Name: Synthèse de la Phase-shift nanoémulsions à distributions de taille étroite de vaporisation des gouttelettes acoustique et bulles améliorée échographie médiée par ablation (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-13T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
Description: Découvrez la synthèse de nanoémulsions à changement de phase pour améliorer l'ablation par ultrasons dans les tumeurs. Cette méthode réduit le temps et l'énergie nécessaires au chauffage localisé.

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Ce travail a été soutenu par une bourse BU / CIMIT appliquée Healthcare Engineering prédoctorale, un National Science Foundation élargir la participation Research Grant Initiation en génie (BRIGE), et le National Institutes of Health (R21EB0094930).

1. Préparation de la phase-shift Nanoémulsion (PSNE) <ol><li> Dissoudre 11 mg de DPPC et 1,68 mg DSPE-PEG2000 dans le chloroforme </li><li> Évaporer le solvant organique pour former un film lipidique sec dans un verre ballon à fond rond </li><li> Dessécher le film lipidique nuit </li><li> Réhydrater le film lipidique avec 5,5 ml de tampon phosphate salin (PBS) </li><li> Thermique en solution dans un bain d&#39;eau à 45 ° C jusqu&#39;à ce film lipidique se dissout, vortex périodiquement </li><li> Transférer la solution lipidique dans 7 ml fiole </li><li> Soniquer solution lipidique pendant 2 min à 20% d&#39;amplitude </li><li> Diviser la solution en deux flacons de 2,5 ml chacun (jeter reste, soit 0,5 ml) </li><li> Ajouter 2,5 ml de PBS dans chaque flacon </li><li> Placez chaque flacon dans un 0 ° C bain d&#39;eau glacée </li><li> Ajouter 50 ul DDFP à chaque flacon </li><li> Soniquer chaque flacon dans un bain d&#39;eau glacée à l&#39;aide des paramètres suivants: amplitude de 25%, mode pulsé (10 sec on, off 50 sec), 60 sec au total sur le temps </li><li> Transfer solutions PSNE à 20 ml flacons à scintillation </li><li> Ajouter 5 ml de PBS dans chaque flacon, résultant dans 10 ml volume final </li><li> Assemblez directions d&#39;extrusion suivants fournis par le fabricant <ol><li> Rincez chaque pièce avec de l&#39;eau déminéralisée </li><li> Placer le disque de support en acier inoxydable dans le centre de la base de support de filtre </li><li> Placer la grille en acier inoxydable sur le dessus du disque de support en acier inoxydable </li><li> Aide de pincettes, placer une membrane extrudeuse disque de vidange (jusqu&#39;à côté brillant) sur la maille d&#39;acier inoxydable </li><li> Aide de pincettes, placer le filtre extrudeuse (jusqu&#39;à côté brillant) sur la membrane du disque de vidange </li><li> Placez soigneusement le petit joint torique sur le filtre et placer le haut et thermobarrel extrudeuse-dessus de la base de soutien </li><li> Serrez partiellement chaque écrou à ailettes, puis serrer complètement les écrous à la main-aile en alternance </li><li> Branchez l&#39;extrudeuse pourune conduite de gaz d&#39;azote </li><li> Pour amorcer l&#39;extrudeuse, une pipette 10 ml d&#39;eau déminéralisée dans le port échantillon du haut, boucher l&#39;ouverture, et serrer la soupape d&#39;aération </li><li> Ouvrir lentement la conduite de gaz d&#39;azote pour augmenter la pression, forçant l&#39;échantillon à travers les membranes, et recueillir l&#39;échantillon à partir de la tubulure de sortie </li><li> Après utilisation, démonter dans l&#39;ordre inverse, rincer les pièces extrudeuse avec de l&#39;eau déminéralisée, et jeter le filtre à membrane et le disque de membrane de drainage </li></ol></li><li> Pour 100 nm seulement gouttelettes, condition préalable PSNE par extrusion 10 fois à travers 200 nm filtre </li><li> Extruder PSNE 16 fois à travers 100 nm ou 200 nm filtre pour obtenir la distribution de taille étroite </li></ol> 2. Préparation d&#39;hydrogel de polyacrylamide contenant PSNE <ol><li> Préparer une solution BSA 24% en diluant 1,2 g de BSA poudre dans 5 ml d&#39;eau déminéralisée </li><li> Préparer la solution APS 10% en