Name: Test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillé par cathétérisme cardiaque chez la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 45 s
Description: Découvrez un test de stress cardiaque par dobutamine surveillé par cathétérisme chez la souris. Cette méthode révèle les maladies cardiaques subcliniques induites par un régime riche en lipides.

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Nous remercions le Dr. Helio Salgado, Renata Lataro et Mauro de Oliveira, Faculté de Médecine de Ribeirão Preto, Université de Sao Paulo et le Dr Ben Janssen, Cardiovascular Research Institute Maastricht, Maastricht University, pour son aide généreuse au cours du processus de configuration. Ce travail a été soutenu par FONDECYT subvention N ° 11090114 de la DDC

Protocole a été approuvé par le comité d&#39;éthique de Facultad de Medicina Clinica Alemana Desarrollo-Universidad del. I. Préparation de la perfusion de dobutamine <ol><li> Dissolvez 10 mg de dobutamine dans 20 ml d&#39;eau distillée stérile, afin d&#39;obtenir une solution stock de 500 pg / ml dobutamine. Aliquoter et conserver à -20 ° C. Cette solution peut être utilisée au moins pendant 3 mois. </li><li> Décongeler une aliquote de la solution mère dobutamine à la température ambiante. </li><li> Diluer la solution mère stérile dobutamine dans NaCl à 0,9%, afin d&#39;obtenir la dobutamine solution de travail, dont la concentration est calculée en utilisant la formule: dobutamine (pg / ml) = poids corporel x 0,2. </li><li> Remplir une seringue de 1 ml 29Gx1 / 2 &quot;avec la solution de travail dobutamine. </li><li> Insérez l&#39;aiguille de la seringue dans un 20 cm PE-10 tube. </li><li> Ajuster la seringue dans la pompe à perfusion en suivant les instructions du fabricant. </li><li> Mettre en place la perfusion rampe lors d&#39;une étapeÀ l&#39;étape de format avec une augmentation de 10 pi / min pour chaque étape, pour 6 étapes. </li></ol> II. Préparation du capteur de pression <ol><li> Pour minimiser la dérive du signal, capteur de pression se plonger dans de l&#39;eau stérile à 37 ° C pendant au moins 15 min. Ne pas faire tremper le cathéter de plus de 0,5 cm de profondeur, afin d&#39;éviter que la pression hydrostatique affecte le capteur de pression. </li><li> Électronique calibrer le capteur de pression à 25 et 100 mmHg. Électrique d&#39;entrée (V) est converti en signal de pression (mm de Hg). </li><li> Réglez la fréquence d&#39;échantillonnage de 2 k / s et d&#39;utiliser le filtre passe-bas avec une coupe à 100 Hz. Réglez signal de pression à zéro mmHg. </li><li> Marquer le cathéter 15 mm de la pointe. Lointain à atteindre le coeur du point d&#39;introduction a été estimé par échocardiographie, la détection de la présence de la sonde dans le ventricule gauche. </li></ol> III. Préparation de souris de cathétérisme <ol><li> Poids souris C57BL / 6 mâles, 30-32 semaines d&#39;âge. </li><li> Injecter par voie intrapéritonéale 60 ug / kg de kétamine et de 4 mg / kg de xylazine 1. Remarque: d&#39;autres anesthésiques pourraient être utilisés, par exemple: 350 - 450 mg / kg avertin, 50 ug / kg de pentobarbital ou de 1,5 à 2% 2-3 isoflurane. </li><li> Raser le cou avec un rasoir électrique. </li><li> Placez la souris anesthésiée en position couchée sur une plaque chauffante isotherme chauffée. Sécuriser ses membres un ruban de papier. </li><li> Effectuer un pincement de l&#39;orteil pour confirmer la sédation complète. </li><li> Insérez doucement une sonde rectale pour surveiller la température du corps. En utilisant une sonde vaselinized est recommandé. </li><li> Si la température du corps varie de 37 ° C ± 0,5 ° C, réglez via la plaque chauffante. </li><li> Placez la souris près du museau alimentation en oxygène. </li><li> Placez la région du cou de la souris sous la loupe binoculaire. </li></ol> IV. Acquisition de données <ol><li> Dans le LabChartPro 7 du logiciel, sélectionnez un canal pour l&#39;enregistrement de pression et un canal de la fréquence cardiaque (HR)d&#39;inscription. Dans ce dernier cas, sélectionnez l&#39;option «Mesures cycliques&quot; et la mesure que le taux de configuration. </li><li> Pour le canal de pression définir la plage de