Transformation bactérienne : électroporation
La transformation bactérienne est un processus apparaissant naturellement, dans lequel les bactéries ingèrent un ADN étranger et ensuite l'amplifient ou le clonent. Au labo, ce processus peut être artificiellement induit, en utilisant des impulsions de champ électrique haute tension pour créer des pores dans la membrane de la cellule bactérienne, à travers lesquelles l'ADN plasmidique peut passer. Le terme électroporation fait référence à cette méthode et cette vidéo montre ses principes, une procédure pas à pas et ses utilisations.
Avant de parler de l'électroporation d'une bactérie, il est important de comprendre le type d'ADN utilisé dans ces expérimentations: le plasmide. Un plasmide est un petit, circulaire, extrachromosomique morceau d'ADN qui agit comme vecteur, un porteur de votre séquence d'ADN spécifique.
Que la séquence soit un gène pour une protéine de fluorescence chez les méduses ou une enzyme de plante, elle est insérée dans le plasmide grâce à une zone appelée site de clonage multiple ou MCS. Cette zone contient des séquences spécifiques qui sont accrochées par des endonucléases de restriction ou enzymes de restriction. Les mêmes enzymes de restriction peuvent être utilisés pour couper votre séquence d'intérêt de manière à ce que les extrémités soient complémentaires aux extrémités nouvellement coupées du plasmide.
Les plasmides contiennent aussi une origine de réplication, abrégée ORI, qui indique le point où il doit être répliqué. Lorsqu'il s'agit de la transformation le gène de résistance aux antibiotiques est d'une importance vitale. Comme son nom l'implique, ce gène permet à la bactérie de produire un enzyme qui neutralise les antibiotiques, permettant aux bactéries de survivre dans un milieu contenant des antibiotiques.
L'électroporation utilise un appareil spécialisé appelé électroporateur. Les cellules sont typiquement placées dans une cuvette d'électroporation, qui a des électrodes de chaque côté qui font le contact électrique avec l'appareil une fois (que la cuvette est) insérée.
Les cellules bactériennes mélangées avec l'ADN sont chargées dans la cuvette d'électroporation et un champ électrique de l'ordre de 1000 à 10 000 volts par centimètre est appliqué pendant quelques millisecondes. Ceci fait augmenter la tension à travers la membrane jusqu'à 0,5-1 volts, ce qui est connu pour amener à un réarrangement de la bicouche phospholipidique qui compose la membrane cellulaire, de manière à ce que des pores se forment. Dans cet état l'ADN plasmidique passera à travers la membrane et lorsque les impulsions seront stoppées la bicouche se réparera elle-même.
Ayant pris le plasmide, les bactéries peuvent alors croître sur des plaques de gélose contenant des antibiotiques.
Maintenant que nous avons étudié les plasmides et le mécanisme d'électroporation, regardons comment la procédure est menée.
Les cellules qui peuvent rapidement prendre l'ADN sont référencées comme cellules compétentes. Dans la recherche en biologie moléculaire, le type de bactéries compétentes le plus commun qui est transformé est E. coli, qui est la bactérie procaryote qui vit dans votre intestin grêle. Les E. coli qui sont préparées pour l'électroporation sont référencées comme des cellules électrocompétentes.
A tout moment où vous manipulez des bactéries, faites en sorte que la zone de travail soit aussi propre que possible.
Manipuler des bactéries exige aussi la pratique d'une technique aseptisée. Typiquement cela inclu l'utilisation d'un bec Bunsen pour stériliser les instruments et pour créer un courant de convection – qui garde les contaminants en suspension dans l'air éloignés de l'espace de travail.
Juste avant l'électroporation, préchauffez le milieu à température ambiante, amenez les plateaux de gélose contenant les antibiotiques jusqu'à 37 °C, et refroidissez les cuvettes d'électroporation dans la glace.
Ensuite, dégelez dans la glace les cellules électrocompétentes lavées.
Ajoutez 1 à 5 μL de plasmide froid à 1ng/μL sans sel aux cellules bactériennes, mélangez gentiment, et ajoutez le mélange à la cuvette froide. Vérifiez qu'il n'y ait pas de bulles.
Réglez la tension et l'intensité du champ de l'électroporateur aux paramètres corrects pour vos cellules. Ici vous voyez un électroporateur être réglé à 1700 volts avec une intensité de champ de 17 kV/cm.
