Name: A Novel Ex vivo Méthode de la culture pour le embryonnaire Souris Coeur (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Découvrez une méthode de culture ex vivo pour le cœur embryonnaire de souris utilisant du Matrigel dilué. Cette technique permet l'observation à long terme du développement cardiaque et facilite l'étude des fonctions cardiaques.

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Nous tenons à remercier Andrea Portbury pour la lecture critique du manuscrit et le NIH (subvention n R01HL061656) pour le soutien financier.

1. Exciser les coeurs embryonnaires <ol><li> Euthanasier une souris timed-enceinte au jour embryonnaire désirée à l&#39;aide d&#39;une technique d&#39;euthanasie approuvé. Toutes les expériences ont été approuvées par le soin des animaux et du Comité institutionnel d&#39;utilisation à l&#39;Université de Caroline du Nord à Chapel Hill. </li><li> Généreusement pulvériser la femelle avec de l&#39;éthanol à 70% avant la dissection. Ouvrez la cavité abdominale de la femelle pour récupérer et exciser la corne utérine. </li><li> Placez la corne utérine dans une boîte de Pétri contenant froid 1x saline tamponnée au phosphate (PBS) et rincer si nécessaire. Couper la corne utérine via la ligne médiane pour exposer les sacs embryonnaires joints. </li><li> Couper un sac embryonnaire et récupérer un embryon. Placez l&#39;embryon dans une seconde boîte de Pétri avec du PBS froid. Retourner la boîte de Pétri avec la corne utérine à la glace. </li><li> Décapite l&#39;embryon pour améliorer l&#39;accès à la paroi thoracique. Si génotypage est nécessaire, enlever et sauver la queue dans un tube Eppendorf placé sur la glace. </li><li> Avec l&#39;embryon sur le dos, coupé ouvrir la cage thoracique pour visualiser le cœur et les poumons. Selon le stade, la paroi thoracique peut être transparent. </li><li> Soulevez délicatement le cœur à l&#39;aide des pinces et couper les vaisseaux ci-dessous. Ensuite, coupez au-dessus des grands vaisseaux de libérer le cœur. Si nécessaire, enlever les tissus étrangers. </li><li> Placez le cœur dans un puits d&#39;une plaque de 24 puits rempli de PBS froid et placez le plat sur la glace. </li><li> Répéter les étapes précédentes jusqu&#39;à cœurs ont été supprimés de tous les embryons. </li></ol> 2. Culture Set-up <ol><li> Dans une hotte laminaire, combiner Matrigel froid et le milieu de culture souhaitée (par exemple 10% de sérum de veau fœtal (FBS) en milieu de Eagle modifié par Dulbecco (DMEM)) à un ratio de 1:1. Ne pas préchauffer le milieu de culture. </li><li> Garder le Matrigel dilué sur la glace, pipette 500-1000 ul de la solution diluée dans un puits d&#39;une boîte de culture de 24 puits qui est également maintenu sur la glace. </li><li> Dans la hotte, choisissez soigneusement et placer le exciséecoeur dans un puits de la boîte de culture Matrigel contenant tout en gardant la boîte de culture sur la glace. </li><li> Si l&#39;orientation du cœur embarqué est cruciale: pulvériser généreusement un microscope inversé et l&#39;espace environnant avec 70% d&#39;éthanol. Dans la hotte, mettre le cœur excisé dans un puits de la plaque de culture Matrigel contenant tout en restant sur la glace. Ensuite, placer la plaque sur un microscope et orienter rapidement le coeur d&#39;exciser le Matrigel commence à se solidifier. </li><li> Placez la boîte de culture dans un incubateur humidifié 37 ° C incubateur (5% de CO 2) et laissez le Matrigel à solidifier pendant environ 30 min. </li><li> Ajouter 1 milieu de culture préchauffé ml dans chaque puits contenant un cœur. </li><li> Coeurs peuvent rester en culture pendant au moins quatre jours. Changer le milieu de culture tous les deux jours est recommandée. </li></ol> 3. Fixation et visualisation <ol><li> Si désiré, ajouter un colorant fluorescent des cellules vivantes (par exemple Syto-16) pour visualiser le cœur en direct. Photographie seralimité à la partie du coeur qui est visible en fonction de la position dans laquelle elle a été intégrée. </li><li> Si les analyses post-culture (par exemple, l&#39;imagerie mont tout ou coupe) seront effectuées, éliminer le milieu de culture et le remplacer par le froid 4% de formaldéhyde. Placer le plat sur la glace pendant 30 min. </li><li> Après le formaldéhyde froid et de la glace favorisent la dissolution du Matrigel, remplacer le fixateur (et Matrigel) avec le formaldéhyde fraîche et fixer des coeurs pendant une nuit à 4 ° C. </li><li> Laver les cœurs avec tampon (par exemple PBS ou Tris) et conserver à 4 ° C jusqu&#39;à ce que des analyses plus poussées. </li></ol>

