Name: Assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues pour la rénovation et la réparation des vices chondrales dans un modèle de lapin (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Découvrez la transplantation de chondrocytes autologues assistée par matrice pour réparer les défauts chondraux du genou chez le lapin. Cette technique standardisée montre des résultats prometteurs après 12 semaines.

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Ce projet a été financé par l&#39;Association allemande pour la recherche (DFG, HE 4578/3-1).

A. biopsie de cartilage (Salle de chirurgie; étapes 1-5 dans la salle de préparation non stérile) <ol><li> Effectuer un contrôle du poids final du lapin (Nouvelle-Zélande lapin blanc, femelle, 3,5-4,0 kg de poids corporel, âgé de 6 mois) afin de pouvoir doser médicaments correctement et de surveiller le poids après la chirurgie. </li><li> Induire une anesthésie au lapin par une injection intraveineuse de 10 mg / kg de propofol. </li><li> Après l&#39;intubation, maintenir l&#39;anesthésie avec 1,5 mg / kg / min propofol et 0,05 mg / kg de fentanyl par voie intraveineuse. Surveiller anesthésie en utilisant la capnographie, l&#39;oxymétrie de pouls et de la fréquence du pouls. </li><li> Raser le genou à opérer avec une tondeuse électrique et vide la fourrure. </li><li> Désinfecter le genou rasée à fond et couvrir le reste du lapin avec un pansement stérile. </li><li> Palper la rotule et d&#39;effectuer une incision de la peau médiane de la rotule. </li><li> Ouvrez l&#39;articulation du genou par une arthrotomie parapatellaire interne dans des conditions stériles. Essayez d&#39;éviter de couper une petite suvaisseaux sanguins perficial. </li><li> Déplacer la rotule latéralement. </li><li> Inspectez l&#39;articulation du genou pour toutes les anomalies et les lésions cartilagineuses macroscopiques. </li><li> Retirer délicatement les petits morceaux de cartilage (2-3 mm) de la trochlée ossis fémoral avec un scalpel stérile (Figure 1). </li><li> Immédiatement placer ces biopsies de cartilage dans un tube de 50 ml avec du milieu complet (DMEM + 10% sérum de veau foetal (FCS) + 1% de pénicilline / streptomycine (Pen / Strep)) à poursuivre le du chef de culture in vitro après l&#39;opération. </li><li> Nettoyez les défauts et les rincer avec une solution saline stérile. </li><li> Repositionner la rotule dans la gorge trochlée. </li><li> Fermeture de la plaie en couches avec bouton sutures simples (4-0 Vicryl) et une suture cutanée continue (4-0 Monocryl). Utilisez du matériel de suture absorbable. </li><li> Enfin, sceller la plaie avec un spray pansement perméable à la vapeur d&#39;eau. </li></ol> B. culture in vitro <ol><li> Traiter la biopsie cmorceaux de artilage dès que possible après l&#39;opération dans une hotte de culture tissulaire à flux laminaire stérile. </li><li> Laver le stérile récolté cartilage 2x dans PBS avec centrifugation subséquente à 500 g pendant 3 min à température ambiante. </li><li> Couper en morceaux de cartilage 1 mm 3, transfert vers un Falcon 50 ml et digérer sur un agitateur pendant 30 min avec 10 ml de trypsine-EDTA (0,25%) et 10 ml de PBS pendant 30 min </li><li> Après 30 minutes, arrêtez la trypsine en ajoutant un milieu complet. Ensuite, serrer les morceaux de cartilage pour un autre pendant 12 heures avec de la collagénase A (0,21 U / mg) dans un milieu sans sérum (DMEM + 1% Pen / Strep). </li><li> Centrifuger la solution résultante à 170 g pendant 3 min à température ambiante. </li><li> Remettre en suspension les culots de cellules dans 5 ml de milieu complet. </li><li> Ensemencer les chondrocytes isolés sur 25 cm 2 flacons de culture de tissus dans 5 ml de milieu complet et garder dans une culture tissulaire incubateur humidifié à 37 ° C, 5% de CO 2. </li><li> Cultiver des chondrocytes à une densité de 80%. </li><li> Libérer les cellules fflacons de ROM en lavage en PBS 2x avant de l&#39;exposer à 0,05% de trypsine-EDTA pendant 3 min. Une fois chondrocytes se détachent, arrêter la trypsine par addition de 10 pi de milieu complet. </li><li> Centrifuger la suspension à 300 g (3 min) et remettre le culot dans un milieu complet. </li><li> cellules de semences dans des flacons de culture de tissus (75 cm 2) et le partage dans un rapport de 1:3 (~ 5000 cellules / cm 2) toutes les 5 e jour ou à 80% de confluence. </li><li> Déterminer le nombre de cellules et la viabilité par coloration au bleu trypan. </li></ol> C. culture des cellules de la matrice <ol><li> Avant de lavage d&#39;implantation et les cellules de libération tel que décrit ci-dessus. Effectuer le nombre de cellules et de transférer 5 x 10 4 cellules dans un tube de 1,5 ml. Puis centrifuger à 500 g pendant 5 min à température ambiante. </li><li> Resuspendre le culot dans 15 ul de milieu complet pour une saturation complète de la matrice. </li><li> Couper la bicouche échafaudage de collagène aux dimensions exactes du défaut trochlear par une biopsie stérilepunch. </li><li> Lieu matrice dans un plat de culture de tissus de taille appropriée (par exemple des plaques à 24 puits). </li><li> des cellules de semence sur la face poreuse, adhésif de cellule de la matrice. Cela décourage la migration cellulaire loin de la matrice. </li><li> Laisser matrices de cellules ensemencées sans autre milieu de culture des cellules dans un incubateur pendant 1 heure pour permettre le plein respect des chondrocytes. </li><li> Ensuite, placez cellule-matrice-constructions dans des récipients de culture (par exemple des plaques à 24 puits) avec un milieu complet frais. Prenez soin de ne pas laver les cellules au large de la matrice même si une forte adhésion est attendue. </li><li> Maintenant, cell-matrix-constructions peuvent être prises pour la salle de chirurgie pour une nouvelle implantation. </li></ol> D. assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues <ol><li> Effectuer arthrotomie parapatellaire au genou controlatéral comme décrit ci-dessus (A. 1-8). </li><li> Créer deux défauts cartilagineuses isolées dans la gorge de la trochlée avec un operatin d&#39;air stérileg perceuse électrique (3,6 mm de diamètre). </li><li> Nettoyez le défaut et rincer avec une solution saline stérile. </li><li> Il faut faire attention de ne pas ouvrir la cavité de la moelle à tout moment. Si nécessaire, sceller le fond des défauts avec cautérisation électrique contre les saignements. </li><li> Implant les matrices ensemencées avec les chondrocytes en culture avec la face vers le bas de la face poreuse (figure 2). Puis press-fit dans les trous de forage et rincer la surface environnante. </li><li> Sceller les matrices implantés avec un peu de colle de fibrine (Tissucol Duo S) afin d&#39;assurer une fixation sûre. </li><li> Après coagulation, déplacer la rotule à l&#39;intérieur de la gorge de la trochlée et appliquer gamme complète de mouvement de l&#39;articulation du genou à quelques reprises. </li><li> Déplacer la rotule latéralement une fois de plus et vérifier pour tout événement ou signe de fixation instable. Les matrices doivent être tenus toujours en place. </li><li> Remplacez à nouveau la rotule et terminer l&#39;opération avec la fermeture des plaies dans les couches et les embruns s&#39;habiller comme décrit ci-dessus. </li></ol>