l&#39;échelle: 0 à 150 mmHg. </li><li> Pour HR canal réglé plage d&#39;échelle: 200 à 600 bpm. </li><li> Appuyez sur la touche Start pour commencer l&#39;enregistrement. </li><li> Insérez des commentaires indiquant les procédures effectuées, par exemple: l&#39;administration d&#39;anesthésie, le début de la perfusion de dobutamine, la concentration la dobutamine, la respiration changements. </li></ol> V. Cathétérisme cardiaque 4,5 <ol><li> Effectuez une petite incision sur le côté droit près de la mâchoire. Avec des ciseaux séparer le tissu conjonctif de la peau musculaire. </li><li> Effectuer une dissection longitudinale (1,5 - 2 cm) sur le côté droit de la trachée. Séparez le tissu conjonctif, la graisse et le muscle avec des pinces courbes, afin d&#39;exposer l&#39;artère carotide droite près de la trachée. </li><li> Placez une extension dans le côté animal droit d&#39;exposer l&#39;artère carotide. Pulsatilepression générée par le coeur facilite l&#39;identification de l&#39;artère. La veine jugulaire, qui est rouge foncé, est sur la droite. </li><li> Séparer l&#39;artère de tissus adjacents avec une pince courbe. Le nerf vague, qui ressemble à un fil blanc, se trouve le long de l&#39;artère. </li><li> Coupez un morceau de 20 cm de fil 6/0 de soie et &quot;double&quot; il. </li><li> Passez le &quot;double&quot; fil sous l&#39;artère de gauche à droite. Couper le fil, afin d&#39;obtenir des extrémités séparées. </li><li> Passez un troisième fil (10 cm) au-dessous de l&#39;artère. </li><li> Faire un noeud serré dans le filet placé près de la tête, et un lâche dans le fil plus distale. </li><li> Faire un noeud lâche dans la ligne médiane, et fixer l&#39;extrémité droite de la ligne médiane de la garniture de chauffage avec une bande de papier. </li><li> Gardez l&#39;artère carotide humide en laissant tomber stérile à 0,9% de NaCl. Séchez l&#39;excès de liquide avec des cotons-tiges. </li><li> Étirer le fil inférieur avec une pince hémostatique. </li><li> Fixer la position de la pince hémostatique à ciseaux par pinching la peau de l&#39;abdomen, l&#39;étirage du fil supérieur, de manière à obstruer le flux sanguin. Vérifier que le tissu conjonctif autour de l&#39;artère a été éliminée. L&#39;artère doit être pleine de sang et privés de pouls. Empêcher fils de produire une force de couple sur l&#39;artère. </li><li> Faire une section transversale entaille près du fond de l&#39;artère avec une Vannas micro-ciseaux. Gouttes de sang sera versé. </li><li> Insérer le cathéter dans l&#39;artère carotide. Assurez-vous d&#39;introduire le capteur de pression entier. Vérifiez qu&#39;il n&#39;y a aucune perte de sang. </li><li> Sans forcer, ajustez le nœud ligne médiane, afin de maintenir le cathéter en place. Ne pas comprimer trop, le capteur de pression est très fragile. </li><li> Relâchez les ciseaux hémostatiques de l&#39;abdomen animal. </li><li> Tenez la sonde à la main et pousser le fil du milieu, afin d&#39;éviter la perte de sang. Remarque: l&#39;artère doit être plein de sang. </li><li> Début signaux de pression d&#39;enregistrement. </li><li> Lorsque le cathéter est à l&#39;intérieur, l&#39;signal de pression artérielle varie de 60 à 70 à 100-120 mmHg. La forme du signal de pression est indiquée dans la note figure 1.A: si vous êtes intéressé à, à cet instant, vous pouvez enregistrer la pression artérielle si le signal est stable pendant au moins 5 min. Valeurs de FC ont été obtenus à partir des formes d&#39;onde de pression compte tenu d&#39;un intervalle de 30 secondes de signal d&#39;enregistrement. Il est possible d&#39;utiliser également une méthode ECG pour la mesure directe des ressources humaines, selon les objectifs de l&#39;enquête. </li><li> Poussez doucement le cathéter en place pour observer un changement dans la forme du signal de pression (figure 1.B). Une fois le cathéter à l&#39;intérieur du ventricule gauche, le signal de pression fluctue de 0 à 100-120 mmHg. S&#39;il est difficile de faire glisser le cathéter, pincer la poitrine des animaux avec deux doigts. </li><li> Contrôler en permanence le rythme respiratoire, la température corporelle, le niveau de l&#39;anesthésie et le signal de pression. Tous devraient rester