poudre 0,1 diluée APS g dans 1 ml désionisée water </li><li> Dans l&#39;ordre suivant, mélanger 2,1 ml solution d&#39;acrylamide, 1,2 ml de tampon Tris, 0,1 ml APS 10%, 4,5 ml d&#39;une solution 24% de SAB, et 3,6 ml d&#39;eau déminéralisée dans la chambre en matière plastique </li><li> La chaleur à 40 ° C sous vide et le lieu pendant 1 heure </li><li> Ajouter 480 ul de PSNE et bien mélanger en remuant doucement la chambre en plastique. </li><li> Ajouter 12 ul de TEMED et placer l&#39;enceinte dans un bain d&#39;eau 12 ° C pendant 2 heures </li></ol> 3. Les résultats représentatifs Un schéma de l&#39;installation pour des expériences ultrasons avec des fantômes d&#39;hydrogel tissus imitant est illustré à la figure 1. Ce protocole se traduit par des gouttelettes de perfluorocarbone à enrobage lipidique avec une distribution de taille étroite qui sont stables en solution pendant au moins une semaine. La distribution de taille mesurée par diffusion dynamique de la lumière (analyseur 90PIus la taille des particules, la société Brookhaven Instruments, Holtsville, NY) est illustré à la figure 2 pour PSNE extrudé en utilisant 100 et 200filtres nm. Le diamètre PSNE efficace au fil du temps, mesuré par diffusion dynamique de la lumière, est répertorié dans le tableau 1, ce qui démontre que PSNE sont stables pendant au moins une semaine. B-mode de PSNE images avant et après vaporisation dans un hydrogel de polyacrylamide sont présentés dans la figure 3. Également, une lésion formée par 15 secondes de HIFU médiée par chauffage dans un hydrogel de polyacrylamide contenant de l&#39;albumine et PSNE est représenté sur la figure 4. La forme asymétrique de la lésion est le résultat de chauffage prefocal qui se produit en raison de la présence de la bulle nuage dans le trajet des ultrasons. Il est important de noter que le chauffage et la formation prefocal lésion due à la dispersion de bulles peut être minimisé en réduisant la puissance acoustique émise. <img src="/files/ftp_upload/4308/4308fig1.jpg" alt="Figure 1"/> Figure 1. Schéma du montage expérimental pour ultrasons expériences avec des tissus mimIcking hydrogels. <img src="/files/ftp_upload/4308/4308fig2.jpg" alt="Figure 2"/> Figure 2. Taille distribution de PSNE extrudé à travers 100 nm ou 200 nm filtres, mesuré par diffusion dynamique de la lumière. Les unités de l&#39;axe des ordonnées sont basés sur l&#39;intensité de la lumière diffusée par les particules d&#39;une certaine taille par rapport à l&#39;intensité totale de lumière diffusée par l&#39;échantillon. <img src="/files/ftp_upload/4308/4308fig3.jpg" alt="Figure 3"/> La figure 3. Mode B images (a) avant et (b) après vaporisation PSNE dans un hydrogel de polyacrylamide. La flèche indique la zone focale où un nuage de bulles a été formé par vaporisation PSNE. <img src="/files/ftp_upload/4308/4308fig4.jpg" alt="Figure 4"/> Images Figure 4. D&#39;polyacrylamide d&#39;hydrogel contenant de l&#39;albumine et PSNE (a) avant et (b) après vaporisation et sonication par HIFU, ce qui démontre la formation de lésions à la suite d&#39;ultrasons induite par chauffage. La fréquence centrale échographie était de 3,3 MHz. Le signal ultrasonore se composait d&#39;un premier 30-cycle, 6,4 W impulsion pour vaporiser PSNE, immédiatement suivie par 15 secondes d&#39;ultrasons en continu à 0,77 W. <table border="1"><tbody><tr><td rowspan="2"> Quelques jours après l&#39;extrusion </td><td colspan="2"> Extrudé avec filtre à 200 nm </td><td colspan="2"> Extrudé avec filtre à 100 nm </td></tr><tr><td> Moyenne Dia. (Nm) </td><td> Std. Dev. (Nm) </td><td> Moyenne Dia. (Nm) </td><td> Std. Dev. (Nm) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 182,9 </td><td> 4,9 </td><td> 118,0 </td><td> 0,9 </td></tr><tr><td> 7 </td> &lt;td&gt; 177,7 </td><td> 2,5 </td><td> 124,8 </td><td> 3,1 </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Diamètre moyen et écart-type de PSNE à un et sept jours après l&#39;extrusion de 100 nm et 200 nm filtres.

