Name: Parabiose chez la souris: un protocole détaillé (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-06T21:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: Apprenez la technique de parabiose chez la souris pour créer un système circulatoire partagé sans immunosuppression. Cette méthode chirurgicale permet d'étudier le chimerisme sanguin sur le long terme.

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Les auteurs tiennent à remercier Adriane Mosley et Libuse Jerabek (Stanford) pour l&#39;assistance à la technique chirurgicale.

Toutes les études sur les animaux ont été réalisés selon les directives de protection des animaux et l&#39;utilisation du comité de l&#39;UCLA et les National Institutes of Health Guide pour le soin et l&#39;utilisation des animaux de laboratoire. La durée de la procédure décrite ci-dessous est d&#39;environ 45 à 60 min, du début à la fin. Une. Préparation du champ opératoire <ol><li> Exécuter la procédure dans une salle de chirurgie des animaux propres. </li><li> Équipement: isoflurane vaporisateur, Gaymer T Pompe avec coussin chauffant. </li><li> Outils stériles: deux pinces, ciseaux courbes fines, porte-aiguille. </li><li> Des gants stériles doivent être utilisés au cours de toute la procédure. </li></ol> 2. Préparation des animaux <ol><li> Placez deux souris mâles ou femelles, de même fond génétique, de poids et de taille similaire dans la même cage et surveiller pendant au moins deux semaines afin d&#39;assurer une cohabitation harmonieuse. Des souris femelles sont préférés en raison de leur comportement moins agressif. </li><li> Anesthésier les animaux parl&#39;aide d&#39;un vaporisateur à l&#39;isoflurane. La place les souris dans une chambre d&#39;induction Posi-Seal connectés au vaporisateur isoflurane (4-5% v / v). Une fois anesthésie est induite, transférer l&#39;animal vers la zone de rasage de la fourrure et de maintenir l&#39;anesthésie pendant toute la procédure par l&#39;intermédiaire d&#39;un cône de nez relié à l&#39;isoflurane (1,5 à 2% v / v). Appliquer une pommade ophtalmique avec un Q-tip pour éviter la sécheresse des yeux. </li><li> Placez l&#39;animal sur la position couchée. Bien raser le côté gauche de la souris placé sur la gauche et le côté droit de la souris placé sur la droite, en commençant à environ 1 cm au-dessus du coude à 1 cm au-dessous du genou. </li><li> Préparer de manière aseptique les zones rasées en essuyant soigneusement (2-3x) avec des lingettes de Betadine imbibé suivis par des tampons d&#39;alcool. Placez la souris sur un coussin chauffant recouvert par une compresse stérile. </li><li> Pour l&#39;analgésie, administrer Carprofen et buprénorphine par voie intrapéritonéale ou sous-cutanée à une dose de 10 mg / kg et 0,1 mg / kg respectivement. </li><li> Placez les animaux de leur côté, dos à dos, avec undjacent zones rasées vers le haut. Pour éviter toute contamination de la zone chirurgicale, couvrir les souris avec un champ stérile exposer uniquement la zone d&#39;opération. Créer une petite ouverture de champ à rester stérile lors de l&#39;exécution de la chirurgie. Nous avons fait la fenêtre de champ importante pour avoir une meilleure vue pendant l&#39;enregistrement vidéo. </li></ol> 3. Parabiose <ol><li> L&#39;utilisation d&#39;un ciseau tranchant, effectuer des incisions longitudinales de la peau sur les côtés rasés départ de chaque animal à 0,5 cm au-dessus du coude tout le chemin à 0,5 cm en dessous de l&#39;articulation du genou (figure 1). À la suite de l&#39;incision, détacher doucement la peau contre le fascia sous-cutané en maintenant la peau vers le haut avec une paire de forceps incurvés et séparer le fascia avec une deuxième paire de créer 0,5 cm de peau libre. Effectuez cette séparation le long de toute incision. </li><li> Commencez l&#39;assemblage en fixant l&#39;olécrane gauche d&#39;un animal à droite olécrane de l&#39;autre. Les deux olecranons et les articulations du genou sont clairement distingués e suivantee incision cutanée. Pour faciliter l&#39;assemblage, plier le coude de la première souris et passer l&#39;aiguille de l&#39;3-0 suture non résorbable sous l&#39;olécrane. De même, plier le coude de la deuxième souris et passer le même suture dessous. Fixez solidement joints par un noeud chirurgical double. </li><li> Raccorder les articulations du genou suivant la même procédure. </li><li> Après la fixation des joints, relier la peau des deux animaux avec un absorbable 5-0 Vicryl surjet partir le ventre du coude vers le genou. Pour éviter une rupture de la peau et de la séparation effectuer une fermeture étanche de suture de la peau dans la zone autour des coudes et les genoux. Une