stables. </li></ol> VI. La perfusion de dobutamine <ol><li&gt; Pour canulation de la veine jugulaire n&#39;oubliez pas de décoller le tissu adipeux autour de la veine, afin d&#39;éviter sa perforation. La procédure chirurgicale pour occlusion de la veine est similaire à la procédure indiquée pour l&#39;artère carotide. </li><li> Introduire un tube PE-10 dans la veine. Assurez-vous que la circulation sanguine n&#39;est pas bloqué déplaçant vers l&#39;arrière le piston de la seringue. </li><li> Perfusion de dobutamine commence avec 10 pi / min et terminer par 60 pi / min. A chaque étape, le débit de perfusion est maintenue pendant 2 min 6. </li><li> Après la dernière dose de dobutamine, euthanasier l&#39;animal avec une surdose d&#39;anesthésie. </li></ol> VII. Analyse des données <ol><li> Pour l&#39;analyse de données, choisissez la section des données enregistrées de votre intérêt. Soyez sûr de considérer un intervalle de temps où le signal de pression est stable. </li><li> Sélectionnez l&#39;icône Setup dans le module la pression artérielle. Indiquer le type sélectionné du signal de pression. </li><li> Automatiquement les écrans LabChartPro logiciel 7, moyenne, maximumet les valeurs minimales en matière de RH, de la pression systolique (P max), la pression diastolique (P min), en fin de diastole (PDE), le développement maximal de pression positive (dP / dt max) et le développement maximal de pression négative (dP / dt min). En outre, les paramètres cardiaques peuvent être représentées sur le tracé de pression. </li></ol>

<ol><li>Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+avertin+versus+xylazine-ketamine+anesthesia+on+cardiac+function+in+normal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).</li>
<li>Janssen, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anesthetics+on+systemic+hemodynamics+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).</li>
<li>Lorenz, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+practical+guide+to+evaluating+cardiovascular%2C+renal%2C+and+pulmonary+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).</li>
<li>Lorenz, J. N., Robbins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+intraventricular+pressure+and+cardiac+performance+in+the+intact+closed-chest+anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse.</a> Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).</li>
<li>Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+catheterization+technique+in+a+closed-chest+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model.</a> Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).</li>
<li>Daniels, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+cardiac+functional+reserve+in+type+2+diabetic+db%2Fdb+mice+is+associated+with+metabolic%2C+but+not+structural%2C+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling.</a> Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).</li>
<li>De Celle, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+structural+and+functional+consequences+of+cardiac+ischaemia-reperfusion+injury+in+vivo+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice.</a> Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).</li>
<li>Huntgeburth, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transforming+growth+factor+beta+oppositely+regulates+the+hypertrophic+and+contractile+response+to+beta-adrenergic+stimulation+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart.</a> PLoS One. 6, e26628(2011).</li>
<li>Reddy, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+function+in+young+and+old+Little+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac function in young and old Little mice.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).</li>