<ol><li>Tu, S., Chi, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+models+in+cardiac+development+and+congenital+heart+birth+defects%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Zebrafish models in cardiac development and congenital heart birth defects.</a> Differentiation. 84, 4-16 (2012).</li>
<li>Lavine, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+growth+factor+signals+regulate+a+wave+of+Hedgehog+activation+that+is+essential+for+coronary+vascular+development%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Fibroblast growth factor signals regulate a wave of Hedgehog activation that is essential for coronary vascular development.</a> Genes Dev. 20, 1651-1666 (2006).</li>
<li>Red-Horse, K., Ueno, H., Weissman, I. L., Krasnow, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+arteries+form+by+developmental+reprogramming+of+venous+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Coronary arteries form by developmental reprogramming of venous cells.</a> Nature. 464, 549-553 (2010).</li>
<li>Stuckmann, I., Evans, S., Lassar, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erythropoietin+and+retinoic+acid%2C+secreted+from+the+epicardium%2C+are+required+for+cardiac+myocyte+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Erythropoietin and retinoic acid, secreted from the epicardium, are required for cardiac myocyte proliferation.</a> Dev. Biol. 255, 334-349 (2003).</li>
<li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+FGF-BMP+signaling+axis+regulates+outflow+tract+valve+primordium+formation+by+promoting+cushion+neural+crest+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">The FGF-BMP signaling axis regulates outflow tract valve primordium formation by promoting cushion neural crest cell differentiation.</a> Circ. Res. 107, 1209-1219 (2010).</li>
<li>Pillekamp, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+and+characterization+of+a+mouse+embryonic+heart+slice+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Cellular+Physiology+and+Biochemistry%3A+international+journal+of+experimental+cellular+physiology%2C+biochemistry%2C+and+pharmacology%22%5BJournal%5D)">Establishment and characterization of a mouse embryonic heart slice preparation.</a> Cellular Physiology and Biochemistry: international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology. 16, 127-132 (2005).</li>
<li>Habeler, W., Peschanski, M., Monville, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organotypic+heart+slices+for+cell+transplantation+and+physiological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Organogenesis%22%5BJournal%5D)">Organotypic heart slices for cell transplantation and physiological studies.</a> Organogenesis. 5, 62-66 (2009).</li>
<li>Janssen, P. M., Lehnart, S. E., Prestle, J., Hasenfuss, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preservation+of+contractile+characteristics+of+human+myocardium+in+multi-day+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Preservation of contractile characteristics of human myocardium in multi-day cell culture.</a> J. Mol. Cell Cardiol. 31, 1419-1427 (1999).</li>
<li>Brandenburger, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organotypic+slice+culture+from+human+adult+ventricular+myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Organotypic slice culture from human adult ventricular myocardium.</a> Cardiovasc. Res. 93, 50-59 (2012).</li>
<li>Weaver, M., Dunn, N. R., Hogan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bmp4+and+Fgf10+play+opposing+roles+during+lung+bud+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Bmp4 and Fgf10 play opposing roles during lung bud morphogenesis.</a> Development. , 127-2695 (2000).</li>
<li>Viragh, S., Challice, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+of+the+epicardium+and+the+embryonic+myocardial+circulation+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec%22%5BJournal%5D)">The origin of the epicardium and the embryonic myocardial circulation in the mouse.</a> Anat. Rec. 201, 157-168 (1981).</li>
<li>Kirby, M. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKirby%2C+ML+%22Cardiac+Development%22">Cardiac Development</a>. , Oxford University Press. (2007).</li>
<li>Arima, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiogenic+morphogenesis+driven+by+dynamic+and+heterogeneous+collective+endothelial+cell+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Angiogenic morphogenesis driven by dynamic and heterogeneous collective endothelial cell movement.</a> Development. 138, 4763-4776 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils n&#39;ont aucun intérêt financier concurrents.

Le système de culture actuelle pose des avantages significatifs pour les études cardiaques embryonnaires de souris. Ce système de culture préserve la contractilité du myocarde et le plexus coronaire, avec des signes limités de nécrose, même après quatre jours de culture. En outre, la matrice semi-solide fournit un soutien suffisant pour maintenir la morphologie tridimensionnelle du coeur en développement, tout en permettant une flexibilité de contrat et également pour maintenir des perles revêtues en place au cours de l...