<ol><li>Hynynen, K., Darkazanli, A., Unger, E., Schenck, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MRI-guided+noninvasive+ultrasound+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Phys%22%5BJournal%5D)">MRI-guided noninvasive ultrasound surgery.</a> Med. Phys. 20, 107-115 (1993).</li>
<li>Baban, D. F., Seymour, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+tumour+vascular+permeability%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Drug+Deliv.+Rev%22%5BJournal%5D)">Control of tumour vascular permeability.</a> Adv. Drug Deliv. Rev. 34, 109-119 (1998).</li>
<li>Maeda, H., Wu, J., Sawa, T., Matsumura, Y., Hori, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+vascular+permeability+and+the+EPR+effect+in+macromolecular+therapeutics%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Control.+Release%22%5BJournal%5D)">Tumor vascular permeability and the EPR effect in macromolecular therapeutics: a review.</a> J. Control. Release. 65, 271-284 (2000).</li>
<li>Schadlich, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+accumulation+of+NIR+fluorescent+PEG-PLA+nanoparticles%3A+impact+of+particle+size+and+human+xenograft+tumor+model%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Tumor accumulation of NIR fluorescent PEG-PLA nanoparticles: impact of particle size and human xenograft tumor model.</a> ACS Nano. 5, 8710-8720 (2011).</li>
<li>Williams, R. Convertible perfluorocarbon droplets for cancer detection and therapy. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWilliams%2C+R+%222010+IEEE+Ultrasonics+Symposium%22">2010 IEEE Ultrasonics Symposium</a>. , (2010).</li>
<li>Martz, T. D., Sheeran, P. S., Bardin, D., Lee, A. P., Dayton, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precision+manufacture+of+phase-change+perfluorocarbon+droplets+using+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Precision manufacture of phase-change perfluorocarbon droplets using microfluidics.</a> Ultrasound Med. Biol. 37, 1952-1957 (2011).</li>
<li>Giesecke, T., Hynynen, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound-mediated+cavitation+thresholds+of+liquid+perfluorocarbon+droplets+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Ultrasound-mediated cavitation thresholds of liquid perfluorocarbon droplets in vitro.</a> Ultrasound Med. Biol. 29, 1359-1365 (2003).</li>
<li>Sheeran, P. S., Luois, S., Dayton, P. A., Matsunaga, T. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formulation+and+Acoustic+Studies+of+a+New+Phase-Shift+Agent+for+Diagnostic+and+Therapeutic+Ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Formulation and Acoustic Studies of a New Phase-Shift Agent for Diagnostic and Therapeutic Ultrasound.</a> Langmuir. 27, 10412-10420 (2011).</li>
<li>Sheeran, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decafluorobutane+as+a+phase-change+contrast+agent+for+low-energy+extravascular+ultrasonic+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Decafluorobutane as a phase-change contrast agent for low-energy extravascular ultrasonic imaging.</a> Ultrasound Med. Biol. 37, 1518-1530 (2011).</li>
<li>Zhang, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22The+Application+of+Phase-Shift+Nanoemulsion+in+High+Intensity+Focused+Ultrasound%3A+An+In+Vitro+Study+%5BDoctoral+%5D%22">The Application of Phase-Shift Nanoemulsion in High Intensity Focused Ultrasound: An In Vitro Study [Doctoral Dissertation]</a>. , (2011).</li>
<li>Allen, T. M., Hansen, C., Martin, F., Redemann, C., Yau-Young, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposomes+containing+synthetic+lipid+derivatives+of+poly%28ethylene+glycol%29+show+prolonged+circulation+half-lives+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Liposomes containing synthetic lipid derivatives of poly(ethylene glycol) show prolonged circulation half-lives in vivo.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1066, 29-36 (1991).</li>
<li>Klibanov, A. L., Maruyama, K., Beckerleg, A. M., Torchilin, V. P., Huang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity+of+amphipathic+poly%28ethylene+glycol%29+5000+to+prolong+the+circulation+time+of+liposomes+depends+on+the+liposome+size+and+is+unfavorable+for+immunoliposome+binding+to+target%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Activity of amphipathic poly(ethylene glycol) 5000 to prolong the circulation time of liposomes depends on the liposome size and is unfavorable for immunoliposome binding to target.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1062, 142-148 (1991).</li>
<li>Klibanov, A. L., Maryama, K., Torchilin, V. P., Huang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amphipathic+polyethyleneglycols+effectively+prolong+the+circulation+time+of+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Amphipathic polyethyleneglycols effectively prolong the circulation time of liposomes.</a> FEBS Lett. 268, 235-237 (1990).</li>
