: epidemiology and etiology.</a> Sem. Ped. Surg. 19, 3-9 (2010).</li>
<li>Evans, G. S., Flint, N., Somers, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+a+method+for+the+preparation+of+rat+intestinal+epithelial+cell+primary+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">The development of a method for the preparation of rat intestinal epithelial cell primary cultures.</a> J. Cell Sci. 101, 219-231 (1992).</li>
<li>Sala, F. G., Matthews, J. A., Speer, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multicellular+approach+forms+a+significant+amount+of+tissue-engineered+small+intestine+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Tiss.+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">A multicellular approach forms a significant amount of tissue-engineered small intestine in the mouse.</a> Tiss. Eng. Part A. 17, 1841-1850 (2011).</li>
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<li>Haxhija, E. Q., Yang, H., Spencer, A. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+epithelial+cell+proliferation+is+dependent+on+the+site+of+massive+small+bowel+resection%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr.+Surg.+Int%22%5BJournal%5D)">Intestinal epithelial cell proliferation is dependent on the site of massive small bowel resection.</a> Pediatr. Surg. Int. 23, 379-390 (2007).</li>
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<li>Petrosyan, M., Guner, Y. S., Williams, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+concepts+regarding+the+pathogenesis+of+necrotizing+enterocolitis%5BTitle%5D)+AND+%22Ped.+Surg.+Int%22%5BJournal%5D)">Current concepts regarding the pathogenesis of necrotizing enterocolitis.</a> Ped. Surg. Int. 25, 309-318 (2009).</li>
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<li>Sampietro, G. M., Corsi, F., Maconi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prospective+study+of+long-term+results+and+prognostic+factors+after+conservative+surgery+for+small+bowel+Crohn%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Gastroenterol.+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Prospective study of long-term results and prognostic factors after conservative surgery for small bowel Crohn's disease.</a> Clin. Gastroenterol. Hepatol. 7, 183-191 (2009).</li>
<li>Klempnauer, J., Grothues, F., Bektas, H., Pichlmayr, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+results+after+surgery+for+acute+mesenteric+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Long-term results after surgery for acute mesenteric ischemia.</a> Surgery. , 121-239 (1997).</li>
<li>Fitzgibbons, S. C., Jones, B. A., Hull, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+biopsy-proven+parenteral+nutrition-associated+liver+fibrosis+and+biochemical+cholestasis+in+children+with+short+bowel+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Ped.+Surg%22%5BJournal%5D)">Relationship between biopsy-proven parenteral nutrition-associated liver fibrosis and biochemical cholestasis in children with short bowel syndrome.</a> J. Ped. Surg. 45, 95-99 (2010).</li>
<li>Spencer, A. U., Kovacevich, D., McKinney-Barnett, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pediatric+short+bowel+syndrome%3A+the+cost+of+comprehensive+care%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Clin.+Nutr%22%5BJournal%5D)">Pediatric short bowel syndrome: the cost of comprehensive care.</a> Am. J. Clin. Nutr. 88, 1552-1559 (2008).</li>
<li>Kato, T., Tzakis, A. G., Selvaggi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+and+multivisceral+transplantation+in+children%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Surg%22%5BJournal%5D)">Intestinal and multivisceral transplantation in children.</a> Ann. Surg. 243, 756-766 (2006).</li>
<li>Reyes, J., Bueno, J., Kocoshis, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+status+of+intestinal+transplantation+in+children%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Ped.+Surg%22%5BJournal%5D)">Current status of intestinal transplantation in children.</a> J. Ped. Surg. 33, 243-254 (1998).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Nous présentons un protocole pour la production par génie tissulaire intestin chez la souris en utilisant un organoïde unités-sur-échafaudage approche. Les étapes les plus importantes sont celles de la préparation organoïde unités. Il faut prendre soin de bien nettoyer et traiter mécaniquement le tissu, mais le même soin doit être pris pour ne pas overdigest ou overtriturate les unités organoïdes après la digestion est effectuée (étape 1.11). Si cela est fait, les unités organoïdes peut être réduit à des cellules indivi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires (optionnel) </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco </td><td> 114170-112 </td><td></td></tr><tr><td> Antibiotique-antimycotique 100X </td><td> Invitrogen </td><td> 15240-062 </td><td></td></tr><tr><td> Dispase </td><td> Gibco </td><td> 17105-041 </td><td></td></tr><tr><td> Type de collagénase 1 </td><td> Worthington </td><td> LS004194 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM glycémie élevée 1X </td><td> Gibco </td><td> 11995-065 </td><td></td></tr><tr><td> La chaleur de FBS inactivé </td><td> Invitrogen </td><td> 16140-071 </td><td></td></tr><tr><td> Biofelt 100% PGA </td><td> Concordia médicale </td><td> FELT01-1005 </td><td> Pour la préparation de polymères selon la Réf.4 </td></tr><tr><td> La poly-L-lactique </td><td> DURECT </td><td> B6002-1 </td><td> Pour la préparation de polymères selon la Réf. 4 </td></tr><tr><td> Type I collagène de queue de rat, </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C3867-1VL </td><td> Pour la préparation de polymères selon la Réf. 4 </td></tr><tr><td> Kétoprofène 100 mg / ml </td><td> Fort Dodge Animal Health </td><td> 71-KETOI-100-50 </td><td></td></tr><tr><td> LabDiet 5001 chow rongeurs </td><td> LabDiet </td><td> 5001 </td><td></td></tr><tr><td> Septra 200 mg / 40 mg pour 5 ml, USP </td><td> Salut-Tech Pharmacal </td><td> 50383-824-16 </td><td></td></tr><tr><td> Isoflurane, USP </td><td> Phoenix Pharma </td><td> 57319-507-06 </td><td></td></tr></tbody></table>