fois l&#39;attache ventral de la peau a été achevée, effectuer un noeud chirurgical double. Placez la souris en position couchée et continuer la dorsale de suture se terminant par un noeud chirurgical double. Vérifier la continuité du fil de suture et de confirmer l&#39;absence d&#39;ouvertures. </li><li> Administrer 0,5 ml de NaCl à 0,9% par voie sous cutanée à chaque souris pour empêcher déshyréhydratation. </li></ol> 4. Récupération postopératoire <ol><li> Gardez les animaux sur tapis chauffé jusqu&#39;à la guérison. </li><li> Après récupération, de fournir des analgésiques carprofène et la buprénorphine. Répéter par voie intrapéritonéale ou sous-cutanée toutes les 24 heures et 12, respectivement, pendant 48 heures aux mêmes doses décrites ci-dessus (étape 2.5). Surveillez les animaux des signes de douleur et de détresse telles que des tremblements, de la léthargie, de mâcher de la queue, dos voûté, absence de toilettage, etc jour pendant deux semaines. </li><li> Prophylactique, traiter des souris avec la suspension orale sulfaméthoxazole / triméthoprime dans leur bouteille d&#39;eau 2 mg sulfamide / ml 0,4 mg / ml les garnitures pendant 10 jours pour prévenir les infections bactériennes. </li><li> Maison chaque paire parabiotic dans une cage propre d&#39;une litière monolithique (par exemple, de serviettes en papier ou un tampon stérile absorbant) pour éviter l&#39;aspiration de litière. Remettre les animaux à une literie garni cage quand ils sont en mesure de maintenir décubitus sternal avec leur tête. Pour réduire au minimum la déformationd&#39;atteindre pour la nourriture tout en s&#39;adaptant à l&#39;existence parabiotic, placer les boulettes de nourriture humides sur le sol de la cage. Fournir du matériel de nidification. Dans 1-2 semaines souris parabiotic ont la possibilité de déambuler normalement antérieurs et membres postérieurs chirurgicalement appariés. </li><li> chimérisme de sang se produit 10-14 jours après la chirurgie. </li></ol> 5. Confirmation et de la procédure n º <ol><li> Après deux semaines prélever du sang à partir des veines de la queue de chaque souris pour l&#39;analyse de cytométrie de flux pour les chimérisme sanguin (Figure 3). </li><li> traitement de sang pour analyse par cytométrie de flux: diluer 2-3 gouttes de sang dans 500 ul de 10 mM d&#39;EDTA. Ajouter 500 ul de 2% de dextran (dilué dans du PBS), bien mélanger et incuber à 37 ° C pendant 30 min. Transférer le surnageant dans un nouveau tube, centrifugation à 1200 rpm pendant 5 min et remettre en suspension le culot cellulaire dans du PBS (tampon ou autre) aux fins d&#39;analyse par cytométrie en flux. </li><li> Selon la conception expérimentale, la paire parabiotic peut être séparée d&#39;unet points de temps ultérieurs. Dans notre expérience, nous avons maintenu paires parabiosed jusqu&#39;à 9 mois sans aucune complication. </li><li> Effectuer la procédure inverse sur une surface chirurgical stérile. Anesthésier les souris en les plaçant dans une chambre d&#39;induction reliée à un évaporateur de l&#39;isoflurane (4-5%) et de maintenir l&#39;anesthésie avec de l&#39;isoflurane 1,5 à 2%, comme décrit ci-dessus (étape 2.2). </li><li> Enlever les poils de la zone entourant le fil de suture initiale et de manière aseptique préparer les zones rasées tels que décrits ci-dessus (étapes 2.3, 2.4). </li><li> Pour l&#39;analgésie, d&#39;administrer le carprofène et buprénorphine par voie intrapéritonéale ou sous-cutanée à une dose de 10 mg / kg et 0,1 mg / kg, respectivement. </li><li> Couvrir zone chirurgicale avec un champ stérile comme décrit ci-dessus (étape 2.6). </li><li> Utilisation de ciseaux, séparer les souris à travers une incision longitudinale le long de la suture latérale et doucement détacher le fascia nouvellement formée entre les deux souris avec une paire de forceps incurvés. Pour séparer les articulations, couper les noeuds de la sutureles reliant. Coupez la peau le long de l&#39;incision pour atteindre des bords lisses et rattacher la peau avec un enduit continu 5-0 suture Vicryl absorbable. </li><li> Pour prévenir la déshydratation, à administrer 0,5 ml de NaCl à 0,9% par voie sous cutanée à chaque souris. Gardez les animaux sur tapis chauffé jusqu&#39;à la guérison. </li><li> Après la récupération, répéter l&#39;administration d&#39;analgésiques, carprofène (10 mg / kg) toutes les 24 heures et la buprénorphine (0,1 mg / kg) toutes les 12 heures pendant 48 heures. </li><li> Pour prévenir les infections bactériennes traitent souris avec la suspension orale sulfaméthoxazole / triméthoprime (2 mg sulfamide / ml 0,4 mg TRIM / ml) dans leur bouteille d&#39;eau pendant 10 jours. </li></ol>