<li>Christoffersen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+lipid+accumulation+associated+with+diastolic+dysfunction+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice.</a> Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillés par cathétérisme cardiaque est laborieuse. Néanmoins, en suivant le protocole décrit ici et avec un peu de temps de formation, il est possible d&#39;évaluer six paramètres hémodynamiques en une seule expérience qui durent environ une heure. Les étapes critiques du protocole présenté ici sont les canules des vaisseaux sanguins. En ce qui concerne la canulation de l&#39;artère carotide, l&#39;incision effectuée doit être assez pr...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Réactifs </td></tr><tr><td> PE-50/10 </td><td> Warner Instruments </td><td> 64-0752 </td><td></td></tr><tr><td> Fil de soie 6/0 HR17 </td><td> Tagum </td><td> SN0713K </td><td></td></tr><tr><td> Xylacin 20 mg / ml </td><td> Centrovet Laboratorio </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Kétamine 100 mg / ml </td><td> Drag Pharma </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Chlorure de sodium à 0,9% </td><td> Lab SA Sanderson </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Chlorhydrate de dobutamine </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D0676 </td><td></td></tr><tr><td> Seringue à insuline U-100 29G x ½ &quot; </td><td> Terumo Medical Co. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Pince à dissection Micro Style cm 11,5 7 </td><td> LawtonMedizintechnik </td><td> 09-0959 </td><td></td></tr><tr><td> Graefe Forceps MCV 0,7 mm 7cm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 62-0263 </td><td></td></tr><tr><td> Colliers de Dieffenbach bulldog Cl Str 38 mm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 60-010 </td><td></td></tr><tr><td> Ciseaux Vannas 8 Str cm Fh </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 63-1400 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Équipement </td></tr><tr><td> SPR-671 cathéter Mikro-Tip pression </td><td> Millar instruments </td><td> 840-6719 </td><td></td></tr><tr><td> PCU-2000 Unité de contrôle de pression </td><td> Millar instruments </td><td> 880-0129 </td><td></td></tr><tr><td> PowerLab 4/30 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> ML866 </td><td></td></tr><tr><td> LabChartPro 7 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLU260 / 7 </td><td></td></tr><tr><td> Legato200 Pompe à perfusion </td><td> KdScientific </td><td> KD-KDS210P </td><td></td></tr><tr><td> Régulateur de température TCAT-2LV et plaque chauffante isotherme </td><td> Physitemp instruments Inc </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Fourniture d&#39;oxygène médical </td><td> Indura </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sonde rectale </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLT1404 </td><td></td></tr><tr><td> Microscope trinoculaire, éclairage axial </td><td> LW Scientific </td><td> Z2B-TRI-ETNE, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF </td><td></td></tr></tbody></table>

test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillé par cathétérisme cardiaque chez la souris

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

La dobutamine est un agoniste β-adrénergique avec une plus grande affinité pour le récepteur exprimé dans le cœur (β 1) que pour les récepteurs exprimés dans les artères (β 2). Lorsque administré par voie systémique, il augmente la demande cardiaque. Ainsi, la dobutamine démasque rythme anormal ou zones ischémiques potentiellement le risque d&#39;infarctus. Surveillance de la fonction cardiaque pendant un test d&#39;effort cardiaque peut être effectuée par l&#39;une ou ecocardiography cathétérisme cardiaque. Cette dernière est une technique invasive mais plus précis et informatif que le premier. Test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillés par cathétérisme cardiaque réalisé comme décrit ici permet, en une seule expérience, la mesure des paramètres hémodynamiques suivants: fréquence cardiaque (FC), la pression systolique, la pression diastolique, la pression télédiastolique, maximale pression positive développement (dP / dt max) et maximale négatifs dans la presseure développement (dP / dt min), à des conditions de base et sous des doses croissantes de dobutamine. Comme on s&#39;y attendait, chez des souris normales, nous avons observé une dobutamine liée à la dose augmentation de la FC, dP / dt max et dP / dt min. En outre, à la plus forte dose testée (12 ng / g / min), la décompensation cardiaque de haute teneur en graisses régime alimentaire induits par les souris obèses a été démasqué.