Essuyez l'extérieur de la cuvette et placez la dans l'électroporateur. Pulsez les cellules jusqu'à ce que vous entendiez un bip.
Une pulsation non réussie provoque une décharge électrique, qui est observable via une étincelle visible et un bruit audible. Cette décharge, dénommée arc, peut être le résultat de la présence de trop de sel dans vos cellules compétentes ou ADN.
Le succès de votre transformation peut être prédit en relevant le temps constant, qui est le temps que la tension prend pour s'affaiblir après l'application du pulse. Lorsque du sel est présent et que la solution d'électroporation est très conductrice, l'affaiblissement apparait rapidement, provoquant la décharge, et ainsi la mort de beaucoup de vos cellules. Pour les bactéries, un bon temps constant va de 5 à 10 millisecondes.
Immédiatement après l'application des pulses, retirez la cuvette et ajoutez 1 ml de milieu directement aux cellules. Ces cellules qui contiennent du milieu sont placées dans un tube et incubées à 37 °C pour 1 heure, avec agitation, en vue pour les cellules de récupérer.
Ensuite, en utilisant une technique aseptisée ajoutez 20 à 200 μL des cellules à un plateau de gélose contenant des antibiotiques. Renversez les plateaux de façon à ce que la gélose soit au dessus et donc que la condensation ne tombe pas dans vos cellules et incubez pendant la nuit à 37 °C.
Les bactéries transformées avec le plasmide devraient former des colonies. Comptez les colonies et calculez l'efficacité de la transformation, qui est le nombre de bactéries transformées avec succès divisé par le nombre total d'ADN sur la plaque.
La gélose et le milieu, qui fournissent la nourriture pour vos bactéries, devraient être pré-préparés et stérilisés par autoclave. Laissez les milieux liquides se refroidir à température ambiante avant de les utiliser et laissez la gélose se reposer à 50-55 °C – température à laquelle un antibiotique peut être ajouté et les plateaux déversés. Ensuite, laissez les plateaux refroidir à température ambiante pour solidifier.
Puisque les bactéries utilisées dans la transformation sont stockées dans le congélateur, elles doivent d'abord être dégelées dans la glace, répandues sur un plateau de gélose sans antibiotiques et ensuite croître pendant la nuit à 37 °C.
En utilisant une technique aseptisée sélectionnez une colonie bactérienne depuis le plateau de gélose et faites la croitre dans une culture plus grande de 500 mL pendant la nuit à 37 °C dans un incubateur à agitation.
Pendant que les cellules se multiplient, préparez environ un litre d'eau désionisée et faites une solution à 10% en volume de glycérol dans l'eau. Mettez les solutions à l'autoclave et laissez les reposer à 4 °C.
Des mesures d'absorbance sont utilisées pour déterminer si oui ou non les bactéries sont à leur phase de croissance mi-log, ce qui signifie qu'elles vont facilement prendre l'ADN. Une fois que les cellules ont atteint cette phase, placez les dans la glace et gardez les là tout au long de la procédure.
Ensuite, lavez les cellules en les séparant dans deux tubes centrifuges et centrifugez les à 4°C, retirez le supernageant et remettez le reste en suspension dans 100 ml d'eau désionisée stérile froide. Répétez cette étape au moins une autre fois. Le but de cette étape particulière est de retirer le sel, qui va énormément affecter l'électroporation.
Réalisez deux lavages additionnels dans 50 ml de glycérol à 10% dans l'eau et remettez finalement en suspension les bactéries dans cette même solution.
Ajoutez 50 μL de cellules dans plusieurs tubes Eppendorf. Ces cellules sont maintenant prêtes pour leur utilisation en électroporation et devraient être conservées à 4 °C. Ou elles peuvent être surgelées et conservées à -80 °C.
Comme vous allez le voir, l'électroporation a de nombreuses utilisations.
Une alternative à l'électroporation est la transformation au choc thermique, qui repose sur l'exposition de la bactérie au chlorure de calcium et à la chaleur en vue d'introduire l'ADN dans vos cellules.