<ol><li>Bert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exp%C3%A9riences+et+consid%C3%A9rations+sur+la+greffe+animale%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+de+l%27Anatomie+et+de+la+Physiologie%22%5BJournal%5D)">Expériences et considérations sur la greffe animale.</a> Journal de l'Anatomie et de la Physiologie. 1, 69-87 Forthcoming.</li>
<li>Bunster, E., Meyer, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+methods+of+parabiosis%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec%22%5BJournal%5D)">Improved methods of parabiosis.</a> Anat. Rec. 57, 339-380 (1933).</li>
<li>Waskow, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+parabiotic+mice+for+the+study+of+DC+and+DC+precursor+circulation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of parabiotic mice for the study of DC and DC precursor circulation.</a> Methods Mol. Biol. 595, 413-428 (2010).</li>
<li>Finerty, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parabiosis+in+physiological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Parabiosis in physiological studies.</a> Physiol. Rev. 32, 277-302 (1952).</li>
<li>Aicher, A., Heeschen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonbone+marrow-derived+endothelial+progenitor+cells%3A+what+is+their+exact+location%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Nonbone marrow-derived endothelial progenitor cells: what is their exact location.</a> Circ. Res. 101, e102(2007).</li>
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<li>Donskoy, E., Goldschneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thymocytopoiesis+is+maintained+by+blood-borne+precursors+throughout+postnatal+life.+A+study+in+parabiotic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Thymocytopoiesis is maintained by blood-borne precursors throughout postnatal life. A study in parabiotic mice.</a> J. Immunol. 148, 1604-1612 (1992).</li>
<li>Powell, A. E., Anderson, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fusion+between+Intestinal+epithelial+cells+and+macrophages+in+a+cancer+context+results+in+nuclear+reprogramming%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Fusion between Intestinal epithelial cells and macrophages in a cancer context results in nuclear reprogramming.</a> Cancer Res. 71, 1497-1505 (2011).</li>
<li>Duyverman, A. M., Kohno, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transient+parabiosis+skin+transplantation+model+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">A transient parabiosis skin transplantation model in mice.</a> Nat. Protoc. 7, 763-770 (2012).</li>
<li>Ajami, B., Bennett, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+self-renewal+can+sustain+CNS+microglia+maintenance+and+function+throughout+adult+life%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Local self-renewal can sustain CNS microglia maintenance and function throughout adult life.</a> Nat. Neurosci. 10, 1538-1543 (2007).</li>
<li>Weissman, I. L., Jerabek, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tolerance+and+the+H-Y+antigen%3A+Requirement+for+male+T+cells%2C+but+not+B+cells%2C+to+induce+tolerance+in+neonatal+female+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Tolerance and the H-Y antigen: Requirement for male T cells, but not B cells, to induce tolerance in neonatal female mice.</a> Transplantation. 37, 3-6 (1984).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont aucun intérêt financier concurrents.