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<li>Kimura, T., Yasui, N., Ohsawa, S., Ono, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chondrocytes+embedded+in+collagen+gels+maintain+cartilage+phenotype+during+long-term+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Orthop.+Relat.+Res%22%5BJournal%5D)">Chondrocytes embedded in collagen gels maintain cartilage phenotype during long-term cultures.</a> Clin. Orthop. Relat. Res. , 231-239 (1984).</li>
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<li>Gavenis, K., Schmidt-Rohlfing, B., Mueller-Rath, R., Andereya, S., Schneider, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+comparison+of+six+different+matrix+systems+for+the+cultivation+of+human+chondrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vitro+Cell+Dev.+Biol.+Anim%22%5BJournal%5D)">In vitro comparison of six different matrix systems for the cultivation of human chondrocytes.</a> In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 42, 159-167 (2006).</li>
<li>Niemeyer, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristic+complications+after+autologous+chondrocyte+implantation+for+cartilage+defects+of+the+knee+joint%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Sports+Med%22%5BJournal%5D)">Characteristic complications after autologous chondrocyte implantation for cartilage defects of the knee joint.</a> Am. J. Sports Med. 36, 2091-2099 (2008).</li>
<li>Tay, L. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+outcomes+of+alginate-embedded+allogenic+mesenchymal+stem+cells+versus+autologous+chondrocytes+for+the+repair+of+focal+articular+cartilage+defects+in+a+rabbit+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Sports+Medicine%22%5BJournal%5D)">Treatment outcomes of alginate-embedded allogenic mesenchymal stem cells versus autologous chondrocytes for the repair of focal articular cartilage defects in a rabbit model.</a> The American Journal of Sports Medicine. 40, 83-90 (2012).</li>
<li>Brittberg, M., Nilsson, A., Lindahl, A., Ohlsson, C., Peterson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+articular+cartilage+defects+treated+with+autologous+cultured+chondrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Orthop.+Relat.+Res%22%5BJournal%5D)">Rabbit articular cartilage defects treated with autologous cultured chondrocytes.</a> Clin. Orthop. Relat. Res. , 270-283 (1996).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Le protocole présenté fournit une technique établie 9,12,13 et facilement reproductible pour isoler les chondrocytes autologues pour la prolifération ultérieure et la réimplantation dans des défauts du cartilage créés artificiellement à genoux de lapin. L&#39;utilisation de chondrocytes autologues pour le remodelage et la réparation des lésions du cartilage articulaire est déjà en utilisation clinique fournissant des résultats satisfaisants à long terme 6. Les principau...