Le signal de pression artérielle est définie par la pression systolique et la pression diastolique. Lorsque le capteur de pression est à l&#39;intérieur du ventricule gauche, la pression (LVP) de forme d&#39;onde est caractérisée par une chute à zéro de la pression diastolique et l&#39;apparition de la contraction de l&#39;oreillette gauche, avant la contraction du ventricule (Figure 1). A l&#39;état initial, la kétamine-xylazine anesthésiés souris normales ont HR de 280 ± 24, P max de 107 ± ...

Nous décrivons le protocole pour effectuer un test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillés par cathétérisme cardiaque chez les souris normales. En outre, nous montrons son application à démasquer la maladie cardiaque infraclinique en haute teneur en graisses régime alimentaire induits par les souris obèses.

Test de stress cardiaque induite par la dobutamine et surveillé par cathétérisme cardiaque chez la souris

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Test d’effort cardiaque induit par la dobutamine et surveillé par cathétérisme cardiaque chez la souris. Dans cette vidéo, nous présenterons une description étape par étape d’un test d’effort cardiaque induit par la dobutamine et surveillé par cathétérisme cardiaque effectué chez des souris normales. Nous montrerons également son application pour démasquer les maladies cardiaques subcliniques chez les souris obèses induites par un régime riche en graisses.La souris anesthésiée est placée sur une plaque thermorégulée. L’apport en oxygène est administré à travers un tube en plastique et la température corporelle est surveillée à l’aide d’une sonde rectale pour le cathétérisme cardiaque. Dans une procédure thoracique fermée, l’artère carotide est utilisée car l’accès via le capteur de pression à l’extrémité du cathéter est suffisamment fin pour pénétrer dans l’artère afin de mesurer la pression artérielle.Le cathéter est introduit à environ 10 millimètres. La forme d’onde de la pression artérielle ressemble à ceci. Pour mesurer la pression ventriculaire, le cathéter doit suivre la voie rectiligne du RE et passer à travers la valve aortique jusqu’à la chambre ventriculaire.La forme de l’onde de pression change lorsque le capteur de pression pénètre dans la chambre ventriculaire pour administrer de la dobutamine. Un tube en plastique est introduit dans la veine jugulaire. Le médicament est perfusé à partir d’une pompe programmée qui injecte un volume croissant de solution selon un mode étape par étape.Le test d’effort cardiaque est basé sur l’effet inotrope et chronotrope de la dobutamine dans le cœur lors de l’évaluation des performances cardiaques. La stimulation à double domaine est un outil puissant pour ama une maladie clinique dans le cœur qui sont normales. Les conditions sont indétectables.Nous allons maintenant vous montrer comment configurer S et l’instrument, comment effectuer le cathétérisme cardiaque et les perfusions domine et comment collecter et analyser des données. Tous les protocoles pour animaux présentés ont été approuvés par le comité d’éthique de la fta. Préparation de l’infusion de dobutamine diluer l’aliquote de la solution mère de dobutamine.500 microgrammes par millilitre dans 0,9 % de chlorure de sodium. La concentration de la solution de travail est calculée à l’aide de la formule microgrammes de dobutamine par millilitre égale au poids corporel multiplié par 0,2. Remplissez une seringue d’un millilitre de calibre 29 fois un demi-pouce et insérez un tube P 10 de 20 centimètres dans l’aiguille de la seringue.Ajustez la seringue dans la pompe à perfusion en suivant les instructions de fabrication. Configurez l’infusion sur rampe dans un format étape par étape avec une augmentation de 10 microlitres par minute pour chaque étape, dans notre cas pour six étapes. Préparation du capteur de pression.Faites tremper le capteur de pression dans de l’eau à 37 degrés Celsius