La méthode de parabiose discuté ici présente des difficultés et des résultats techniques minimales des taux de mortalité faibles. La fixation des articulations du genou et du coude constitue une amélioration importante de la technique et Bunster Meyer. Toutefois, la procédure invasive reste donc le maintien de conditions stériles pendant toute la chirurgie est impérative. Pour prévenir l&#39;infection du site chirurgical, il est important que les animaux reçoivent parabiosed une combinaison d&#39;antibiotiques et être c...

Parabiose, rejoindre le chirurgicale de deux organismes, a été décrite pour la première en 1864 par Paul Bert comme un moyen de développer un modèle pour étudier les systèmes circulatoires partagées et composée de l&#39;assemblage de la peau et des parois musculaires de deux rats 1. Parabiose favorise la formation de microvaisseaux au niveau du site de l&#39;inflammation et 3 a eu de nombreuses applications dans des études physiologiques, telles que la communication entre hormonal de la glande pituitaire et les gonades, ainsi que le rôle de l&#39;hypertension rénale chez 4. Il a été en outre utilisé pour étudier le recrutement et l&#39;intégration des cellules progénitrices dans la néovascularisation 5, la migration des cellules souches hématopoïétiques 6, et le trafic des lymphocytes 7, ainsi que le rôle et la cinétique de cellules circulantes inflammatoires ou souches dans la métastase de la tumeur 8,9, et les maladies neurodégénératives 10. Un avantage important du mensonge de parabioseen ce que les animaux en couple part antigènes circulants communs, ce qui permet la migration cellulaire et la néovascularisation, sans déclencher une réaction immunologique. Fait important, Weissman et al. Ont montré que parabiose entre les souris mâles et femelles ne conduit pas à la formation d&#39;anticorps dirigés contre HY 11. Dans le protocole original décrit par Paul Bert les deux animaux ont été réunis par le raccordement de la peau et des parois musculaires 1. Toutefois, cette méthode a provoqué souche importante pour les animaux et a abouti à une forte mortalité due à une infection de la plaie. Depuis lors, la technique de parabiose a été révisé par plusieurs groupes avec le plus prédominant étant le protocole proposé par Bunster et Meyer en 1933 2. Leur méthode a inclus l&#39;assemblage des joints de l&#39;omoplate, des cavités du corps et de la peau, ce qui permet un meilleur soutien et moins de douleur pour les animaux. Dans le même temps, la nouvelle méthode a donné lieu à des soins et signifi post-opératoire minimalsignificative diminution des taux de mortalité. Le protocole décrit ici est une modification de la technique Bunster Meyer et qui est moins invasive et permet de rejoindre plus ferme. À savoir, les souris sont reliés par des articulations du coude et du genou ainsi que la peau. Cette jonction empêche l&#39;extension de la peau et donc provoque moins de douleur et les complications. Nous décrivons ici la jonction d&#39;un type sauvage (WT) de souris adulte à une GFP constitutive exprimant la souris. Nous montrons que deux semaines après la chirurgie, nous pouvons réaliser 50% de chimérisme de sang démontrant l&#39;efficacité de cette procédure chirurgicale pour créer un système de circulation commun.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane-Phoenix</td><td>Clipper</td><td>NDC 57319-559-06</td><td></td></tr><tr><td>Chambre d’induction Posi-Seal</td><td>Produits d’imagerie moléculaire</td><td>AS-01-0530-SM</td><td></td></tr><tr><td>Système d’anesthésie portable</td><td>Produits d’imagerie moléculaire</td><td>AS-01-0007</td><td></td></tr><tr><td>Pompe Gaymer T</td><td>Gaymar Industries, Inc</td><td>TP650</td><td></td></tr><tr><td>Couverture chauffante (coussin chauffant)</td><td>Kent Scientific Corp</td><td>TP-22G</td><td></td></tr><tr><td>Pince courbe</td><td>Roboz</td><td>RS-5101</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux</td><td>Outils de science fine (FST)</td><td>FST 14063-09</td><td></td></tr><tr><td>Porte-aiguille</td><td>FST</td><td>FST 12501-13</td><td></td></tr><tr><td>Rasoir électrique</td><td>Oster</td><td>Golden A5</td><td></td></tr></tbody></table>