génie tissulaire de l&#39;intestin dans un modèle murin

Tissue Engineering of the Intestine in a Murine Model

Génie tissulaire intestin grêle (TESI) a été utilisée avec succès pour sauver des rats Lewis après une résection intestinale massive de petite, ce qui entraîne en retour de poids préopératoire dans les 40 jours 1. Chez l&#39;homme, massif résection de l&#39;intestin grêle peuvent entraîner un syndrome du grêle court, une malabsorption fonctionnelle Etat qui confère une importante morbidité, la mortalité et les coûts des soins de santé, y compris la dépendance nutrition parentérale, l&#39;insuffisance hépatique et de la cirrhose, et la nécessité d&#39;une transplantation d&#39;organe multiviscérale. 2 Dans cet article, nous décrivons et documenter notre protocole pour la création par génie tissulaire intestin dans un modèle de souris avec un organoïde unités-sur-échafaudage approche multicellulaire. Unités sont organoïdes agrégats multicellulaires dérivées de l&#39;intestin qui contiennent des éléments à la fois des muqueuses et mésenchymateuses, 3 la relation entre ce qui préserve la niche tige intestinale cellule. 4 Dans la recherche en cours et à venir, la transition de notre technique dans lesouris permettra d&#39;enquête sur les processus impliqués lors de la formation TESI en utilisant les outils disponibles transgéniques chez cette espèce. 5 La disponibilité de souches de souris immunodéprimées nous permettra également d&#39;appliquer la technique de tissu intestinal humain et optimiser la formation de TESI humain comme un xénogreffe de souris avant sa transition vers les humains. Notre méthode utilise bonnes pratiques de fabrication (BPF) des réactifs et des matériaux qui ont déjà été approuvés pour une utilisation chez des patients humains, et offre donc un avantage significatif par rapport aux approches qui reposent sur des tissus animaux décellularisé. Le but ultime de cette méthode est sa traduction à l&#39;homme comme une stratégie thérapeutique pour la médecine régénérative syndrome de l&#39;intestin court.

La figure 1 montre un schéma d&#39;ensemble pour le protocole documenté ici. Le résultat final de ce protocole est une structure sphérique de globe ou par génie tissulaire intestin murin avec une lumière, muqueuse, la sous-muqueuse, musculeuse et ses environs. Figure 2A montre un globe typique par rapport à un polymère de départ échafaud. Figure 2B montre la même construction fortement bivalve de révéler sa lumière. Figure 3 montre un hématoxyline / éos...

Cet article et la vidéo qui l&#39;accompagne présenter notre protocole pour générer génie tissulaire intestin chez la souris, en utilisant un organoïde unités-sur-échafaudage approche.

Génie tissulaire de l&#39;intestin dans un modèle murin

L'intestin grêle issu de l'ingénierie tissulaire (TESI) a été utilisé avec succès pour sauver des rats Lewis après une résection massive de l'intestin grêle, permettant un retour à ...