Ces dernières années, la souris transgénique a été le système de modèle prédominant pour l&#39;étude des malformations cardiaques de développement. Toutefois, d&#39;autres organismes modèles tels que le poisson-zèbre, se sont avérés avoir des avantages significatifs par rapport à la souris. Trois avantages majeurs du poisson zèbre sont la pose externe des œufs, pour faciliter l&#39;accès à des embryons; la transparence optique des embryons, ce qui permet une visualisation facile du développement cardiaque, et la facilité d&#39;application de petites traitements moléculaires pour moduler le développement de l&#39;embryon 1. Ainsi, le développement d&#39;une technique de culture qui a permis la croissance des ex utero d&#39;un organe embryonnaire serait contourner, au moins en partie, les limitations actuellement rencontrées par les chercheurs qui étudient les processus de développement chez les souris transgéniques. Systèmes de culture cardiaques ex vivo ont été développés à la fois le poussin et embryon de souris qui permettent un traitement avec de petites molécules et des analyses de façon difrentes régions du cœur communiquent 2-6. Pour la culture de cœur de souris ensemble, coeurs prélevées sur des embryons jusqu&#39;à embryonnaire (E) 12.5 de l&#39;âge peut être placé dans un milieu de culture avec ou sans balancement 2,3,5. Grâce à cette technique, les cœurs embryonnaires ont été incubées avec succès à l&#39;équivalence des E13.5, et les cœurs cultivés avec rocking ont été maintenus aussi longtemps que trois jours (à partir de E10.5) 3. Cependant, aucune étude n&#39;a rapporté la culture réussie des cœurs d&#39;embryons âgés. De même, les expériences de sauvetage ont été limitées à l&#39;application de l&#39;agent thérapeutique au niveau mondial pour le milieu de culture 2. Un système de culture de tranche, dont les cœurs sont excisées, intégrées, et sectionné à l&#39;aide d&#39;un vibratome, a également été utilisé pour les deux cœurs jeunes, comme E12.5 cœurs de souris et Hamburger-Hamilton stade 36 (environ E16 chez la souris) cœurs chiches 2,4,6, et plus cœurs, comme post-natal et adulte souris heArts et les coeurs humains adultes 7,8. Bien que les analyses embryonnaires sont généralement utilisés sections épaisses de 150 um 2,4, épaisseur de coupe peut être un excellent jusqu&#39;à 500 um sans preuve d&#39;un manque d&#39;oxygène 8. Ces cultures de tranche ont été maintenus aussi longtemps que deux mois en culture, avec la plupart des tranches de maintenir la contractilité tout au long de cette période 9. Par rapport aux études dans les cardiomyocytes isolés, ces cultures de tranche permettent la co-culture de cardiomyocytes avec leurs types de cellules voisines et fournissent une méthode utile pour l&#39;analyse ex vivo. Cependant, ces cultures nécessitent plus élaborée set-up que de simplement placer un coeur dans un milieu de culture (par exemple intégrer le cœur vivant de sectionnement sur ​​un vibratome), et toute analyse est évidemment limitée à la partie du cœur au sein de la section. Compte tenu des limites décrites ci-dessus pour la culture des cœurs embryonnaires de souris et la richesse des souris transgéniques available pour l&#39;étude, nous avons développé un système ex vivo de souris de coeur de culture similaire à un système de culture du poumon ex vivo développé par Weaver, et 10 Notre système de culture al. permet culture à long terme et la visualisation de la rénovation circulation coronaire au sein de l&#39;ensemble cœurs embryonnaires de souris. En outre, l&#39;utilisation de Matrigel permet perles pour être maintenus en place à proximité du centre, offrant ainsi un traitement localisé avec des agents thérapeutiques. Ces expériences peuvent être réalisées à différents moments du développement de comparer l&#39;effet d&#39;un traitement donné sur un processus tels que la formation de l&#39;artère coronaire. Parce que les petites molécules peuvent diffuser à travers le Matrigel, ce système de culture peut également être utilisé pour la culture des régions disséquées du cœur près de l&#39;autre afin de déterminer si des contacts entre cellules spécifiques sont nécessaires pour certains processus de développement ou si la signalisation paracrines d&#39;une région à l&#39;autre est nécessaire. Ce système de cultureest relativement simple et, contrairement au système de culture de tranche, fait appel à des réactifs de culture de base et les set-ups qui sont facilement disponibles dans la plupart des laboratoires. En bref, cœurs embryonnaires excisés sont cultivées en Matrigel dilué, qui fournit un support semi-solide. Ce support est suffisante pour maintenir la morphologie tridimensionnelle du coeur, tout en permettant la contraction du coeur. Grâce à ce système, coeurs entiers de plus d&#39;embryons de souris (E14.5-E16.5) peuvent être maintenues en culture pendant quatre jours. L&#39;ensemble du plexus coronaire est maintenue, contrairement aux cultures de tranche, donc aucun repère de signalisation qui se produisent dans différentes régions du cœur restent présents. En outre, les colorants fluorescents des cellules vivantes peuvent traverser le Matrigel pour permettre la visualisation du cœur live, et des perles en protéines conjugués peuvent être placés à proximité du coeur de fournir une source de signalisation localisée. Ensemble, ces avantages font de cette technique une méthode idéale pour étudier les processus de développement dans l&#39;embryonic cœur de la souris.