parabiose chez la souris: un protocole détaillé

Parabiosis in Mice: A Detailed Protocol

Parabiose est une union chirurgicale de deux organismes permettant le partage de la circulation sanguine. Fixation de la peau de deux animaux favorise la formation de microvaisseaux au niveau du site de l&#39;inflammation. Partenaires Parabiotic partagent leurs antigènes circulants et sont donc libres de la réaction immunitaire indésirable. D&#39;abord décrit par Paul Bert en 1864 1, la chirurgie parabiose a été affinée par Bunster et Meyer en 1933 pour améliorer la survie des animaux 2. Dans le protocole courant, deux souris sont joints par voie chirurgicale suite à une modification de la technique et Bunster Meyer. Les animaux sont reliés par des articulations du coude et du genou, suivie par la fixation de la peau permettant un soutien ferme qui empêche de pression sur la peau suturée. Ici, nous décrivons en détail la parabiotic assemblage d&#39;un GFP omniprésent exprimant la souris à un type sauvage (WT) de la souris. Deux semaines après l&#39;intervention, la paire est séparée et les cellules positives à la GFP peut être détectée par analyse par cytométrie de flux circulant dans le sangion de la souris WT. Le chimérisme de sang permet d&#39;examiner la contribution des cellules circulantes d&#39;un animal à l&#39;autre.

Le résultat attendu de parabiose de deux organismes est la contribution égale de système circulatoire de chaque animal à une circulation sanguine commune (Figure 2). On peut facilement vérifier le succès de l&#39;équilibration du sang de l&#39;parabiosed des souris WT et positif GFP par analyse par cytométrie de flux. Ici, le sang veineux a été obtenue à partir des queues des deux parabionts à 2 semaines après l&#39;intervention chirurgicale et a été fractionné pour les cellules du sang périphérique (po...

Parabiotic jonction de deux organismes entraîne le développement d&#39;un système de circulation commun. Dans ce protocole, nous décrivons les étapes chirurgicales pour former une connexion entre parabiotic une souris de type sauvage et une souris exprimant la GFP constitutive.

Parabiose chez la souris: un protocole détaillé

Parabiosis is a surgical union of two organisms allowing sharing of the blood circulation. Attaching the skin of two animals promotes formation of ...