pendant au moins 15 minutes afin de minimiser la dérive du signal. Ne trempez pas le cathéter à plus de 0,5 centimètre de profondeur pour éviter que la pression hydrostatique n’affecte le capteur de pression électroniquement. Calibrez le capteur de pression à 25 et 100 millimètres.L’entrée électrique au mercure est convertie en un signal de pression en millimètres unité de mercure. Réglez la fréquence d’échantillonnage à 2000 par seconde et utilisez le filtre passe-bas avec une coupure à 100 hertz. Réglez le signal de pression sur zéro millimètre. Mercure.Marquez le cathéter à 15 millimètres de l’extrémité. Il est recommandé de savoir à quelle distance vous vous trouvez du ventricule gauche lorsque vous introduisez le cathéter. En préparant la souris pour le cathétérisme, l’animal est anesthésié avec 60 microgrammes par gramme de kétamine et quatre microgrammes par gramme de xylazine en fonction du poids corporel.Ensuite, son cou est rasé avec un rasoir électrique. Placez la souris anesthésiée en position couchée sur une plaque chauffante isotherme chauffée. Fixez ses membres avec du ruban adhésif.Utilisation de vaseline pour la sonde. L’introduction est recommandée. Insérez doucement une sonde rectale pour surveiller la température corporelle.Effectuez un pincement des orteils pour confirmer la sédation complète. Si la température corporelle diffère de 37 degrés Celsius plus ou moins 0,5 degré Celsius, ajustez-la à l’aide de la plaque chauffante. Placez le museau de la souris près de l’alimentation en oxygène.Ajustez le débit d’oxygène à trois livres par pouce carré. Placez la région du cou de la souris sous le stéréomicroscope. Cathétérisme cardiaque.Effectuez une petite incision sur le côté droit près de la mâchoire avec des ciseaux. Séparez le tissu conjonctif musculaire de la peau. Effectuez une dissection longitudinale sur le côté droit de la trachée.Séparez le tissu conjonctif, la graisse et le muscle à l’aide d’une pince incurvée afin d’exposer l’artère carotide droite près de la trachée. Placez un extenseur dans le côté droit de l’animal pour exposer l’artère carotide. La veine jugulaire, qui est rouge foncé, est à droite.La pression pulsatile générée par le cœur facilite l’identification de l’artère. Séparez l’artère des tissus adjacents à l’aide d’une pince incurvée. Le nerf vague, qui ressemble à un fil blanc, se trouve le long de l’artère.Coupez un morceau de 20 centimètres de six fils de soie OTT et doublez-le. Passez le double fil sous l’artère de gauche à droite. Coupez le fil afin d’obtenir des extrémités séparées.Passez un troisième fil sous l’artère. Faites un nœud serré dans le fil positionné près de la tête et un nœud lâche dans le talus de fil plus distal. Nœud au milieu.Enfilez et fixez l’extrémité droite du fil du milieu au coussin chauffant avec du papier. Étirez le fil inférieur avec du ruban adhésif à l’aide d’une pince hémostatique. Gardez l’artère carotide humide avec des gouttes de chlorure de sodium.Séchez l’excès de liquide à l’aide de cotons-tiges. Fixez la position des ciseaux d’hémostatique en pinçant la peau de l’abdomen, en étirant le fil supérieur afin d’obstruer la circulation sanguine. Vérifiez que le tissu conjonctif autour de l’artère a été enlevé.L’artère doit être pleine de sang et il ne doit pas y avoir de pouls. Empêcher les fils de produire une force de couple sur l’artère. Faites une coupe transversale près du bas de l’artère avec des micro-ciseaux à ailettes.Insérez le cathéter dans l’artère carotide. Assurez-vous d’introduire l’ensemble du capteur de pression. Vérifiez qu’il n’y a pas de perte de sang.Ajustez doucement le nœud du fil du milieu afin de maintenir le cathéter en place. N’appliquez pas trop de pression. Le capteur de pression est très fragile.Libérez les ciseaux d’hémostat de l’animal. Abdomen. Tenez le cathéter avec votre main et poussez le fil du milieu. Afin d’éviter la perte de sang, l’artère