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Nom du réactif/équipement&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Société&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Numéro de catalogue&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Commentaires&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Biochrom AG</td><td>F 0415</td><td></td></tr><tr><td>Collagénase A</td><td>Roche</td><td>10 103 586 001</td><td>0,21 U/mg</td></tr><tr><td>Sérum de veau fœtal (FCS)</td><td>PAN Biotech GmbH</td><td>3702-P103009</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Fresenius Kabi</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/Streptomycine</td><td>Biochrom AG</td><td>A 2213</td><td>10 000 U/ml / 10 000 &amp;mu;g/ml</td></tr><tr><td>PBS Dulbecco (1X)</td><td>Biochrom AG</td><td>L1815</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol (70 %)</td><td>Merck KgaA</td><td>410230</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA 0,25 % / 0,02 %</td><td>Biochrom AG</td><td>L2163</td><td>dans PBS sans Ca&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;, Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Fentanyl</td><td>Delta Select GmBH</td><td>1819340</td><td></td></tr><tr><td>Solution de NaCl (0,9 %)</td><td>Bbraun</td><td>8333A193</td><td></td></tr><tr><td>Plaques de culture (100 mm / 150 mm)</td><td>TPP AG</td><td>93100/93150</td><td>Surface de croissance 60,1 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; / 147,8 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Flacons de culture 25 / 75 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td><td>TPP AG</td><td>90025/90075</td><td>25 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;, 75 mm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Tubes de centrifugation (50 ml)</td><td>TPP AG</td><td>91050</td><td>Stérilisés par rayonnement gamma</td></tr><tr><td>Hémocytomètre</td><td>Brand GmbH+Co KG</td><td>717810</td><td>Neubauer</td></tr><tr><td>Solution de bleu de trypan 0,4 %</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L8154</td><td></td></tr><tr><td>Pansement en spray (OpSite)</td><td>Smith&amp;amp;Nephew</td><td>66004978</td><td>Perméable à la vapeur d'eau</td></tr><tr><td>Chondro-Gide&amp;Ograve;</td><td>Geistlich Pharma AG</td><td>30915.5</td><td></td></tr><tr><td>Embout de biopsie</td><td>pfm medical ag</td><td>48351</td><td></td></tr><tr><td>Tissucol Duo S</td><td>Baxter</td><td>3419627</td><td>0,5 ml</td></tr></tbody></table>

assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues pour la rénovation et la réparation des vices chondrales dans un modèle de lapin