<li>Gabizon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prolonged+circulation+time+and+enhanced+accumulation+in+malignant+exudates+of+Doxorubicin+encapsulated+in+polyethylene-glycol+coated+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Prolonged circulation time and enhanced accumulation in malignant exudates of Doxorubicin encapsulated in polyethylene-glycol coated liposomes.</a> Cancer Res. 54, 987-992 (1994).</li>
<li>Awasthi, V. D., Garcia, D., Goins, B. A., Philips, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulation+and+biodistribution+profiles+of+long-circulating+PEG-liposomes+of+various+sizes+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Circulation and biodistribution profiles of long-circulating PEG-liposomes of various sizes in rabbits.</a> Int. J. Pharm. 253, 121-132 (2003).</li>
<li>Zhang, P., Porter, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+study+of+a+phase-shift+nanoemulsion%3A+a+potential+nucleation+agent+for+bubble-enhanced+HIFU+tumor+ablation%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">An in vitro study of a phase-shift nanoemulsion: a potential nucleation agent for bubble-enhanced HIFU tumor ablation.</a> Ultrasound Med. Biol. 36, 1856-1866 (2010).</li>
<li>Lafon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gel+phantom+for+use+in+high-intensity+focused+ultrasound+dosimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med.+Biol%22%5BJournal%5D)">Gel phantom for use in high-intensity focused ultrasound dosimetry.</a> Ultrasound Med. Biol. 31, 1383-1389 (2005).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Ultrasons focalisés de haute intensité (HIFU) est utilisée en clinique pour l&#39;ablation thermique des tumeurs. 1 Pour améliorer chauffage localisé et améliorer l&#39;ablation thermique des tumeurs, des gouttelettes de perfluorocarbone enrobage lipidique ont été mis au point qui peut être vaporisé par HIFU. La vascularisation dans de nombreuses tumeurs est anormalement perméable en raison de leur croissance rapide. 2 Ainsi, les nanoparticules sont capables de traverser les fenestrations et passiv...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom commun </td><td> Fabricant </td><td> Cat. Nombre </td><td> Nom complet / Description </td></tr><tr><td> DPPC </td><td> Les lipides Avanti, Birmingham, AL, États-Unis </td><td> 850355P </td><td> 1,2-dipalmitoyl-sn-glycéro-3-phosphocholine </td></tr><tr><td> DSPE-PEG2000 </td><td> Les lipides Avanti, Birmingham, AL, États-Unis </td><td> 880120P </td><td> 1,2-distéaroyl-sn-glycéro-3-phosphoéthanolamine-N-[méthoxy (polyéthylène glycol) -2000] (sel d&#39;ammonium) </td></tr><tr><td> DDFP </td><td> Fluoromed, Round Rock, TX, USA </td><td> CAS: 138495-42-8 </td><td> Dodécafluoropentane (5 F C 12) </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> P2194 </td><td> Tampon phosphate salin </td></tr><tr><td> Chloroforme </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> 372978 </td><td> Chloroforme </td></tr><tr><td> L&#39;acrylamide </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> A9926 </td><td> 40% d&#39;acrylamide 19:01 / bis-acrylamide </td></tr><tr><td> Tampon Tris </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> T2694 </td><td> 1M, pH 8, chlorhydrate Trizma et Trizma de base </td></tr><tr><td> BSA </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> A3059 </td><td> Sérum-albumine bovine </td></tr><tr><td> APS </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> A3678 </td><td> Solution de persulfate d&#39;ammonium </td></tr><tr><td> TEMED </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> 87689 </td><td> N, N, N &#39;, N&#39;-tétraméthyléthylènediamine </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Équipement </td></tr><tr><td> Sonicator (3 astuce mm) </td&gt; <td> Sonics &amp; Materials, Inc, Newtown, CT, USA </td><td> Vibra-Cell </td><td></td></tr><tr><td> Bain d&#39;eau </td><td> Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA </td><td> Neslab EX-7 </td><td></td></tr><tr><td> Extrudeuse </td><td> Northern Lipids, Burnaby, BC, Canada </td><td> LIPEX </td><td></td></tr><tr><td> Filtres extrudeuse </td><td> Whatman, Piscataway, NJ, USA </td><td> # 110605 Nuclepore et # 110606 </td><td></td></tr><tr><td> Extrudeuse de vidange disque </td><td> Sterlitech Corporation, Kent, WA, États-Unis </td><td> # PETEDD25100 </td><td></td></tr><tr><td> Chambre plastique </td><td> US Plastic Corporation, Lima, OH, USA </td><td> # 55288, 1 3/16 &quot;x1 3/16&quot; x2 7/16 &quot; </td><td></td></tr></tbody></table>