Ce vidéo démontrera notre technique de génération d'intestin grêle tissulaire ingénierisé chez la souris en utilisant une approche d'unités d'organoides sur support. Dans cette expérience, les animaux ont été traités conformément aux directives du comité institutionnel de soins aux animaux et de l'Institut de recherche Savon du centre hospitalier pour enfants de Los Angeles concernant les installations de soins aux animaux. La première étape consiste à obtenir un intestin de souris entier.La souris euthanasiée de manière humane et les instruments sont préparés avec de l'éthanol à 70 % dans de l'eau, et une incision médiane est pratiquée pour accéder à la cavité péritonéale. L'intestin grêle est éviscéré et sectionné juste en aval du ligament de Treitz. Il est ensuite dissocié avec précision et par dissection émoussée du mésentère et de ses vaisseaux.Enfin, l'iléon a été sectionné à cinq millimètres proximalement à la valve iléocæcale. L'intestin grêle prélevé est présenté à l'échelle. Nous procédons ici à l'ouverture de l'intestin en longueur le long du bord antimesentérique dans une solution saline tamponnée au hank contenant un antibiotique-antifongique à 1 X.L’intestin est ensuite débarrassé des matières fécales dans la boîte, suivi de trois lavages répétés avec du HBSS et un tube à essai. Le tissu intestinal coule au fond du tube, tandis qu’un matériel flottant constitué de débris mésenchymateux peut être éliminé. La solution de lavage est soigneusement retirée à l’aide d’une pipette.L'intestin est ensuite haché en morceaux d'environ un millimètre carré à l'aide de ciseaux. Le matériau haché est recueilli à l'aide d'une pipette automatique. Le matériau haché est désormais prêt à être digéré.La solution de digestion contient 0,125 milligramme par millilitre de DASE et 800 unités par millilitre de collagénase dans du HBSS avec antibiotique et antifongique. Remarquez la couleur brunâtre de la solution de digestion par rapport au HBSS avec antibiotique et antifongique. Elle est préparée fraîchement et 10 millilitres sont ajoutés au matériau haché.Cet échantillon est incubé à 37 degrés Celsius pendant 20 minutes sur un agitateur rotatif. Le tissu est ensuite davantage dissocié par des itérations à l’aide d’une pipette, comme illustré ici. Cette étape est répétée de 20 à 50 fois jusqu’à obtention d’un aspect homogène.L'embout de pipette de 10 millilitres est de taille optimale. Pour cela, la réaction est arrêtée avec trois millilitres de DMEM à quatre degrés avec 10 % de sérum de veau fœtal. Le matériau est centrifugé pendant 10 minutes.À 500 tr/min, le surnageant est éliminé et le culot est resuspendu dans 10 millilitres de DMEM à 4 °C contenant 10 % de sérum de veau fœtal. La suspension est ensuite centrifugée pendant cinq minutes à 800 tr/min afin de récupérer tous les tissus, à l’exception des cellules isolées qui restent dans le surnageant S et sont éliminées. Le culot contient les unités d’organoïdes, ainsi que le matériau plus léger situé en surface, indiqué par la pince et le matériau de la taille.Sous cette couche, le DMEM contenant le sérum est éliminé à l’aide d’une pipette. Il faut veiller à ne pas remettre en suspension le culot dans la pipette. Les dernières gouttes peuvent être retirées plus en toute sécurité à l’aide de la pipette en plastique jetable.Voici le support en polymère d'acide polyglycolique ou PGA utilisé dans nos expériences. Les deux millimètres distaux de la pointe stérile d'une pipette jetable de 1000 microlitres sont coupés avec des ciseaux stériles. Nous chargeons le polymère avec des unités d'organoïdes dans des plaques de culture à quatre parois afin de minimiser la dispersion du matériau hors du polymère.Les unités d'organoïdes sont chargées sur l'échafaudage à l'aide de la pipette, d'abord dans la lumière, puis sur la surface extérieure. Une deuxième pince est utilisée afin d'assurer un revêtement adéquat de la lumière ; il convient de prendre soin de ne pas perturber la forme cylindrique du polymère. La souris hôte utilisée dans le cas d'un donneur transgénique est une souris non obèse diabétique immunodéprimée.Souris déficiente en chaîne gamma présentant une immunodéficience combinée sévère ou souris nod skid gamma. Sinon, des hôtes syngéniques peuvent être implantés. Après induction d'une anesthésie générale, l'abdomen est rasé, préparé et drapé.Une incision médiane de 0,5 centimètre est pratiquée. Le grand épiploon est identifié et éviscéré soigneusement. Le polymère chargé est enroulé dans l'épiploon et fixé à l'aide d'un fil de suture Monocryl 5-0.Il est essentiel que l’omentum ne soit pas déchiré, sinon les cellules pourraient s’échapper dans le péritoine. L’omentum chargé du polymère fixé est replacé dans l’abdomen, qui est refermé par couches. Une suture Vicryl 4-0 est utilisée de manière continue pour fermer.D'abord la couche musculaire, puis la peau pour l'analgesie postopératoire, deux milligrammes par kilogramme. Le kétoprofène dans de l'eau stérile est injecté sous forme de wheel sous-cutané adjacent à l'incision. Quatre semaines après l'implantation, l'animal hôte est euthanasié de manière humanitaire et l'incision initiale est rouverte. La structure ingénieuse de tissu est identifiée comme une sphère et peut être adhérente à l'estomac et aux viscères intra-abdominaux.Les adhérences sont sectionnées avec précision et un stéroïde de tissu intestinal génie-conçu est récupéré. On voit ici le stéroïde récolté en comparaison directe avec le polymère de départ. Sur cette image, la lumière de l'intestin génie-conçu a été ouverte avec précision afin de révéler l'intérieur.Le tissu peut être fixé pour une analyse histologique ou utilisé frais pour divers dosages biologiques moléculaires, comme nous l'avons démontré dans d'autres publications. On observe ici une microphotographie en faible grossissement colorée à l'hématine et à l'éosine d'un constructus typique de petit intestin ingénié tissulaire réussi. La flèche de gauche indique la lumière tapissée de muqueuse intestinale, et la flèche de droite montre le pancréas hôte.Cela s'est fixé au construct.