Matrix-assisted Autologous Chondrocyte Transplantation for Remodeling and Repair of Chondral Defects in a Rabbit Model

défauts du cartilage articulaire sont considérés comme un problème de santé majeur, car le cartilage articulaire a une capacité limitée pour l&#39;auto-régénération 1. Lésions du cartilage non traitées mènent à la douleur en cours, affecter négativement la qualité de vie et prédisposer à l&#39;arthrose. Au cours des dernières décennies, plusieurs techniques chirurgicales ont été développées pour traiter ces lésions. Toutefois, jusqu&#39;à présent, il n&#39;était pas possible d&#39;obtenir une réparation complète en termes de couverture du défaut de cartilage articulaire hyalin ou de fournir récupération satisfaisante à long terme 2-4. Par conséquent, les blessures du cartilage articulaire restent une cible privilégiée pour les techniques régénératrices telles que l&#39;ingénierie tissulaire. Contrairement à d&#39;autres techniques chirurgicales, qui conduisent souvent à la formation de tissu fibreux ou fibrocartilaginous, génie tissulaire vise à rétablir pleinement la structure complexe et les propriétés du cartilage articulaire d&#39;origine en utilisant le potentiel chondrogénique des cellules transplantées. Res dernières évolutions ont ouvert des perspectives prometteuses pour les thérapies régénératrices du cartilage. La première approche à base de cellules pour le traitement de cartilage de pleine épaisseur ou de lésions ostéochondrales a été réalisée en 1994 par Lars Peterson et Mats Brittberg pionnier de l&#39;implantation de chondrocytes autologues clinique (ACI) 5. Aujourd&#39;hui, la technique est cliniquement bien établie pour le traitement des grands défauts du cartilage hyalin du genou, le maintien de bons résultats cliniques même de 10 à 20 ans après l&#39;implantation 6. Au cours des dernières années, l&#39;implantation de chondrocytes autologues a subi une progression rapide. L&#39;utilisation d&#39;une tridimensionnel de collagène matrice artificielle sur laquelle les cellules sont ensuite replantés est devenu de plus en plus populaire 9.7. MACT comporte de deux interventions chirurgicales: d&#39;abord, afin de recueillir des chondrocytes, une biopsie de cartilage doit être effectuée à partir d&#39;une zone de cartilage non mise en charge de til articulation du genou. Ensuite, les chondrocytes sont extraits, purifiés et étendues à un nombre de cellules suffisant in vitro. Les chondrocytes sont ensuite ensemencées sur une matrice en trois dimensions et peuvent être ensuite réimplantées. Lors de la préparation d&#39;un implant par génie tissulaire, le taux de prolifération et la différentiation sont cruciales pour une régénération des tissus réussi 10. L&#39;utilisation d&#39;une matrice tridimensionnelle comme un support de cellules est pensé pour soutenir ces caractéristiques cellulaires 11. Le protocole suivant résumera et démontrer une technique pour isoler les chondrocytes à partir de biopsies de cartilage, leur prolifération in vitro et leur ensemencement sur ​​une matrice 3D (Chondro-Gide, Geistlich Biomaterials, Wollhusen, Suisse). Enfin, l&#39;implantation des cellules-matrice-constructions en défauts chondrales créés artificiellement de l&#39;articulation du genou d&#39;un lapin sera décrite. Cette technique peut être utilisée comme un cadre expérimentalpour d&#39;autres expériences de la réparation du cartilage.

La technique chirurgicale décrite permet une isolation efficace et implantation de chondrocytes autologues dans un défaut chondral artificielle. Le dispositif expérimental a entraîné une intégration réussie de l&#39;implant dans le cartilage environnant. Après 12 semaines in vivo, le défaut chondral a été comblé par la réparation des tissus avec une surface homogène et intact, ce qui réduit la contrainte de cisaillement et des dommages à l&#39;implant (Figure 4). En...