En général, le choc thermique est plus doux sur vos bactéries que l'électroporation et ne requiert pas une faible teneur en sel. Les réactions de ligation, celles qui impliquent l'insertion de votre gène cible dans le plasmide, peuvent être utilisées directement en transformation par choc thermique. La transformation par choc thermique est moins cher que l'électroporation et ne repose pas sur un équipement ou des cuvettes couteux. D'un autre côté, le choc thermique représente des efficacités de transformation plus faibles que l'électroporation et prend plus de temps. Aussi, la transformation par choc thermique est limitée aux bactéries, à la levure et aux protoplastes végétaux alors que l'électroporation peut être appliquée aux cellules mammifères.
Ici vous voyez des fibroblastes d'embryon de souris chargés dans une cuvette d'électroporation. Une fois l'électroporation finie, l'efficacité de la transformation peut être déterminée par l'observation de la mesure selon laquelle les cellules produisent une protéine fluorescente verte codée par le plasmide. La transfection est le terme donné à la transformation de cellules mammifères, qui requiert typiquement des intensités de courant inférieures à celles pour des cellules bactériennes et des temps constants supérieurs.
L'électroporation peut aussi être réalisée dans tous les animaux, comme l'embryon de poulet en développement que vous voyez ici. L'ADN plasmidique est injecté dans le cerveau du poussin et ensuite un test d'électroporation est utilisé pour appliquer un champ électrique sur les tissus du cerveau. Après un jour ou deux, des protéines fluorescentes vertes et rouges – encodées dans le plasmide – sont produites par les neurones, et les scientifiques peuvent observer des changements structurels dans le cerveau du poussin en développement.
Vous venez de regarder l'introduction de JoVE à la transformation bactérienne par électroporation. Cette vidéo introduit le plasmide comme le type d'ADN le plus communément transformé, discute le mécanisme biophysique à la base de l'électroporation, montre une procédure généralisée pour réaliser une électroporation, et décrit comment l'électroporation peut être utilisée dans un système mammifère. Merci de nous avoir regardé!
Le terme “transformation” fait référence à l'ingestion cellulaire d'ADN étranger. Dans la nature, une transformation peut avoir lieu dans certain type…
La transformation bactérienne est un processus apparaissant naturellement, dans lequel les bactéries ingèrent un ADN étranger et ensuite l'amplifient ou le clonent. Au labo, ce processus peut être artificiellement induit, en utilisant des impulsions de champ électrique haute tension pour créer des pores dans la membrane de la cellule bactérienne, à travers lesquelles l'ADN plasmidique peut passer. Le terme électroporation fait référence à cette méthode et cette vidéo montre ses principes, une procédure pas à pas et ses utilisations.
Avant de parler de l'électroporation d'une bactérie, il est important de comprendre le type d'ADN utilisé dans ces expérimentations: le plasmide. Un plasmide est un petit, circulaire, extrachromosomique morceau d'ADN qui agit comme vecteur, un porteur de votre séquence d'ADN spécifique.
Que la séquence soit un gène pour une protéine de fluorescence chez les méduses ou une enzyme de plante, elle est insérée dans le plasmide grâce à une zone appelée site de clonage multiple ou MCS. Cette zone contient des séquences spécifiques qui sont accrochées par des endonucléases de restriction ou enzymes de restriction. Les mêmes enzymes de restriction peuvent être utilisés pour couper votre séquence d'intérêt de manière à ce que les extrémités soient complémentaires aux extrémités nouvellement coupées du plasmide.
Les plasmides contiennent aussi une origine de réplication, abrégée ORI, qui indique le point où il doit être répliqué. Lorsqu'il s'agit de la transformation le gène de résistance aux antibiotiques est d'une importance vitale. Comme son nom l'implique, ce gène permet à la bactérie de produire un enzyme qui neutralise les antibiotiques, permettant aux bactéries de survivre dans un milieu contenant des antibiotiques.
L'électroporation utilise un appareil spécialisé appelé électroporateur. Les cellules sont typiquement placées dans une cuvette d'électroporation, qui a des électrodes de chaque côté qui font le contact électrique avec l'appareil une fois (que la cuvette est) insérée.