<table><tbody><tr><td colspan="4">REAGENTS</td></tr><tr><td>Souris</td><td></td><td></td> enceintes à retarder <td>À disséquer au stade embryonnaire d’intérêt</td></tr><tr><td>PBS (1x)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Cellgro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2442</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel BD</td><td>Bioscience</td><td>356231</td><td></td></tr><tr><td>Syto-16</td><td>Invitrogen</td><td>S7578</td><td>Utilisé comme indiqué dans 13 </td></tr><tr><td>plaque de culture à 24 puits</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-200-84</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>Microscope stéréoscopique</td><td>Nikon</td><td>SMZ645</td><td></td></tr><tr><td>Incubateur de culture cellulaire</td><td>Thermo</td><td>3110</td><td></td></tr></tbody></table>

a novel<em&gt; ex vivo</em&gt; méthode de la culture pour le embryonnaire souris coeur

A Novel Ex vivo Culture Method for the Embryonic Mouse Heart

Des études de développement chez la souris sont entravés par l&#39;inaccessibilité de l&#39;embryon pendant la gestation. Ainsi, les protocoles d&#39;isoler et de culture différents organes d&#39;intérêt sont indispensables pour fournir une méthode de deux stratégies de traitement novatrices visualisation changements dans le développement et permettant. Afin de promouvoir la culture à long terme du cœur embryonnaire à un stade avancé de gestation, nous avons développé un protocole dans lequel le cœur excisé est cultivé dans un semi-solide, Matrigel dilué. Ce substrat fournit une aide suffisante pour maintenir la structure en trois dimensions, mais est suffisamment souple pour permettre la contraction continue. En bref, les coeurs sont excisés de l&#39;embryon et placés dans un mélange de Matrigel froid dilué 1:1 avec le milieu de croissance. Après le Matrigel dilué se solidifie, le milieu de croissance est ajouté à la boîte de culture. Coeurs excisées aussi tard que jour embryonnaire 16,5 étaient viables pendant quatre jours après dissection. Analyse du plexus coronaire montre que cette méthode ne tient pasperturber le développement vasculaire coronaire. Ainsi, nous présentons une nouvelle méthode de culture à long terme des cœurs embryonnaires.

Grâce à cette technique, le cœur conserve sa morphologie tridimensionnelle et reste viable, comme indiqué par les contractions continues (Film 1). Ces contractions sont toujours plus importante dans les oreillettes que dans les ventricules. Après la culture, coeurs peuvent être fixés et traités soit pour l&#39;immunohistochimie ou histologie pour examiner l&#39;expression de marqueurs spécifiques ou des structures. Figure 1A montre la base des ventricules et les grandes artères d&#39;un...

Des études de développement chez la souris sont entravés par l&#39;inaccessibilité de l&#39;embryon pendant la gestation. Afin de promouvoir la culture à long terme du cœur embryonnaire à un stade avancé de gestation, nous avons développé un protocole dans lequel le cœur excisé est cultivé dans un semi-solide, Matrigel dilué.

A Novel<em&gt; Ex vivo</em&gt; Méthode de la culture pour le embryonnaire Souris Coeur

Developmental studies in the mouse are hampered  by the inaccessibility of the embryo during gestation. Thus, protocols to  isolate and culture individual ...

L'objectif général de cette procédure est d'extraire le cœur embryonnaire pour une culture ex vivo. Cela est réalisé en prélevant d'abord la corne utérine d'une souris femelle gravide. Ensuite, un embryon est récupéré et préparé pour la dissection.Ensuite, la paroi thoracique embryonnaire est ouverte afin de visualiser le cœur. Enfin, le cœur est excisé et placé dans une cavité de culture contenant du matrigel dilué. En définitive, des résultats peuvent être obtenus montrant un cœur vivant sain par observation au microscope en champ clair.Le principal avantage de cette technique par rapport à d'autres méthodes, comme les cultures agitées, est que le cœur peut être traité soit par des agents locaux, tels qu'une protéine conjuguée à une microbille, soit par des agents globaux, comme l'ajout d'une petite molécule au matrigel. Les implications de cette technique s'étendent vers des thérapies pour les maladies cardiovasculaires, car elle permet d'examiner les événements survenant dans des segments spécialisés du cœur dans le contexte de l'organe entier intact. Après avoir euthanasié une souris gestante au jour embryonnaire souhaité, selon une technique approuvée par votre institut, vapo

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