synthèse de la phase-shift nanoémulsions à distributions de taille étroite de vaporisation des gouttelettes acoustique et bulles améliorée échographie médiée par ablation

Synthesis of Phase-shift Nanoemulsions with Narrow Size Distributions for Acoustic Droplet Vaporization and Bubble-enhanced Ultrasound-mediated Ablation

Ultrasons focalisés de haute intensité (HIFU) est utilisée en clinique pour l&#39;ablation thermique des tumeurs. Afin de renforcer et d&#39;améliorer chauffage localisé ablation thermique des tumeurs, des gouttelettes de perfluorocarbone enrobage lipidique ont été mis au point qui peut être vaporisé par HIFU. La vascularisation dans de nombreuses tumeurs est anormalement perméable en raison de leur croissance rapide, et les nanoparticules sont capables de traverser les fenestrations et passivement s&#39;accumuler dans les tumeurs. Ainsi, le contrôle de la taille des gouttelettes peut se traduire par une meilleure accumulation dans les tumeurs. Dans ce rapport, la préparation des gouttelettes stables d&#39;une nanoémulsion déphasage (PSNE) avec une distribution de taille étroite est décrit. PSNE ont été synthétisés par sonication une solution lipidique en présence de liquide perfluorocarboné. Une distribution de taille étroite a été obtenu par extrusion des temps PSNE multiples en utilisant des filtres avec des tailles de pores de 100 ou 200 nm. La distribution de taille a été mesurée sur une période de 7 jours en utilisant la diffusion dynamique de la lumière. Polyachydrogels contenant rylamide PSNE ont été préparés pour des expériences in vitro. Gouttelettes PSNE dans les hydrogels ont été vaporisées avec des ultrasons et les bulles résultant renforcée chauffage localisé. Vaporisé PSNE permet un chauffage plus rapide et réduit également l&#39;intensité ultrasons nécessaire pour l&#39;ablation thermique. Ainsi, PSNE devrait permettre d&#39;améliorer l&#39;ablation thermique des tumeurs, ce qui pourrait améliorer les résultats thérapeutiques des traitements HIFU médiées par ablation thermique.

Déphasage nanoémulsions (PSNE) peut être vaporisé en utilisant des ultrasons focalisés de haute intensité pour améliorer chauffage localisé et améliorer l&#39;ablation thermique des tumeurs. Dans ce rapport, la préparation de PSNE stable avec une distribution de taille étroite est décrite. En outre, l&#39;impact de PSNE vaporisé à l&#39;échographie médiée par ablation est démontrée dans des tissus imitant fantômes.

Synthèse de la Phase-shift nanoémulsions à distributions de taille étroite de vaporisation des gouttelettes acoustique et bulles améliorée échographie médiée par ablation

Les ultrasons focalisés de haute intensité (HIFU) sont utilisés en clinique pour l'ablation thermique de tumeurs. Afin d'accentuer le chauffage localisé et d'améliorer l'ablation thermique dans...

L'objectif général de l'expérience suivante est d'observer l'effet des bulles générées par la vaporisation acoustique d'émulsions nano-lipidiques sur l'ablation médiée par ultrasons. Ceci est réalisé en dispersant d'abord des émulsions nano-lipidiques dans des hydrogels d'acrylamide chargés d'albumine. Dans un deuxième temps, un transducteur focalisé émet des impulsions courtes et de haute amplitude dans l'hydrogel, provoquant la vaporisation locale des nano-émulsions au foyer. Ensuite, les bulles résultantes sont continuellement excitées par ultrasons, et l'énergie acoustique rayonnée par ces bulles est rapidement absorbée par l'hydrogel, ce qui accélère le taux de chauffage médié par ultrasons.Les résultats montrent que la présence de bulles réduit considérablement le temps et l'énergie nécessaires pour chauffer l'hydrogel au-delà de la température seuil de dénaturation des protéines, entraînant une ablation médiée par ultrasons plus rapide et plus efficace. La taille de la nanoémulsion à changement de phase constitue un facteur déterminant critique pour le seuil de pression. Pour la vaporisation acoustique, nous avons mis au point un protocole permettant de produire des nanoémul

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