Les cellules bactériennes mélangées avec l'ADN sont chargées dans la cuvette d'électroporation et un champ électrique de l'ordre de 1000 à 10 000 volts par centimètre est appliqué pendant quelques millisecondes. Ceci fait augmenter la tension à travers la membrane jusqu'à 0,5-1 volts, ce qui est connu pour amener à un réarrangement de la bicouche phospholipidique qui compose la membrane cellulaire, de manière à ce que des pores se forment. Dans cet état l'ADN plasmidique passera à travers la membrane et lorsque les impulsions seront stoppées la bicouche se réparera elle-même.
Ayant pris le plasmide, les bactéries peuvent alors croître sur des plaques de gélose contenant des antibiotiques.
Maintenant que nous avons étudié les plasmides et le mécanisme d'électroporation, regardons comment la procédure est menée.
Les cellules qui peuvent rapidement prendre l'ADN sont référencées comme cellules compétentes. Dans la recherche en biologie moléculaire, le type de bactéries compétentes le plus commun qui est transformé est E. coli, qui est la bactérie procaryote qui vit dans votre intestin grêle. Les E. coli qui sont préparées pour l'électroporation sont référencées comme des cellules électrocompétentes.
A tout moment où vous manipulez des bactéries, faites en sorte que la zone de travail soit aussi propre que possible.
Manipuler des bactéries exige aussi la pratique d'une technique aseptisée. Typiquement cela inclu l'utilisation d'un bec Bunsen pour stériliser les instruments et pour créer un courant de convection – qui garde les contaminants en suspension dans l'air éloignés de l'espace de travail.
Juste avant l'électroporation, préchauffez le milieu à température ambiante, amenez les plateaux de gélose contenant les antibiotiques jusqu'à 37 °C, et refroidissez les cuvettes d'électroporation dans la glace.
Ensuite, dégelez dans la glace les cellules électrocompétentes lavées.
Ajoutez 1 à 5 μL de plasmide froid à 1ng/μL sans sel aux cellules bactériennes, mélangez gentiment, et ajoutez le mélange à la cuvette froide. Vérifiez qu'il n'y ait pas de bulles.
Réglez la tension et l'intensité du champ de l'électroporateur aux paramètres corrects pour vos cellules. Ici vous voyez un électroporateur être réglé à 1700 volts avec une intensité de champ de 17 kV/cm.
Essuyez l'extérieur de la cuvette et placez la dans l'électroporateur. Pulsez les cellules jusqu'à ce que vous entendiez un bip.
Une pulsation non réussie provoque une décharge électrique, qui est observable via une étincelle visible et un bruit audible. Cette décharge, dénommée arc, peut être le résultat de la présence de trop de sel dans vos cellules compétentes ou ADN.
Le succès de votre transformation peut être prédit en relevant le temps constant, qui est le temps que la tension prend pour s'affaiblir après l'application du pulse. Lorsque du sel est présent et que la solution d'électroporation est très conductrice, l'affaiblissement apparait rapidement, provoquant la décharge, et ainsi la mort de beaucoup de vos cellules. Pour les bactéries, un bon temps constant va de 5 à 10 millisecondes.
Immédiatement après l'application des pulses, retirez la cuvette et ajoutez 1 ml de milieu directement aux cellules. Ces cellules qui contiennent du milieu sont placées dans un tube et incubées à 37 °C pour 1 heure, avec agitation, en vue pour les cellules de récupérer.
Ensuite, en utilisant une technique aseptisée ajoutez 20 à 200 μL des cellules à un plateau de gélose contenant des antibiotiques. Renversez les plateaux de façon à ce que la gélose soit au dessus et donc que la condensation ne tombe pas dans vos cellules et incubez pendant la nuit à 37 °C.
Les bactéries transformées avec le plasmide devraient former des colonies. Comptez les colonies et calculez l'efficacité de la transformation, qui est le nombre de bactéries transformées avec succès divisé par le nombre total d'ADN sur la plaque.
La gélose et le milieu, qui fournissent la nourriture pour vos bactéries, devraient être pré-préparés et stérilisés par autoclave. Laissez les milieux liquides se refroidir à température ambiante avant de les utiliser et laissez la gélose se reposer à 50-55 °C – température à laquelle un antibiotique peut être ajouté et les plateaux déversés. Ensuite, laissez les plateaux refroidir à température ambiante pour solidifier.
Puisque les bactéries utilisées dans la transformation sont stockées dans le congélateur, elles doivent d'abord être dégelées dans la glace, répandues sur un plateau de gélose sans antibiotiques et ensuite croître pendant la nuit à 37 °C.