Une technique expérimentale pour le traitement de défauts chondraux dans l&#39;articulation du genou du lapin est décrite. L&#39;implantation de chondrocytes autologues ensemencées sur une matrice est une méthode bien acceptée pour la rénovation et la réparation des lésions du cartilage articulaire qui fournissent des résultats satisfaisants à long terme. Assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues (MACT) propose une méthode d&#39;implantation standardisée et cliniquement établie.

Assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues pour la rénovation et la réparation des vices chondrales dans un modèle de lapin

Les défauts du cartilage articulaire sont considérés comme un problème de santé majeur car le cartilage articulaire possède une capacité d'auto-régénération limitée 1. Non traités...

L'objectif général de cette procédure est de décrire une technique expérimentale pour le traitement des lésions chondrales dans l'articulation du genou du lapin. Cela est réalisé en réalisant d'abord une biopsie du cartilage à partir de l'articulation du genou afin de recueillir des chondrocytes autologues. La deuxième étape consiste à extraire, purifier et multiplier in vitro les chondrocytes prélevés jusqu'à obtenir un nombre suffisant de cellules.Ensuite, les chondrocytes sont ensemencés sur une matrice tridimensionnelle. Dans la dernière étape, la matrice tridimensionnelle est implantée dans un défaut chondral qui a été réalisé au niveau du genou controlatéral du lapin. Finalement, après 12 semaines in vivo, les implants peuvent être évalués macroscopiquement, le tissu de réparation présentant une surface homogène et intacte de bonne qualité.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la réparation du cartilage articulaire et pourrait faciliter l'analyse expérimentale de la thérapie par facteurs de croissance, de l'induction génique et des modifications des propriétés métriques. Après avoir anesthésié le lapin, rasez le genou à opérer à l’aide d’une paire de tondeuses électriques. Ensuite, aspirez les poils et désinfectez soigneusement le genou rasé, puis recouvrez le reste de l’animal avec un pansement stérile.Ensuite, palper la rotule. Réaliser une incision cutanée médialement à la rotule, puis ouvrir l'articulation du genou par une arthrotomie médiale para-rotulienne en conditions stériles, déplacer la rotule latéralement, puis utiliser un scalpel stérile. Prélever soigneusement de petits fragments de cartilage mesurant deux à trois millimètres de long dans la trochlée de l'os fémoral.Placer immédiatement les biopsies de cartilage dans un tube de 50 millilitres contenant le milieu complet, puis rincer les défauts avec une solution saline stérile. Utiliser une pince pour retirer tous les fragments de cartilage restants. Repositionner maintenant la rotule dans la gouttière trochléenne et fermer la plaie par couches successives à l’aide de points séparés non résorbables et d’un point cutané résorbable continu.Enfin, refermer la plaie avec un pansement pulvérisé perméable à la vapeur d'eau. Commencer cette étape en lavant à deux reprises le cartilage stérile récolté dans du PBS, suivi d'une centrifugation de trois minutes à 500 fois G et à température ambiante. Ensuite, découper le cartilage en morceaux d'un millimètre cube.Transférez-les dans un nouveau tube conique de 50 millilitres, puis digérez les fragments avec 10 millilitres de tripsine, EDTA et 10 millilitres de PBS sur un agitateur. Après 30 minutes, arrêtez la trypsination en ajoutant 10 millilitres de milieu complet. Après la centrifugation, éliminez le surnageant et ajoutez du milieu sans sérum contenant de la collagénase A. Agitez ensuite les fragments pendant encore 12 heures.Centrifugez maintenant la solution obtenue, puis resuspendez le culot cellulaire dans cinq millilitres de milieu complet. Ensuite, semez les cytes isolés dans des flacons de culture tissulaire de 25 centimètres carrés avec cinq millilitres de milieu complet, et faites croître les cellules dans un incubateur de culture tissulaire humidifié à 37 degrés Celsius et 5 %CO2. Lorsque les cultures ont atteint une densité de 80 %, lavez les cytes deux fois avec du PBS. Puis exposez-les à la trypsine-EDTA 0,05 % pendant trois minutes.Une fois les cellules détachées, ajouter cinq millilitres de milieu complet pour arrêter la trypsination. Après avoir centrifugé les cellules, resuspendre le culot dans du milieu complet, puis semer