doit être pleine de sang.Démarrez l’enregistrement des signaux de pression. Sélectionnez un canal pour le traçage de la pression et l’autre canal pour l’enregistrement de la fréquence cardiaque. Pour l’échelle, sélectionnez l’option Mesures cycliques et configurez la mesure en tant que taux.Lorsque le cathéter est à l’intérieur, le signal de pression artérielle fluctue de 70 à 110 millimètres. Mercure, si vous êtes intéressé à ce stade, vous pouvez économiser la pression artérielle. Poussez doucement le cathéter vers le haut pour observer un changement de forme du signal de pression.Une fois que le cathéter est à l’intérieur du ventricule gauche, le signal de pression fluctue de zéro à 100 à 120 millimètres. Le mercure, contrôle en permanence la fréquence respiratoire, la température corporelle, le niveau d’anesthésie et le signal de pression, tous doivent rester stables. Infusion de dobutamine.Pour la canulation de la veine jugulaire, assurez-vous de décoller le tissu adipeux autour de la veine pour éviter sa perforation. L’intervention chirurgicale pour l’occlusion veineuse est similaire à la procédure décrite pour l’artère carotide. Introduisez un tube PE 10 dans la veine.Confirmez que le flux sanguin n’est pas bloqué en reculant. Le piston de la seringue avec la pompe à perfusion d’effusion de dobutamine commence avec 10 microlitres par minute et se termine avec 60 microlitres par minute. À chaque étape, le débit de perfusion est maintenu pendant deux minutes.Après une stimulation à la dobutamine, l’animal est euthanasié avec une surdose d’anesthésie. Analyse des données. Pour l’analyse des données, choisissez la section des données enregistrées qui vous intéresse.Assurez-vous de tenir compte d’un intervalle de temps. Lorsque le signal de pression apparaît stable, sélectionnez l’icône de configuration dans le module de pression artérielle, indiquez automatiquement le type de signal de pression sélectionné. Le logiciel affiche les valeurs maximales et minimales des paramètres qui décrivent les caractéristiques de la trace de pression sélectionnée.De plus, les paramètres cardiaques peuvent être représentés sur les résultats représentatifs de la trace de pression. Le signal de pression artérielle est défini par la pression systolique et diastolique lorsque le capteur se trouve à l’intérieur du ventricule gauche. La forme d’onde de la pression du ventricule gauche est caractérisée par une chute à zéro de la pression diastolique et l’apparition de la contraction auriculaire gauche avant la contraction du ventricule.Le développement maximal de la pression positive et le développement maximal de la pression négative sont la dérivée première des points d’inflexion de la courbe. Chez les souris normales, la pression ventriculaire gauche et la fréquence cardiaque augmentent progressivement lors de l’épanchement de dobutamine. Comme prévu, tous les paramètres hémodynamiques évalués augmentent également de manière dose-dépendante de la dobutamine.Ainsi, l’augmentation de la fréquence cardiaque chronotrope dominante et les effets inotropes positifs sont mis en évidence par rapport aux souris normales chez les souris obèses induites par un régime riche en graisses. Nous avons observé une augmentation plus faible de la fréquence cardiaque et un développement maximal de la pression positive lorsque le stress cardiaque est induit, étant statistiquement significatifs à la dose de dobutamine la plus élevée testée. Ces différences n’ont pas été observées dans les conditions de base.Ce test d’effort cardiaque basé sur l’effort inotrope et chronotrope de la moyenne WTA dans le cœur. Chaque fiabilité dépend de chaque détail. Nous espérons que cette vidéo vous aidera à mettre en place la technique et à obtenir un résultat confiant dans les courts laps de temps.Si vous avez des questions, n’hésitez pas à nous contacter.

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