En utilisant une technique aseptisée sélectionnez une colonie bactérienne depuis le plateau de gélose et faites la croitre dans une culture plus grande de 500 mL pendant la nuit à 37 °C dans un incubateur à agitation.
Pendant que les cellules se multiplient, préparez environ un litre d'eau désionisée et faites une solution à 10% en volume de glycérol dans l'eau. Mettez les solutions à l'autoclave et laissez les reposer à 4 °C.
Des mesures d'absorbance sont utilisées pour déterminer si oui ou non les bactéries sont à leur phase de croissance mi-log, ce qui signifie qu'elles vont facilement prendre l'ADN. Une fois que les cellules ont atteint cette phase, placez les dans la glace et gardez les là tout au long de la procédure.
Ensuite, lavez les cellules en les séparant dans deux tubes centrifuges et centrifugez les à 4°C, retirez le supernageant et remettez le reste en suspension dans 100 ml d'eau désionisée stérile froide. Répétez cette étape au moins une autre fois. Le but de cette étape particulière est de retirer le sel, qui va énormément affecter l'électroporation.
Réalisez deux lavages additionnels dans 50 ml de glycérol à 10% dans l'eau et remettez finalement en suspension les bactéries dans cette même solution.
Ajoutez 50 μL de cellules dans plusieurs tubes Eppendorf. Ces cellules sont maintenant prêtes pour leur utilisation en électroporation et devraient être conservées à 4 °C. Ou elles peuvent être surgelées et conservées à -80 °C.
Comme vous allez le voir, l'électroporation a de nombreuses utilisations.
Une alternative à l'électroporation est la transformation au choc thermique, qui repose sur l'exposition de la bactérie au chlorure de calcium et à la chaleur en vue d'introduire l'ADN dans vos cellules.
En général, le choc thermique est plus doux sur vos bactéries que l'électroporation et ne requiert pas une faible teneur en sel. Les réactions de ligation, celles qui impliquent l'insertion de votre gène cible dans le plasmide, peuvent être utilisées directement en transformation par choc thermique. La transformation par choc thermique est moins cher que l'électroporation et ne repose pas sur un équipement ou des cuvettes couteux. D'un autre côté, le choc thermique représente des efficacités de transformation plus faibles que l'électroporation et prend plus de temps. Aussi, la transformation par choc thermique est limitée aux bactéries, à la levure et aux protoplastes végétaux alors que l'électroporation peut être appliquée aux cellules mammifères.
Ici vous voyez des fibroblastes d'embryon de souris chargés dans une cuvette d'électroporation. Une fois l'électroporation finie, l'efficacité de la transformation peut être déterminée par l'observation de la mesure selon laquelle les cellules produisent une protéine fluorescente verte codée par le plasmide. La transfection est le terme donné à la transformation de cellules mammifères, qui requiert typiquement des intensités de courant inférieures à celles pour des cellules bactériennes et des temps constants supérieurs.
L'électroporation peut aussi être réalisée dans tous les animaux, comme l'embryon de poulet en développement que vous voyez ici. L'ADN plasmidique est injecté dans le cerveau du poussin et ensuite un test d'électroporation est utilisé pour appliquer un champ électrique sur les tissus du cerveau. Après un jour ou deux, des protéines fluorescentes vertes et rouges – encodées dans le plasmide – sont produites par les neurones, et les scientifiques peuvent observer des changements structurels dans le cerveau du poussin en développement.
Vous venez de regarder l'introduction de JoVE à la transformation bactérienne par électroporation. Cette vidéo introduit le plasmide comme le type d'ADN le plus communément transformé, discute le mécanisme biophysique à la base de l'électroporation, montre une procédure généralisée pour réaliser une électroporation, et décrit comment l'électroporation peut être utilisée dans un système mammifère. Merci de nous avoir regardé!
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La transformation bactérienne est un processus apparaissant naturellement, dans lequel les bactéries ingèrent un ADN étranger et ensuite l'amplifient ou le clonent. Au labo, ce processus peut être artificiellement induit, en utilisant des impulsions de champ électrique haute tension pour créer des pores dans la membrane de la cellule bactérienne, à travers lesquelles l'ADN plasmidique peut passer. Le terme électroporation fait référence à cette méthode et cette vidéo montre ses principes, une procédure pas à pas et ses utilisations.