les cellules dans des flacons de culture tissulaire de 75 centimètres carrés. Après avoir récolté les cellules à partir d'une culture in vitro comme vient de l'être démontré, compter les cellules, puis transférer cinq fois 10 à la puissance 4 cellules dans un tube microcentrifuge de 1,5 millilitre.Après avoir centrifugé la suspension cellulaire, resuspendre le culot dans 15 microlitres de milieu complet afin d'assurer une saturation complète de la matrice. Ensuite, découper une matrice bicouche de collagène aux dimensions exactes du défaut trochléen et placer la matrice dans une plaque de 24 puits. Ensuite, ensemencer les chondrocytes sur la face poreuse adhésive aux cellules de la matrice pour favoriser la migration cellulaire vers l'intérieur de la matrice.Incubez ensuite les matrices cellulaires sans culture cellulaire supplémentaire dans le milieu pendant une heure afin de permettre l'adhérence complète des chondrocytes. Enfin, placez les constructions matricielles cellulaires dans une nouvelle plaque de 24 puits contenant un milieu complet frais.Après avoir réalisé une arthrotomie para-patellaire au genou controlatéral comme vient de l'être démontré, commencer la greffe en utilisant un perforateur pneumatique stérile pour créer deux lésions chondrales isolées de 3,6 millimètres de diamètre dans la gouttière trochléenne. Ensuite, rincer les lésions avec une solution saline stérile, en prenant soin de ne pas ouvrir la cavité médullaire.Implantez maintenant les matrices ensemencées de chondrocytes avec le côté poreux vers le bas, puis utilisez une petite quantité de colle de fibrine pour sceller les matrices implantées afin d'assurer une fixation solide. Remettez la rotule dans la gouttière trochléenne et appliquez plusieurs fois toute l'amplitude de mouvement de l'articulation du genou. Ensuite, tout en maintenant les matrices en place, déplacez latéralement la rotule une fois de plus pour vérifier tout signe de fixation.Après avoir remis en place la rotule, terminez à nouveau l'opération par une fermeture de la plaie par plans anatomiques et un pansement pulvérisé, comme vient d'être démontré. Après 12 semaines in vivo, le défaut chondral était comblé par un tissu de réparation présentant une surface homogène et intacte, ce qui a réduit les contraintes de cisaillement et les lésions de l'implant. De plus, aucune hypertrophie ni calcification de l'implant n'a été observée.Le tissu de réparation présentait une qualité rigide et solide, comparable à celle du tissu cartilagineux sain environnant. De plus, aucune délamination de la greffe n'a été observée. La flèche rouge indique le défaut chondral pré-percé 12 semaines après l'ensemencement avec les chondrocytes autologues.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la méthode d'isolement de chondrocytes autologues afin de les faire proliférer in vitro, ainsi que de la technique pour les semer sur des matrices 3D en vue de leur réimplantation dans des défauts cartilagineux artificiellement créés au niveau du genou d’un lapin. Pour une démonstration complémentaire de la technique de création de défauts cartilagineux dans un modèle expérimental différent, veuillez également consulter notre article Jovi associé, intitulé « Traitement des défauts ostéochondraux dans l’articulation du genou du lapin par implantation de cellules souches mésenchymateuses allogéniques dans des caillots de fibrine ».

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Une technique expérimentale pour le traitement de défauts ostéochondraux dans l'articulation du genou du lapin est décrite. L'implantation de cellules souches mésenchymateuses allogéniques dans des défauts ostéochondraux offre un développement prometteur dans le domaine de l'ingénierie tissulaire. La préparation de la fibrine cellule...

Traitement des défauts ostéochondraux à genou la commune du lapin par implantation de cellules allogéniques souches mésenchymateuses dans caillots de fibrine

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Découvrez la transplantation de chondrocytes autologues assistée par matrice pour réparer les défauts chondraux du genou chez le lapin. Cette technique standardisée montre des résultats prometteurs après 12 semaines.

Assistée par matrice transplantation de chondrocytes autologues pour la rénovation et la réparation des vices chondrales dans un modèle de lapin (Vidéo) | JoVE Journal

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