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Cellules souches épithéliales intestinales (CSI) sont entremêlées avec des cellules de Paneth. Ces cellules se différencient descendance de l'ISC, qui soutiennent la CSI et de fournir une protection antibactérienne. Ici, nous démontrons comment nous avons utilisé des modèles de souris transgéniques conditionnelles pour établir que les cellules de Paneth jouent un rôle crucial dans le maintien de l'épithélium intestinal.

Protocoles pour analyser le rôle des cellules de Paneth dans la régénération de l&#39;intestin murin utilisant conditionnelle<em&gt; Cre-lox</em&gt; Modèles de souris

Nous décrivons ici la procédure détaillée de l'intestin d'ischémie-reperfusion chez des souris ayant entraîné des lésions reproductibles sans mortalité pour encourager la standardisation de cette technique à travers le champ. Ce modèle de l'intestin lésions d'ischémie-reperfusion peut être utilisée pour étudier les mécanismes cellulaires et moléculaires de blessures et de régénération.

Modèle murin de Intestinal Ischémie-reperfusion

Occlusions intestinales sont une obstruction partielle ou complète de l’intestin qui peut causer des douleurs abdominales, nausées, vomissements et empêchant le passage des selles. Cette procédure de création intestinales partielles obsructions chez la souris est fiable en étudiant les mécanismes qui sous-tendent la croissance des cellules pathologiques et la mort dans l’intestin.

Un modèle de souris d’une Obstruction intestinale partielle

La fonction épithéliale intestinale dérégulée de barrière et les immuno-réactions sont des cachets de la maladie d’entrailles inflammatoire qui restent mal étudiées en raison d’un manque de modèles physiologiques. Ici, nous décrivons un modèle intestinal de boucle de souris qui emploie un segment bien-vascularisé et extériorisé d’entrailles pour étudier la perméabilité muqueuse et le recrutement de leucocyte in vivo.

Évaluation fonctionnelle de la perméabilité intestinale et de la migration transépithéliale des neutrophiles chez la souris à l’aide d’un modèle normalisé de boucle intestinale

Ce protocole offre des instructions détaillées pour établir des organoïdes murins de l’intestin grêle, isoler les cellules lymphoïdes innées de type 1 de la lamina propria de l’intestin grêle murin et établir des co-cultures en 3 dimensions (3D) entre les deux types de cellules pour étudier les interactions bidirectionnelles entre les cellules épithéliales intestinales et les cellules lymphoïdes innées de type 1.

Co-culture d’organoïdes épithéliaux murins de l’intestin grêle avec des cellules lymphoïdes innées

Nous décrivons ici la construction d’un système modèle de base de lignées cellulaires intestinales tridimensionnelles (3D) et d’un protocole d’enrobage de paraffine pour l’évaluation par microscopie optique d’équivalents intestinaux fixes. La coloration de protéines sélectionnées permet d’analyser plusieurs paramètres visuels à partir d’une seule expérience en vue d’une utilisation potentielle dans des études précliniques de criblage de médicaments.

Système de modèle intestinal tridimensionnel (3D) de base avec une composante immunitaire

Nous décrivons un modèle murin d’iléus postopératoire généré par manipulation intestinale. La fonction du transit gastro-intestinal, les changements pathologiques et l’activation des cellules immunitaires ont été évalués 24 h après la chirurgie.

Modèle postopératoire d’iléus murin

Découvrez le génie tissulaire de l'intestin grêle chez la souris par l'approche unités d'organoides sur échafaudage. Cette méthode avance la médecine régénérative et la modélisation des maladies gastro-intestinales.

Génie tissulaire de l'intestin dans un modèle murin

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