Avant de parler de l'électroporation d'une bactérie, il est important de comprendre le type d'ADN utilisé dans ces expérimentations: le plasmide. Un plasmide est un petit, circulaire, extrachromosomique morceau d'ADN qui agit comme vecteur, un porteur de votre séquence d'ADN spécifique.
Que la séquence soit un gène pour une protéine de fluorescence chez les méduses ou une enzyme de plante, elle est insérée dans le plasmide grâce à une zone appelée site de clonage multiple ou MCS. Cette zone contient des séquences spécifiques qui sont accrochées par des endonucléases de restriction ou enzymes de restriction. Les mêmes enzymes de restriction peuvent être utilisés pour couper votre séquence d'intérêt de manière à ce que les extrémités soient complémentaires aux extrémités nouvellement coupées du plasmide.
Les plasmides contiennent aussi une origine de réplication, abrégée ORI, qui indique le point où il doit être répliqué. Lorsqu'il s'agit de la transformation le gène de résistance aux antibiotiques est d'une importance vitale. Comme son nom l'implique, ce gène permet à la bactérie de produire un enzyme qui neutralise les antibiotiques, permettant aux bactéries de survivre dans un milieu contenant des antibiotiques.
L'électroporation utilise un appareil spécialisé appelé électroporateur. Les cellules sont typiquement placées dans une cuvette d'électroporation, qui a des électrodes de chaque côté qui font le contact électrique avec l'appareil une fois (que la cuvette est) insérée.
Les cellules bactériennes mélangées avec l'ADN sont chargées dans la cuvette d'électroporation et un champ électrique de l'ordre de 1000 à 10 000 volts par centimètre est appliqué pendant quelques millisecondes. Ceci fait augmenter la tension à travers la membrane jusqu'à 0,5-1 volts, ce qui est connu pour amener à un réarrangement de la bicouche phospholipidique qui compose la membrane cellulaire, de manière à ce que des pores se forment. Dans cet état l'ADN plasmidique passera à travers la membrane et lorsque les impulsions seront stoppées la bicouche se réparera elle-même.
Ayant pris le plasmide, les bactéries peuvent alors croître sur des plaques de gélose contenant des antibiotiques.
Maintenant que nous avons étudié les plasmides et le mécanisme d'électroporation, regardons comment la procédure est menée.
Les cellules qui peuvent rapidement prendre l'ADN sont référencées comme cellules compétentes. Dans la recherche en biologie moléculaire, le type de bactéries compétentes le plus commun qui est transformé est E. coli, qui est la bactérie procaryote qui vit dans votre intestin grêle. Les E. coli qui sont préparées pour l'électroporation sont référencées comme des cellules électrocompétentes.
A tout moment où vous manipulez des bactéries, faites en sorte que la zone de travail soit aussi propre que possible.
Manipuler des bactéries exige aussi la pratique d'une technique aseptisée. Typiquement cela inclu l'utilisation d'un bec Bunsen pour stériliser les instruments et pour créer un courant de convection – qui garde les contaminants en suspension dans l'air éloignés de l'espace de travail.
Juste avant l'électroporation, préchauffez le milieu à température ambiante, amenez les plateaux de gélose contenant les antibiotiques jusqu'à 37 °C, et refroidissez les cuvettes d'électroporation dans la glace.
Ensuite, dégelez dans la glace les cellules électrocompétentes lavées.
Ajoutez 1 à 5 μL de plasmide froid à 1ng/μL sans sel aux cellules bactériennes, mélangez gentiment, et ajoutez le mélange à la cuvette froide. Vérifiez qu'il n'y ait pas de bulles.
Réglez la tension et l'intensité du champ de l'électroporateur aux paramètres corrects pour vos cellules. Ici vous voyez un électroporateur être réglé à 1700 volts avec une intensité de champ de 17 kV/cm.
Essuyez l'extérieur de la cuvette et placez la dans l'électroporateur. Pulsez les cellules jusqu'à ce que vous entendiez un bip.
Une pulsation non réussie provoque une décharge électrique, qui est observable via une étincelle visible et un bruit audible. Cette décharge, dénommée arc, peut être le résultat de la présence de trop de sel dans vos cellules compétentes ou ADN.