L'objectif général de cette procédure est de réaliser une association parabiotique de deux souris afin d'étudier un système circulatoire partagé. Cela est accompli en réalisant d'abord une incision sur les côtés adjacents des animaux. Après la séparation des aponévroses, les deux souris sont solidement reliées au niveau des articulations du coude et du genou.La dernière étape consiste à relier la peau des deux animaux par un point de suture continu. En fin de compte, une analyse cytométrique en flux peut révéler une chimère sanguine dans un délai de 10 à 14 jours après l'intervention. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes, telles que la transplantation de moelle osseuse ou l'injection de cellules, est qu'elle ne nécessite pas d'immunosuppression et permet également le maintien d'une circulation CX sur une longue période.La mise en œuvre de la procédure sera effectuée par Punctu Jaw. Le chirurgien animal de mon laboratoire doit, au moins deux semaines à l'avance, installer plusieurs cages contenant des paires de souris du même sexe, de préférence femelles, de même génétique et de taille et poids similaires. Une fois qu'une paire harmonieuse a été sélectionnée, réaliser la parabiose dans une salle de chirurgie animale propre.Veillez à ce que tous les outils et gants en contact soient stériles. Anesthésiez les souris dans une chambre d'induction scellée PAI reliée à un vaporisateur d'isoflurane. Une fois l'anesthésie induite, maintenez-la tout au long de la procédure.À l’aide d’un cône nasal, délivrer une concentration plus faible d’isoflurane, puis raser les poils abdominaux sur les côtés opposés et appliquer un onguent ophtalmique. Ensuite, procéder de manière aseptique. Préparer les zones rasées en les essuyant soigneusement avec des lingettes imprégnées de bétadine, suivies de lingettes alcoolisées.Ensuite, transférez les souris sur un tapis chauffant recouvert d'un tapis stérile. Pour l'analgésie, utilisez du carprofène et de la buprénorphine. Placez les souris sur le côté, dos à dos, avec les zones rasées orientées vers le haut.Ensuite, recouvrez les souris avec un champ stérile, en ne laissant exposée que la zone opératoire. À l’aide d’une paire de ciseaux pointus, pratiquez des incisions cutanées longitudinales sur les côtés de chaque animal, en commençant à un demi-centimètre sous l’articulation du genou et en terminant à un demi-centimètre au-dessus du coude. Après l’incision, détachez délicatement la peau de la fascia sous-cutanée en soulevant la peau avec une pince courbe et en séparant la fascia à l’aide d’une seconde pince.Pour créer un demi-centimètre de peau libre, les CEC et les articulations du genou sont clairement distinguables. Après l'incision cutanée, commencez à réunir les CEC gauche et droit. Fléchissez d'abord le coude de la première souris et passez l'aiguille du fil 3,0 sous le Théon.Deuxièmement, fléchissez le coude de la deuxième souris et passez le même fil sous celui-ci. Fixez solidement les articulations à l’aide d’un nœud chirurgical double. Ensuite, reliez les articulations du genou en suivant la même procédure.Après la fixation des articulations, reliez la peau des deux animaux à l’aide d’un point continu absorbable en Vicryl 5/0. Commencez ventralement à partir du coude afin d’éviter la rupture et le décollement de la peau.Effectuer des sutures serrées de la peau dans les zones autour des coudes et des genoux. La connexion de la peau entre les souris constitue une étape critique de cette procédure. Il est important de s'assurer que les souris sont solidement jointes afin d'éviter toute rupture ou séparation après la chirurgie.Par conséquent, tous les quatre à cinq mois, nous vérifions que la peau est solidement fixée. Une fois la fixation de la peau ventrale terminée, placer les souris en position pronaire et poursuivre la suture de manière dorsale en terminant par un nœud chirurgical double. Vérifier la continuité de la suture et s'assurer qu'elle ne présente aucune ouverture.Terminer la chirurgie en administrant sous-cutanément une demi-millilitre de chlorure de sodium à 0,9 % à chaque animal afin de prévenir la déshydratation. Maintenir les animaux sur la plaque chauffante jusqu’à leur réveil. Héberger chaque paire parabiotique dans une cage propre avec des granulés d’aliment humides afin de minimiser l’effort nécessaire pour atteindre la nourriture pendant l’adaptation à l’existence parabiotique.Placer les granulés alimentaires sur le fond de la cage. Veiller également à fournir du matériel de nidification pendant les 48 premières heures suivant l'intervention. Administrer du carprofène toutes les 24 heures et de la buprénorphine toutes les 12 heures pendant deux semaines.Surveillez les animaux pour détecter les signes de douleur et de détresse, tels que tremblements, léthargie, morsure de la queue, dos voûté, absence de toilette, et ainsi de suite. Pour prévenir les infections bactériennes durant les 10 premiers jours suivant l'intervention, traitez les souris avec une suspension orale de sulfaméthoxazole et de triméthoprime dans leur bouteille d'eau. Une cism sanguine se produira entre 10 et 14 jours après la chirurgie.Ainsi, après deux semaines, prélève du sang à partir de leurs veines caudales pour confirmer que ce phénomène s'est produit. Utilise la cytométrie en flux pour analyser le sang. Dilue deux à trois gouttes dans 500 microlitres d'EDTA 10 millimolaire.Ensuite, mélanger soigneusement la dilution avec 500 microlitres de dextrine à 2 % dans du PBS. Incuber une demi-heure à 37 degrés Celsius le mélange sanguin, puis le centrifuger pour récupérer le surnageant. Pour la mise en œuvre pratique.Les paires de probiotiques peuvent être conservées ensemble pendant neuf mois et séparées sans aucune complication. Effectuez la procédure inverse sur une surface chirurgicale stérile. Utilisez le même protocole d'anesthésie que celui décrit précédemment, et rasez les poils de la zone entourant la suture initiale.Après avoir préparé de manière aseptique la peau rasée, administrer les analgésiques et couvrir la zone chirurgicale avec un champ opératoire à l’aide de ciseaux pointus. Séparer les souris par une incision longitudinale le long de la suture latérale afin de dissocier les articulations, puis couper les nœuds de la suture les reliant sur chaque souris. Retoucher la peau le long de l’incision pour lisser les bords.Ensuite, recoudre la peau avec un point de suture continu absorbable en Vicryl enrobé 5-0 pour prévenir la déshydratation, administrer 0,5&nbsp;mL de chlorure de sodium à 0,9&nbsp;% par voie sous-cutanée, puis maintenir les animaux sur un tapis chauffant jusqu’à leur réveil de l’anesthésie. Utiliser les mêmes traitements postopératoires analgésiques et antibactériens que ceux décrits précédemment. Le résultat attendu d’une parabiose entre deux organismes est une contribution égale du système circulatoire de chaque animal à une circulation sanguine commune. L’équilibration du sang entre des souris parabiotiques de type sauvage et des souris positives pour la GFP a été étudiée par analyse cytométrique en flux, en accord avec des études antérieures.Le sang de la souris de type sauvage a révélé la présence d'un chimérisme, indiqué par environ la moitié des cellules sanguines positives pour la GFP et la moitié des cellules sanguines de type sauvage. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en 45 à 60 minutes si elle est effectuée correctement.