Le succès de votre transformation peut être prédit en relevant le temps constant, qui est le temps que la tension prend pour s'affaiblir après l'application du pulse. Lorsque du sel est présent et que la solution d'électroporation est très conductrice, l'affaiblissement apparait rapidement, provoquant la décharge, et ainsi la mort de beaucoup de vos cellules. Pour les bactéries, un bon temps constant va de 5 à 10 millisecondes.
Immédiatement après l'application des pulses, retirez la cuvette et ajoutez 1 ml de milieu directement aux cellules. Ces cellules qui contiennent du milieu sont placées dans un tube et incubées à 37 °C pour 1 heure, avec agitation, en vue pour les cellules de récupérer.
Ensuite, en utilisant une technique aseptisée ajoutez 20 à 200 μL des cellules à un plateau de gélose contenant des antibiotiques. Renversez les plateaux de façon à ce que la gélose soit au dessus et donc que la condensation ne tombe pas dans vos cellules et incubez pendant la nuit à 37 °C.
Les bactéries transformées avec le plasmide devraient former des colonies. Comptez les colonies et calculez l'efficacité de la transformation, qui est le nombre de bactéries transformées avec succès divisé par le nombre total d'ADN sur la plaque.
La gélose et le milieu, qui fournissent la nourriture pour vos bactéries, devraient être pré-préparés et stérilisés par autoclave. Laissez les milieux liquides se refroidir à température ambiante avant de les utiliser et laissez la gélose se reposer à 50-55 °C – température à laquelle un antibiotique peut être ajouté et les plateaux déversés. Ensuite, laissez les plateaux refroidir à température ambiante pour solidifier.
Puisque les bactéries utilisées dans la transformation sont stockées dans le congélateur, elles doivent d'abord être dégelées dans la glace, répandues sur un plateau de gélose sans antibiotiques et ensuite croître pendant la nuit à 37 °C.
En utilisant une technique aseptisée sélectionnez une colonie bactérienne depuis le plateau de gélose et faites la croitre dans une culture plus grande de 500 mL pendant la nuit à 37 °C dans un incubateur à agitation.
Pendant que les cellules se multiplient, préparez environ un litre d'eau désionisée et faites une solution à 10% en volume de glycérol dans l'eau. Mettez les solutions à l'autoclave et laissez les reposer à 4 °C.
Des mesures d'absorbance sont utilisées pour déterminer si oui ou non les bactéries sont à leur phase de croissance mi-log, ce qui signifie qu'elles vont facilement prendre l'ADN. Une fois que les cellules ont atteint cette phase, placez les dans la glace et gardez les là tout au long de la procédure.
Ensuite, lavez les cellules en les séparant dans deux tubes centrifuges et centrifugez les à 4°C, retirez le supernageant et remettez le reste en suspension dans 100 ml d'eau désionisée stérile froide. Répétez cette étape au moins une autre fois. Le but de cette étape particulière est de retirer le sel, qui va énormément affecter l'électroporation.
Réalisez deux lavages additionnels dans 50 ml de glycérol à 10% dans l'eau et remettez finalement en suspension les bactéries dans cette même solution.
Ajoutez 50 μL de cellules dans plusieurs tubes Eppendorf. Ces cellules sont maintenant prêtes pour leur utilisation en électroporation et devraient être conservées à 4 °C. Ou elles peuvent être surgelées et conservées à -80 °C.
Comme vous allez le voir, l'électroporation a de nombreuses utilisations.
Une alternative à l'électroporation est la transformation au choc thermique, qui repose sur l'exposition de la bactérie au chlorure de calcium et à la chaleur en vue d'introduire l'ADN dans vos cellules.
En général, le choc thermique est plus doux sur vos bactéries que l'électroporation et ne requiert pas une faible teneur en sel. Les réactions de ligation, celles qui impliquent l'insertion de votre gène cible dans le plasmide, peuvent être utilisées directement en transformation par choc thermique. La transformation par choc thermique est moins cher que l'électroporation et ne repose pas sur un équipement ou des cuvettes couteux. D'un autre côté, le choc thermique représente des efficacités de transformation plus faibles que l'électroporation et prend plus de temps. Aussi, la transformation par choc thermique est limitée aux bactéries, à la levure et aux protoplastes végétaux alors que l'électroporation peut être appliquée aux cellules mammifères.
Ici vous voyez des fibroblastes d'embryon de souris chargés dans une cuvette d'électroporation. Une fois l'électroporation finie, l'efficacité de la transformation peut être déterminée par l'observation de la mesure selon laquelle les cellules produisent une protéine fluorescente verte codée par le plasmide. La transfection est le terme donné à la transformation de cellules mammifères, qui requiert typiquement des intensités de courant inférieures à celles pour des cellules bactériennes et des temps constants supérieurs.
L'électroporation peut aussi être réalisée dans tous les animaux, comme l'embryon de poulet en développement que vous voyez ici. L'ADN plasmidique est injecté dans le cerveau du poussin et ensuite un test d'électroporation est utilisé pour appliquer un champ électrique sur les tissus du cerveau. Après un jour ou deux, des protéines fluorescentes vertes et rouges – encodées dans le plasmide – sont produites par les neurones, et les scientifiques peuvent observer des changements structurels dans le cerveau du poussin en développement.
Vous venez de regarder l'introduction de JoVE à la transformation bactérienne par électroporation. Cette vidéo introduit le plasmide comme le type d'ADN le plus communément transformé, discute le mécanisme biophysique à la base de l'électroporation, montre une procédure généralisée pour réaliser une électroporation, et décrit comment l'électroporation peut être utilisée dans un système mammifère. Merci de nous avoir regardé!
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Q1: What is a plasmid and why is it used in bacterial transformation?
A plasmid is a small, circular, extrachromosomal piece of DNA that acts as a vector to carry your specific DNA sequence into bacterial cells. It contains a multiple cloning site where restriction enzymes insert your target gene, an origin of replication for DNA copying, and an antibiotic resistance gene that allows transformed bacteria to survive on antibiotic-containing media.
Q2: How does electroporation create pores in bacterial cell membranes?
Electroporation applies a high-voltage electric field of 1,000 to 10,000 volts per centimeter for milliseconds, causing the voltage across the membrane to reach 0.5-1 volts. This rearranges the phospholipid bilayer, creating temporary pores through which plasmid DNA passes. Once pulsing stops, the bilayer repairs itself, trapping the DNA inside the cell.
Q3: What are electrocompetent cells and how are they prepared?
Electrocompetent cells are bacteria prepared to readily take up DNA during electroporation. E. coli cells are grown to mid-log phase, then washed multiple times in deionized water and 10% glycerol solution to remove salt. Salt removal is critical because high salt content causes arcing, an electrical discharge that kills cells and indicates transformation failure.
Q4: Why is the time constant important in predicting electroporation success?
The time constant measures how quickly voltage decays after the electric pulse is applied. Good time constants for bacteria range from 5-10 milliseconds. Rapid decay indicates high salt concentration, causing arcing and cell death. Monitoring the time constant helps predict whether your transformation will succeed before observing colony growth.
Q5: How does electroporation compare to heat shock transformation?
Heat shock transformation uses calcium chloride and heat exposure instead of electrical pulses, making it gentler on bacteria and cheaper than electroporation. However, heat shock produces lower transformation efficiencies, takes longer, and works only on bacteria, yeast, and plant protoplasts. Electroporation achieves higher efficiency and applies to mammalian cells through a process called transfection.
Q6: What steps follow electroporation to identify successfully transformed bacteria?
After pulsing, add recovery media to cells and incubate at 37°C for one hour with shaking. Plate cells on antibiotic-containing agar and incubate overnight at 37°C. Only bacteria that successfully took up the plasmid survive the antibiotic. Count resulting colonies and calculate transformation efficiency by dividing successful transformants by total DNA plated.
Q7: What are the applications of electroporation beyond bacterial transformation?
Electroporation applies to mammalian cells through transfection, using lower field strengths and higher time constants than bacterial cells. Scientists also use electroporation in whole organisms like developing chicken embryos by injecting plasmid DNA into brain tissue and applying an electric field. This allows observation of fluorescent protein expression and structural changes in developing neural tissue.
Chapitres dans cette vidéo
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Overview
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The Plasmid
2:17
Electroporation Basic Principles
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Electroporating Bacteria
7:07
Preparing Electrocompetent Cells
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Applications
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Summary