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Nous présentons ici un protocole visant à promouvoir l’intégration du transgène et la production de souris transgéniques fondateur avec grande efficacité par une simple injection d’un vecteur lentiviral dans l’espace périvitellin d’un ovocyte fécondé.

Production de souris transgéniques par des gènes : une méthode Simple et très efficace pour l’étude directe des fondateurs

Ici nous décrivons une nouvelle méthode de détecter l’établissement réussi de la circulation sanguine partagée de deux parabionts par une injection caudale de veine de glucose, qui cause des dommages minimaux et n’est pas mortelle aux parabionts.

Détection de l’établissement de l’approvisionnement en sang partagé dans les souris parabiotiques par injection de glucose de veine caudale

Cet article vise à démontrer l’utilisation de cellules souches embryonnaires haploïdes parthénogénétiques comme substitut au sperme pour la construction d’embryons semi-clonés.

Application des cellules souches embryonnaires haploïdes parthénogénétiques de souris comme substitut du sperme

La méthode de manipulation cervicale présentée peut induire une pseudogrossesse chez la souris sans avoir besoin de reproduire des femelles avec des mâles vasectomisés. L’induction de la pseudogrossesse est nécessaire pour le succès du transfert d’embryons non chirurgical et de l’insémination artificielle non chirurgicale, qui sont également présentés.

Induction d’une pseudogrossesse chez les souris femelles sans avoir besoin de mâles vasectomisés avant le transfert d’embryons non chirurgical ou l’insémination artificielle

Nous présentons ici un protocole pour cultiver des sous-types spécifiques de cellules hypothalamiques en culture. Les cellules peuvent être sélectionnées sur la base de marqueurs membranaires opportuns/uniques et utilisées dans de nombreuses applications, notamment l’immunofluorescence, les tests électrophysiologiques et biochimiques.

Isolement de neurones hypothalamiques ciblés pour l’étude de la régulation hormonale, métabolique et électrique

Cet article établit un pipeline pour des suspensions de cellules uniques et de noyaux de haute qualité d’embryons de souris gaztrulants pour le séquençage de cellules uniques et de noyaux.

Séquençage de l’ARN unicellulaire d’embryons entiers de souris mutantes : de l’épiblaste à la fin de la gastrulation

Apprenez la technique de parabiose chez la souris pour créer un système circulatoire partagé sans immunosuppression. Cette méthode chirurgicale permet d'étudier le chimerisme sanguin sur le long terme.

Parabiose chez la souris: un protocole détaillé

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